UNIVERSIDADE PARANAENSE CLEITON PAULO AIGNER ANÁLISE MOLECULAR DE Toxoplasma gondii EM TECIDOS DE Gallus gallus UTILIZANDO A PCR EM TEMPO REAL UMUARAMA 2008 UNIVERSIDADE PARANAENSE MESTRADO EM BIOTECNOLOGIA APLICADA À AGRICULTURA CLEITON PAULO AIGNER ANÁLISE MOLECULAR DE Toxoplasma gondii EM TECIDOS DE Gallus gallus UTILIZANDO A PCR EM TEMPO REAL Dissertação apresentada como parte das exigências para a obtenção do grau de mestre no programa de Mestrado em Biotecnologia Aplicada à Agricultura da Universidade Paranaense – UNIPAR, sob orientação do Prof. Dr. Aristeu Vieira da Silva UMUARAMA 2008 A289a Aigner, Cleiton Paulo Análise molecular de Toxoplasma gondii em tecidos de Gallus gallus utilizando a PCR em tempo real / Cleiton Paulo Aigner. – Umuarama: Universidade Paranaense - UNIPAR, 2008. 52 f. Orientador: Prof. Dr. Aristeu Vieira da Silva. Dissertação (Mestrado) - Universidade Paranaense UNIPAR. 1. Toxoplasma gondii. 2. Galinha. 3. PCR em tempo real. I. Universidade Paranaense – UNIPAR. II. Título. (21 ed) CDD: 616.936 Bibliotecária Responsável Inês Gemelli CRB 9/966 Dedico este trabalho à minha família, meus pais, irmãos, cunhados e sobrinhos, as pessoas especiais em minha vida. AGRADECIMENTOS Agradeço a Renato Luis Pedron e Clarice Salete Aigner Pedron pela orientação e apoio em buscar e lutar por meus anelos. Agradeço a meus pais pelas palavras de incentivo e orgulho no caminho em busca de meu aperfeiçoamento. Agradeço a meu orientador Aristeu Vieira da Silva por compartilharmos juntos as dificuldades e alegrias deste processo. Agradeço a meu co-orientador Fabiano Sandrini pelos vários momentos de análises e discussão. Agradeço a Alvaro Largura e Marco Antonio Largura pelo auxílio na realização desta etapa. Agradeço aos acadêmicos do curso de Graduação em Medicina Veterinária da Universidade Paranaense, bolsistas do Programa Institucional de Bolsas de Iniciação Científica, Ronaldo César da Rosa e Rodrigo José Mattei, e as acadêmicas do Mestrado em Ciência Animal, Jacqueline Batista de Araújo e Franciele Rossandra Piassa, pelo auxílio nas coletas de amostras e na preparação das amostras de tecidos. Agradeço à Universidade Paranaense, ao Alvaro Centro de Análises e Pesquisas Clínicas e à Fundação Araucária de Apoio Científico e Tecnológico do Paraná pelo suporte financeiro a este trabalho. “Quando as lutas que a vida lhe oferecer forem duras, suavize-as. Não aumente sua dureza tornando-se pessimista ou deixando que sua fortaleza decaia. Faça da luta, em todo momento, um ensinamento; torne doce seu sabor quando essa luta lhe for amarga. Verá como a observância deste conselho o levará ao triunfo.” (Carlos Bernardo González Pecotche) CLEITON PAULO AIGNER QUANTIFICAÇÃO DE Toxoplasma gondii EM TECIDOS DE Gallus gallus UTILIZANDO A PCR EM TEMPO REAL RESUMO Toxoplasma gondii é um protozoário parasito intracelular obrigatório, de distribuição mundial, que acomete todas as espécies homeotérmicas, incluindo o ser humano e animais de companhia e produção. As galinhas criadas extensivamente têm sido estudadas em todo o mundo como marcadoras da contaminação ambiental e no estudo da variabilidade genética do parasito. A PCR em tempo real é uma metodologia onde os processos de amplificação e detecção são produzidos de maneira simultânea, usando marcadores fluorescentes. A detecção da fluorescência permite medir durante a amplificação a quantidade de DNA sintetizado, já que a fluorescência emitida é proporcional à quantidade de DNA formado, o que permite conhecer e registrar durante as fases a cinética da reação de amplificação. Diversos artigos descrevem ensaios moleculares para detecção de toxoplasmose, mas a maior parte destes está direcionada ao diagnóstico humano ou estudos filogenéticos. Este trabalho objetivou quantificar o parasito em amostras de cérebro e coração de galinhas sorologicamente positivas ao parasito, pela PCR em tempo real para um gene repetitivo. Amostras de sangue de 65 galinhas foram avaliadas para a presença de anticorpos pelo método de aglutinação direta (MAD), encontrando-se 28 amostras positivas. De 