Propagação de Fruteiras

Fruticultura Geral
Unidade I
(Parte I)
Propagação de Frutíferas
e Produção de mudas
Profa Railene Hérica Carlos Rocha
(UFCG/CCTA/UAGRA)
1. Introdução
Conjunto de práticas
destinadas a perpetuar as
espécies de forma
controlada
Propagação?
Métodos de propagação
Sexuada: sementes
Assexuada: estruturas vegetais
Fonte: FACHINELLO, J. C. et al. Propagação de
plantas frutíferas. Brasília. 2005. 221p.
Propagação sexuada
Processo onde ocorre a fusão dos gametas masculinos e
femininos para formar uma só célula (zigoto), no interior do
ovário, após a polinização.
Autopolinização
Polinização cruzada
Propagação assexuada, vegetativa ou agâmica
Processo que ocorre por mecanismos de divisão e diferenciação celular
(regeneração de partes da planta mãe)
> Totipotencialidade (informação genética da célula)
> Regeneração de células ( regeneração de órgãos adventícios)
Propagação por sementes (uso restrito):
Utilidade:
* Plantas que não podem ser propagadas por outro meio (coco-dabaía e mamão)
* Obtenção de Porta-enxertos (citrus, abacate, caju, manga, caqui)
* Obtenção de variedades novas (Sucesso: pêssego, maçã, tâmara e
caqui. Falha: Manga e citrus)
* Obtenção de clones nucelares (obtido a partir de sementes
poliembriônicas: Manga e citrus, entre outras)
Apomixia
Poliembrionia
* Produzir plantas livres de doenças: vírus, nematóides e
outros são expurgados na meiose
Fonte: FACHINELLO, J. C. et al. Propagação de
plantas frutíferas. Brasília. 2005. 221p.
Fonte: FACHINELLO, J. C. et al. Propagação de
plantas frutíferas. Brasília. 2005. 221p.
Propagação assexuada (uso comercial):
Vantagens:
* Perpetuação dos caracteres da cultivar
* Redução do período improdutivo. Rapidez (dispensa a floração)
* Obtenção de áreas de produção uniformes (Ausência de segregação)
* Combinação de clones (Enxertia)
Desvantagens:
* Possibilidade de transmissão de doenças (vírus e fitoplasmas)
* Possibilidade de contaminação do material (ferramentas, estacas,
ramos e gemas) utilizado na propagação vegetativa
* Aumento do risco de propagação de doenças (uso prolongado das
plantas matrizes)
* Patógenos associados à propagação vegetativa:
Fungos: Phytophthora sp., Pythium sp., Rhizoctonia sp.
Bactérias: Erwinia sp., Pseudomonas sp. e Agrobacterium
tumefasciens,
Vírus
Fitoplasmas
2. Propagação por sementes
2.1 Fatores que afetam a germinação das sementes
Fatores internos
Dormência, qualidade da semente, potencial de
germinação da espécie
Fatores externos
Água, temperatura, luz e gases
Fatores internos
a) Dormência ( metabolismo
água)
Causas da Dormência
Dormência devida aos envoltórios da semente
* Dormência física: testa, impermeabilidade à água
* Dormência mecânica: envoltórios
expansão do embrião
resistência à
* Dormência química: inibidores associados ao fruto (fenóis,
cumarina e ácido abscísico). Ex. Pêssego
Dormência morfológica
* Embrião rudimentar: pró-embrião envolvido pelo
endosperma
* Embrião não desenvolvido: presente no fruto imaturo
Dormência interna
* Dormência fisiológica: comum em plantas herbáceas
. Dormência térmica: temperaturas elevadas
. Fotodormência: sementes que necessitam de
escuridão para germinar
. Dormência do embrião: embrião incapaz de
germinar
. Dormência do epicótilo: exigência de temperatura
ou fitohormônios diferenciada do embrião
b) Qualidade da semente
* Viabilidade: % de germinação
* Vigor: todos os atributos da semente que favorecem o
estabelecimento da espécie no campo
Semente em senescência: vigor viabilidade
c) Potencial de germinação da espécie
Maioria das espécies
dificuldade de germinação
. Fatores genéticos
. Vigor
. Longevidade
Fatores externos
a) Água
Ativação do metabolismo para germinação
Teor de água mínimo para germinação: 40% a 60%
b) Temperatura
Fator mais importante para a germinação: influência
nas reações metabólicas
25 0C a 30 0C
c) Gases
O2: Ativa o processo de respiração
CO2 : Pode inibir a germinação
d) Luz
Efeito diferenciado entre as espécies, mas indispensável para o
crescimento das plântulas
2.2 Técnicas de propagação por sementes (sexuada)
> Escolha das plantas matrizes
> Escolha dos frutos
> Extração das sementes
> Escolha das sementes
> Conservação das sementes
Fonte: Mamão: Produção. Série Frutas do
Brasil. pg. 21, 2000.
. Viabilidade inicial na colheita
. Taxa de deterioração das sementes
2.3 Superação da dormência
> Aumento da permeabilidade dos envoltórios
. Método físico
Imersão em água quente (65 a 85 0C por 5 a 10 min)
. Método químico
Tratamento com hidróxido de sódio ou de potássio,
formol e ácido clorídrico ou sulfúrico por 10 min a 6h, conforme
a espécie
. Método mecânico
Superfície abrasiva, agitação em areia ou pedra, quebra
dos envoltórios. Ex. Pêssego
> Maturação do embrião
Amadurecimento do embrião
Balanço hormonal favorável à germinação
Armazenamento das
sementes em ambiente frio
e úmido
Estratificação ... Ideal ... Aquele que retém adequado teor de
umidade e não contém substâncias tóxicas
Exemplos: O solo
Areia lavada
Musgo
Vermiculita
Serragem
Mistura destes materiais
Método: camadas de sementes são intercaladas com camadas do
substrato à temperatura ambiente, ou em câmaras refrigeradas entre 0 e 10
0C
> Manejo das sementes e das sementeiras
Antes da semeadura em viveiro ---- Tratamento das sementes --fungicida ou hipoclorito de sódio
Localização da sementeira: Fora da área de produção
Terreno:
Bem drenado
Pequena declividade
Plena exposição à luz
Boa disponibilidade de água para irrigação
Má drenagem do terreno --- dumpping off --- afeta a germinação e a
sobrevivência das plantas jóvens
Pythium, Rhizoctonia e Phytophthora
Rotação de culturas --- Não é aconselhável o uso da mesma área como
sementeira por mais de 2 anos
Tratamento do solo da sementeira:
Solarização
Calor: Aquecimento direto --- vapor dágua, tratamento em
autoclaves
Uso de fungicidas
Agentes de controle biológico --- Ex.: Trichoderma
Semeadura: Covas
Diretamente na embalagem
A lanço
Em linha
Semeadura em linha
Grandes viveiros. Ex.: Citros e pessegueiro
Quantidade de sementes: 3 a 4 vezes o número desejado de plantas
Cobertura das sementes: solo ou areia
Cobertura dos canteiros: fina camada de palha --- Remover antes da emergência
Impedir o crescimento de plantas invasoras e conservar a
umidade do solo
Irrigação: Aspersão
Regadores
Outros sistemas em viveiros de maior porte
Controle de plantas invasoras: Métodos químicos
Mecânicos
Sistema de irrigação, com aspersores para produção de mudas em viveiro.
Espaçamento: Uso de implementos agrícolas
Uso de herbicidas
Adubação: Feita de acordo com a permanência da espécie na sementeira
Adubação de correção e de cobertura
Correção do pH do solo --- calcário
Adubação nitrogenada --- Cautela --- desequilíbrio nutricional: excesso
de crescimento, suscetibilidade a pragas e doenças. Excesso de sais inibem a
germinação.
Crescimento das mudas --- Tamanho ideal ---- Seleção por tamanho --transferência para o viveiro: utilização como porta-enxerto, mudas para
formação de pomares
Mudas de meloeiro propagadas por sementes. Detalhe em azul, sementes
tratadas.
3. Propagação vegetativa
3.1 Estaquia
Método de propagação no qual ocorre a indução do
enraizamento adventício em segmentos destacados da
planta-mãe que, quando submetidos a condições favoráveis,
originam uma muda
Princípio do método de estaquia
Porção do ramo ou folha
Regeneração
Porção da raiz
ramos
raiz
Aplicações da estaquia:
 Multiplicação de variedades ou espécies com aptidão para
emitir raízes adventícias
 Produção de porta-enxertos clonais
 Perpetuação de novas variedades
Classificação das estacas:
Lenhosas ( lignificadas: 8 a 15 meses)
Aéreas
Semilenhosas (Estacas com folhas, oriundas de plantas
lenhosas)
Herbáceas ( atividade meristemática, lignificação)
Subterrâneas
Estacas de raiz
Pouco usual: cajueiro, goiabeira
Figura. Coleta de estacas semi-lenhosas de romanzeira ‘Molar’. UFCG,
Pombal - PB, 2013. Foto: Sousa, 2013.
Princípios anatômicos do enraizamento:
Desdiferenciação
Totipotência
Enraizamento de estacas --- Resposta ao traumatismo
sofrido pelo corte
Dano nas células do floema e do xilema
parenquimatosas pouco diferenciadas
suberina e células
calo (tecido cicatricial)
Ew
Princípios fisiológicos do enraizamento:
Capacidade de enraizamento: Fatores endógenos e ambientais
 Auxinas: Hormônio de maior efeito no enraizamento em
estacas
AIA (ácido indolacético): 1ª utilização, promover o
enraizamento em segmentos de plantas
AIB (ácido indolilbutírico) e ANA (ácido naftalenacético)
Auxina exógena: estimulante do enraizamento , aplicado na
base das estacas --- calo --- enraizamento
 Giberelinas: Promove estímulo ao crescimento do caule
AG3 (ácido giberélico): [ ]> 10-3 molar, inibem o
enraizamento
Inibidores da síntese de giberelinas: SADH (ácido succínico
2,2-dimetilhidrazida) e paclobutrazol --- Efeitos benéficos
ao enraizamento
 Citocininas: Estimula a divisão celular, na presença de auxinas
gemas
Estímulo na formação de calos e a iniciação de
. Baixa relação Auxina/citocinina: estimula a
formação de gemas e primórdios foliares
. Elevada relação: estimula a formação de raízes
 Ácido abscísico: Pesquisas em andamento, resultados contraditórios
 Etileno: Promove o enraizamento, na presença de auxina
Efeito de reguladores no enraizamento: o equilíbrio entre estes
compostos, pode esclarecer os mecanismos fisiológicos do
enraizamento
Além dos reguladores, existe os:
Co-fatores do enraizamento: atuam sinergeticamente com as
auxinas. São sintetizados em gemas e folhas jóvens, e em
maior quantidade em estacas de plantas jóvens.
Fatores que afetam a formação das raízes:
Influenciam na facilidade ou dificuldade da
estaca de uma espécie enraizar
> Fatores internos: Interação entre fatores
enraizamento
> Condições fisiológicas da planta-matriz:
. Água
. Nutrientes: carboidratos
auxinas
ác nucleicos, prot.
C/N
enraizamento
vegetativa
C/N
enraizamento
vegetativa
Videira: Iodo
amido
enraizamento
amido
. P, K, Ca e Mg
equilíbrio
enraizamento
> Idade da planta-matriz:
Plantas jovens
enraizamento
Plantas adultas: Recomenda-se obter brotações jovens
> Tipo de estaca:
Tipo adequado: varia com a espécie --- Facilidade ou não
para enraizar
Estacas lenhosas: Porção basal --- Melhores resultados
Estacas semi-lenhosas: Porção apical
Estacas com gemas floríferas: menor enraizamento
> Época do ano
Inverno: maior capacidade de enraizamento (NE)
Verão:
lignificação, dificuldade de enraizamento (NE)
> Potencial genético de enraizamento
> Sanidade
Estacas com vírus: interferência na qualidade das estacas
interferência no enraizamento, em
diversas técnicas de estaquia, nas
mesmas condições
> Balanço hormonal
Equilíbrio: Aplicação exógena --- AIB, ANA, AIA
> Oxidação de compostos fenólicos
Espécies da família Myrtaceae
Uso de anti-oxidantes: ácido ascórbico, PVP
(polivinilpirrolidona), ácido cítrico, Dieca (dietilditiocarbamato)
(controle da oxidação no cultivo in vitro)
> Fatores externos
. Temperatura (substrato 18 a 21 0C)
. Luz
intensidade na planta-mãe, antes da coleta da
estaca favorece o enraizamento
Estiolamento dos ramos em que serão retiradas as
estacas, favorece o enraizamento
. Umidade (principal causa de morte em estacas)
- Recomendado: Nebulização intermitente
-
Umidade --- Patógenos (Cuidados especiais)
. Substrato
- Ambiente: úmido, escuro, aerado
- Areia, vermiculita, casca de arroz carbonizada,
turfa, mistura de ambos
. Condicionamento do ramo antes da estaquia (Previamente à
coleta dos ramos)
- Tratamento com fitorreguladores
- Anelamento
- Estiolamento
- Dobra do ramo
Técnicas de estaquia
> Preparo e manejo das estacas
Galpão --- tesoura de poda --- mantidas em água --- substrato
Corte superior da estaca: Logo acima de uma gema
Corte inferior da estaca: Logo abaixo de uma gema
manter: 2 – 3 folhas na parte superior (Folhas grandes: corte ao meio)
Tamanho: Est. Lenhosas: 20 a 30 cm compr., 0,6 a 2,5 cm Ø
Est. Semilenhosas: 7,5 a 15 cm compr.
Separação de estacas por tamanho: uniformidade no viveiro
> Estaqueamento
. Plantio
. Profundidade de plantio
Em geral: Estacas de ramos --- 2/3 da estaca enterrada no substrato
horizontal
Estacas de raiz: enterrar a 2,5 a 5,0 cm de prof., na
> Substrato
. Além dos citados anteriormente:
Musgo turfoso, musgo esfagníneo e água (hidroponia)
> Técnicas de condicionamento
. Estratificação
> Lesões na base da estaca
. Estiolamento: planta toda ou ramo protegido da luz --Estímulo ao enraizamento (em estudo...)
> Anelamento/ Estrangulamento em ramos da planta
matriz
Figura . Técnicas de manejo (T) utilizados nas estacas para a propagação vegetativa da
romanzeira (a, d) T1 - Estacas com folhas. (b, e) T2 - Estacas sem folha. (c, f) T3 - Estacas
sem folhas e com lesão na base da estaca. Nota: a, b, c, referem-se às estacas coletadas no
período seco; d, e, f, referem-se às estacas coletadas no período chuvoso. Foto: Sousa,
2013.
> Dobra de ramos
> Uso de nebulização
T1
T2
T3
Figura . Mudas de romã, variedade ‘Wanderful’ aos 150 dias após o plantio, no período chuvoso. T1: Estacas
com folhas; T2: Estacas sem folhas; T3: Estacas sem folha e com lesão na base da estaca. UFCG, PombalPB, 2013.
Enxertia
3.2 Enxertia
Método de propagação assexuada de vegetais superiores,
na qual se colocam em contato duas porções de tecido
vegetal, de tal forma que se unam e , posteriormente, se
desenvolvam, originando uma nova planta.
Associação de duas plantas:
. Cavalo ou porta-enxerto (hipobioto)
. Cepa ou enxerto (epibioto)
Finalidades da enxertia
Manter as características genéticas de uma
espécie, de uma cultivar ou de um clone
Propagar plantas que não podem ser
multiplicadas por outros métodos
Obter benefícios do porta-enxerto
Substituir cultivares de plantas estabelecidas
Evitar problemas de juvenilidade
Recuperar partes danificadas de plantas
Combinar clones ou cultivares
Fatores que afetam o pegamento do enxerto
1. Incompatibilidade
Sintomas de incompatibilidade:
. Quebra no local da enxertia
. Diferença entre o Ø do parta-enxerto e enxerto (≠
vigor)
. Pouco desenvolvimento
. Amarelecimento das folhas
. Morte prematura da planta
queda
Incompatibilidade na fase de produção de mudas de mangueira .
Fatores que afetam a incompatibilidade:
Afinidade genética
 Exigências nutritivas ≠ entre espécies
Espécies caducifólias ≠ Espécies perenifólias
 Afinidade anatômica dos tecidos
2. Condições ambientais
Temperatura ( 4
0C
32 0C, dificultam a cicatrização)
 Umidade do ar e do solo
 Oxigênio (Ponto de enxerto)
Luminosidade (ideal: pouca lumin.--- sombreamento)
Vento
3.Outros fatores importantes
Idade do porta-enxerto (ideal: p.enx. jóvens)
Época
Classificação botânica
Sanidade
Técnica de enxertia
Habilidade do enxertador
Polaridade do enxerto
Oxidação de compostos fenólicos (goiabeira)
Equipamentos necessários
Canivete
Tesoura de poda
Máquina de enxertar
Pedra de afiar
Para amarração e proteção dos enxertos:
Fitas de polietileno, n. 8 (material + utilizado)
Filmes de pvc (mesmo utilizado p/ alimentos) --- bobinas
cortadas em rodelas 2,0 a 2,5 cm
Etiquetas (identificação das espécies)
Desinfestação de ferramentas:
> Hipoclorito de sódio: 1,5 a 2,0 %
Processos de enxertia
1. Borbulhia
Justaposição de uma única gema sobre um portaenxerto enraizado
Época: Plantas em plena atividade vegetativa
Borbulha em placa ou escudo. A) Retirada do escudo do porta-enxerto.
B) Escudo com borbulha retirado do ramo. C) Implante do escudo com a
borbulha. D) Amarrio do escudo com a borbulha ao porta-enxerto.
E) Muda em condições de ser levada para o campo.
Borbulhia em goiabeira
1.1 T normal
1.2 T invertido
Borbulhia
T Normal
T invertido
Borbulhia em “T” invertido. A) Incisão do portaenxertoem
“T” invertido. B) Retirada da borbulha. C)Inserção da
borbulha. D) Amarrio da borbulha ao portaenxerto.E)
Muda em condições de ser levada para o
campo.
1.3 Borbulhia em Janela e em Flauta
Forçamento do enxerto: estímulo ao desenvolvimento
do enxerto, após o pegamento
Um pouco acima do local da enxertia, curva-se
o ramo para o solo --- acúmulo de seiva no local
do enxerto --- vigor
Dobra do porta-enxerto de pessegueiro para forçamento da
brotação.
Foto: Jair Costa Nachtigal
2. Garfagem
Em geral, a garfagem difere da borbulhia por possuir
mais de uma gema
Caule: É feito ~ 20 cm acima do nível do solo
Raiz: Feito na região do coleto
Para o sucesso da enxertia, a região cambial do
garfo deve ser colocada corretamente em
contato com a do cavalo
2.1 Fenda cheia
Preparação de garfos para enxertia
Garfagem no topo em fenda cheia. A) Portaenxertodecotado. B) Porta-enxerto com fenda
aberta egarfo em forma de cunha. C) Garfo
implantado noporta-enxerto e amarrado com
fita plástica. D) Muda em condições de ser
levada para o campo.
Garfagem lateral. A) Corte inclinado praticado no garfo e no portaenxerto. B) União do garfo e no porta-enxerto. C) Amarrio com fita
plástica. D) Muda em condições de ser levada para o campo.
2.2 Dupla fenda ou Inglês complicado
2.3 Fenda simples ou Inglês simples
Garfagem à inglesa simples. A) Porta-enxerto decotado em bisel. B) Garfo
aparado em bisel. C) União do garfo com porta-enxerto e amarrado com fita
plástica. D) Muda em condições de ser levada para o campo.
3. Encostia
Método utilizado para unir duas partes de plantas que
continuam sobre seus próprios sistemas radiculares, até
que a soldadura entre ambas se complete e possibilite a
separação do ramo
Método utilizado quando os demais métodos falham
3.1 Lateral simples
3.2 Lateral inglesa
3.2 No topo, simples
3.3 No topo, inglesa
3.4Sobreenxertia
Mergulhia
3.3 Mergulhia
Método de propagação assexuada no qual a planta a ser
originada só é destacada da planta-mãe após ter formado
seu próprio sistema radicular
Baseia-se no princípio de que, pelo
sombreamento parcial ou total do ramo ou de
outra parte da planta, são proporcionadas
condições de umidade, aeração e ausência de
luz, que favorecem a emissão de raízes
Método utilizado quando os demais métodos falham
Fatores que afetam a formação de raízes
( idem estaquia )
Substrato
Água e sais minerais
Fisiologia: deve ser feita em fase de crescimento vegetativo
Idade dos ramos: ramos jovens --- ideal
Fitorreguladores
Anelamento
Cajueiro de Pirangi,
Natal –RN.
Classificação
Simples
Normal
De ponta
Solo
Contínua
Cepa
Aérea
Chinesa
Serpenteada
Alporquia
Mergulhia no solo
> Mergulhia simples normal
> Mergulhia simples de ponta
> Mergulhia contínua chinesa
> Mergulhia contínua serpenteada
> Mergulhia de cepa
Mergulhia aérea
> Alporquia
Estruturas especializadas
(Propagação assexuada)
3.4 Estruturas especializadas
 Estolões
 Rebentos
 Rizomas
 Estolões
Morangueiro
 Rebentos
Amoreira-preta
Mudas do tipo rebentão, emitidas após o
corte da planta à altura da base do
pedúnculo.
Abacaxi – Produção. Série Frutas do Brasil, 7. 2000
 Rizomas
A
B
C
D
E
F
G
H
Diferentes tipos de mudas. A-chifrinho, B-chifre, C-chifrão, Dguarda-chuva, E-muda adulta, F-rizoma com filho, G-pedaço de
rizoma, H-muda micropropagada.
Exemplos de procedimentos para
propagação de fruteiras
Propagação da goiabeira
Propagação da figueira
Propagação da Lichieira
Propagação da Lichieira
(Continuação)
Propagação da macieira
Propagação da macieira
(continuação)
Propagação de citrus
Propagação do abacateiro
Propagação do coqueiro
Micropropagação de
plantas frutíferas
Mudas de bananeira micropropagadas
Unidade I
(Parte II)
Viveiros para Propagação de
Plantas Frutíferas
Profa Railene Hérica Carlos Rocha
(UFCG/CCTA/UAGRA)
1. Introdução
Controle de qualidade
Entrada
(Material base)
Processo
(Sistema de organização do
viveiro)
Controle de tempo e custo
Saída
(Muda de qualidade, na qnt.,
no tempo e no fluxo desejado)
Material
genético
Estrutura
Qualidade
Vigor
Padronização
Sanidade
2. Tipos de viveiros
Permanentes
2.1 Quanto à duração
Temporários
2.2. Quanto à proteção do sistema radicular
Viveiros com mudas de raiz nua
Viveiros com mudas em recipiente
Muda produzida em tubete, pronta para o plantio
Viveiros em raiz nua
Produção em casa de vegetação, substrato
suspenso
Estradas, canteiros e ruas
Viveiros em recipiente
Produção de mudas em sacos plásticos
Produção de mudas em tubetes
Produção de mudas de mangueira em saco plástico.
3. Preparo da área
3. 1 Viveiros em raiz nua
E: estradas (ruas)
E
C
P
P: passeios (caminhos)
Área para
adubação verde
Bloco 1
E
Bloco 2
C: canteiros
E
Área para
adubação verde
E
Esquema de um viveiro em raiz nua
construções
quebra-vento
portões
Profundidade da área: 1m;
Formato: quadrado ou retangular;
Canteiros dispostos em blocos, contornados por estradas;
Dimensões do bloco: não inferior a 0,4, podendo chegar a 1ha – comprimento: 100 a
150 m
Áreas dos canteiros: aradas e gradeadas até a profundidade de 25 cm;
correção da acidez do solo;
adubação mineral e orgânica;
fumigação do solo.
3. 2 Viveiros em recipientes
Canteiros dispostos em blocos;
Não há necessidade de preparo do solo;
Os canteiros são de menor comprimento: 20 a 40m;
4. Capacidade e extensão
4.1 Espécie e espaçamento
4.2 Conceito de áreas produtivas e não produtivas
5. Confecção dos canteiros
5.1 Viveiros em raiz nua
> Recomendação de espécies;
> Comprimento dos canteiros: 100 - 150m
sistema de irrigação;
comprimento exato - canos do
> Largura dos canteiros: cerca de 120cm; superfície 8 a 10cm mais alto que a dos
passeios;
> Largura do passeio: 50 a 60cm;
> Estradas: largura não inferior a 3,5m.
Preparo do solo do viveiro
a) Subsolagem, se necessário;
b) Aração;
c) Gradagem;
d) Uso de enxada rotativa;
e) Correção do pH;
f) Aplicação de fertilizantes minerais e orgânicos;
g) Aplicação de fumigantes (brometo de metila).
Após o preparo do solo, utiliza-se os seguintes equipamentos para a confecção
mecanizada dos canteiros:
h) Modelador de canteiro;
i) Semeadeira;
j) Aplicação de cobertura da semeadura.
5.2 Viveiros em recipiente
> Recomendação de espécies;
> Os blocos servirão de base física para os recipientes;
> Passeios mais largos: 60- 80cm de largura;
> Semeadura: manual ou mecanizada, 2 - 4 sementes por recipiente
da plantas menos vigorosas;
eliminação
> Após a semeadura: recipientes cobertos com fina camada de material leve,
irrigação.
6. Instalações necessárias
> Casa do viveirista;
> Escritório;
> Casa para higiene pessoal;
> Depósito para equipamentos e ferramentas;
> Depósito para adubos químicos;
Telados Estufas
Telado com aspersores suspensos
Telado com aspersores e solo recoberto com areia lavada
Quando se produz sementes, deve-se ter ainda:
Estufa de secagem;
Abrigo para máquina de beneficiamento;
Câmara fria para o armazenamento de sementes.
7. Quebra-ventos
Consideração sobre quebra-ventos
a) Altura do quebra-vento;
b) Altura homogênea;
c) Adaptação das espécies do quebra-vento;
d) Permeabilidade do vento: média;
e) Não haver falhas ao longo da barreia;
f) Direção do quebra-vento: perpendicular à direção dominante do
vento.
O quebra-vento será mais eficiente quanto maior o número de
espécies envolvidas e o arranjo que se dá para a barreira:
Exemplo:
Linhas centrais: espécies de grande porte. Ex.: Eucalipto, pinus.
Linhas laterais: espécies de médio porte. Ex.: Leucena.
Linhas de complemento: arbustos ou árvores. Ex.:bambu, sorgo.
8. Recipientes
8.1 Funções dos recipientes:
a) Biologicamente:
> Propiciar suporte e nutrição das mudas;
> Proteger as raízes de danos mecânicos e da desidratação;
> Moldá-las em forma favorável para o desenvolvimento das mudas, assim como
maximizar a taxa de sobrevivência e crescimento inicial após o plantio.
b) Operacionalmente:
> Facilitar o manuseio no viveiro e no plantio.
8.2 Tipos de recipientes:
> Sacos pláticos
> Vasos
> Bandejas
Tubetes
Os tubetes surgiram na busca de solucionar problemas, tais como:
a) Presença de nematóides nas mudas produzidas no solo;
b) Ressecamento nos sistemas de proteção em raiz nua,
c) Traumatismo radicular;
d) Danos radiculares por abalos nos processos produtivos e no transporte;
e) Enovelamento do sistema radicular com pré-disposição ao nanismo;
f) Utilização de grande mão-de-obra;
g) Necessidade de muito substrato;
h) Baixa qualidade e padronização das mudas;
i) Poluição ambiental (embalagem reutilizável).
9. Substratos
Considerações sobre substratos:
9. 1 Características físicas
a) Textura: proporção relativa dos componentes de vários tamanhos ou grãos
individualizados contidos na massa de substrato. Compreende as proporções de
argila, silte e areia com dimensões menores que 2mm de diâmetro.
Características físicas que o substrato de viveiro deve oferecer:
. Ótimas proporções de ar e umidade, após drenagem natural;
. Rápida drenagem do excesso de água;
. Adequada taxa de infiltração de água proveniente de irrigação ou de chuva;
. Alta resistência à compactação;
. Baixa adesão às raízes das mudas;
. Baixa resistência à força de separação das mudas, para facilitar sua extração dos
canteiros.
b) Estrutura: trata do modo como as partículas são unidas, arranjadas com os poros,
em forma de agregados, no substrato.
A forma e dimensões dos agregados determinam a estrutura, tendo as funções
de assegurar boas condições de drenagem, oxigenação e penetração das
raízes. Espaços entre os agregados constituem meios de movimentação, por
força da gravidade, do excesso de água no substrato.
c) Porosidade: são os espaços ocupados por ar, água, organismos e raízes.
Determinada pelo arranjo das partículas sólidas.
Substratos porosos são comuns na presença de altos conteúdos de matéria
orgânica.
Níveis de umidade no substrato:
a) Saturação: todos os poros estão repletos de água;
b) Capacidade de campo: umidade retida pelo substrato em resistência à força da
gravidade;
c) Ponto de murcha: é dita temporária se a umidade retida pelo substrato ocasiona
murcha, mas as mudas recuperam a turgidez durante a noite. Caso contrário, o
ponto de murcha passa a ser permanente.
d) Densidade aparente: é o peso seco do substrato por unidade de volume deste
substrato, é expressa em gramas/centímetro cúbico.
> Chuvas e água de irrigação podem compactar o substrato e aumentar sua
densidade aparente.
> Em viveiros mecanizados de raiz nua, a movimentação de máquinas e
equipamentos podem contribuir para o aumento desta densidade.
> Substratos com altos níveis de matéria orgânica têm valores menores de
densidade aparente que substratos minerais.
e) Matéria orgânica:
Húmus: tem a propriedade de expansão e retração, em resposta às condições de
umidade e de seca, auxiliando na manutenção de uma adequada estrutura do
substrato.
9. 2 Características químicas
a) Colóides: são partículas extremamente pequenas que possuem propriedades
não apresentadas pelas partículas maiores.
As propriedades dos colóides, importantes em viveiros, são:
• A grande área de superfície das partículas, em relação ao seu peso;
• As cargas negativas das superfícies dos colóides;
• As diminutas dimensões das partículas, que passam por um papel de filtro
comum, mas não passam por algumas membranas, como as paredes celulares
das plantas;
• Partículas individualizadas não são visíveis, mesmo com auxílio de um
microscópio de pequeno aumento;
• As partículas individuais só saem de uma solução muito lentamente, a não ser
que sejam submetidas à floculação.
b) Minerais de argila:
> Os minerais de argila são usualmente classificados em três grupos:
Caulinita, montmorilonita e mica (ilita e vermiculita).
A vermiculita tem sido usada na mistura com produtos em decomposição, com a
finalidade de preparo de substrato para produção de mudas.
c) Capacidade de troca catiônica (CTC): é a quantidade total de cátions que pode
ser adsorvido por um material ativo. Seu valor é expresso usualmente em meq/100g
ou meq/100cm3, com base em peso seco.
Como muitos cátions existentes no substrato são nutrientes, a capacidade de
troca catiônica expressa a potencialidade de retenção desses nutrientes.
Constitui também valiosa informação do nível de fertilidade do substrato, pois os
cátions retidos não são lixiviados, são disponíveis para o desenvolvimento das
mudas.
Um aumento na CTC pode ser conseguido, com adição de matéria orgânica ao
substrato.
d) pH
Muitas reações físicas, químicas e biológicas do substrato e, consequentemente,
o desenvolvimento das mudas, dependem do pH.
O valor do pH é resultado da atividade dos íons de H+ no substrato, não sendo um
valor fixo. Depende do complexo coloidal e seus íons associados, CTC, conteúdo
de umidade, concentração de dióxido de carbono, etc.
O pH talvez seja a mais importante propriedade química do substrato. A acidez
influencia a disponibilidade dos elementos nutritivos e também exerce um efeito
direto na população microbiana do substrato. Valores de pH podem ser alterados
com calagem, uso de certos fertilizantes e aplicações de enxofre.
e) Matéria orgânica e relação carbono/nitrogênio (C/N)
Adubação verde, turfa, estercos, cascas de vegetais de diferentes origens.
Caso o substrato possua baixa concentração de N, irá ocorrer uma competição
entre as mudas e os microorganismos que necessitam do N para o seu
metabolismo.
Geralmente, os materiais orgânicos ainda não decompostos são ricos em C,
apresentando elevada relação C/N, causando deficiência deste elemento para
as mudas. Neste caso, uma adição suplementar de fontes nitrogenadas torna-se
necessária.
10. Irrigação
10.1 Manual
10.2 Aspersão
Vantagens:
. Usado em qualquer tipo de solo;
. Usado em qualquer declividade;
. Pouca mão-de-obra;
. Melhor distribuição de água.
Desvantagens
. Grande investimento inicial;
. Influência pelo vento.
11. Tratos culturais
. Transplante
. Tratamento da muda, embalagem e classificação
. Viveirista