26 destas galinhas foram coletados cérebro e coração, submetidos à digestão pela pepsina e extração de DNA pelo Trizol®. O DNA parasitário foi amplificado e detectado em equipamento StepOneTM Real Time PCR System pelo sistema SYBR® Green. A quantificação do DNA se deu pela comparação entre os sinais de amplificação das amostras com aqueles obtidos em suspensões de amostras de cérebro e coração artificialmente contaminadas com 104 a 100 taquizoítos da cepa RH. DNA parasitário foi detectado em 24 das 26 amostras examinadas, sem diferença significativa entre os tecidos examinados, seja na freqüência de positividade, seja na quantidade de parasitos por grama de tecido. Correlação positiva entre os títulos de anticorpos e a quantificação de parasitos foi registrada para as amostras de cérebro, mas não para as amostras de coração. Palavras-chave: Toxoplasma gondii; PCR em tempo real; galinha; diagnóstico; quantificação. CLEITON PAULO AIGNER Toxoplasma gondii QUANTIFICATION IN TISSUE OF Gallus gallus USING REAL TIME PCR ABSTRACT Toxoplasma gondii is a worldwide distributed obligatory intracellular parasite that affects all homoeothermic species, including humans, pets and livestock. Chicken bred in free-range conditions have been studied all over the world as markers of environmental contamination and in the study of the genetic variability of the parasite. Real time PCR is a methodology where amplification and detection were produced at same time, using fluorescent markers. Fluorescence detection permits the measure of synthesized DNA amount during amplification phase, because the fluorescence signal is proportional to the amount of synthesized DNA, and this leads to know and register during this process the amplification reaction kinetics. Many papers describe molecular assays for toxoplasmosis detection, mainly directed for diagnosis in humans or phylogenetics studies. The objective of this study was the quantification of the parasite in brain and heart samples of chickens serologically positive for T. gondii using real-time PCR based on a repetitive element. Blood samples of 65 chickens were analyzed for the presence of antibodies using the modified agglutination test (MAT), producing 28 positive samples. Brain and heart samples were collected from 26 MAT positive chickens, and these samples were digested by acid pepsin and submitted to DNA extraction using Trizol®. Parasite DNA was amplified and detected in a StepOne® Real Time PCR System with fluorescent detection using SYBR® Green. DNA quantification was obtained by means of signal amplification observed in the samples compared with suspensions of brain and heart artificially contaminated with 104 to 100 RH strain tachyzoites. The DNA of the parasite was detected in 24 of the 26 samples analyzed, with no statistical difference between the different tissues, either in the frequency of positive results or in the quantity of parasites per gram of tissue. A positive correlation between antibody titers and parasite quantification was observed in brain, but not in heart samples. Key words: Quantification Toxoplasma gondii; Chicken; Real-time PCR; Diagnosis; SUMÁRIO RESUMO ................................................................................................................ 5 ABSTRACT ............................................................................................................. 6 INTRODUÇÃO GERAL ........................................................................................... 8 QUANTIFICAÇÃO DE Toxoplasma gondii PELA PCR EM TEMPO REAL EM TECIDOS DE GALINHAS SOROPOSITIVAS CRIADAS EXTENSIVAMENTE DO ESTADO DO PARANÁ, BRASIL .................................................................... 14 CONCLUSÕES GERAIS ...................................................................................... 29 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ...................................................................... 30 APÊNDICE: COMPROVANTE DE SUBMISSÃO DO ARTIGO............................. 33 APÊNDICE: CLASSIFICAÇÃO DO PERIÓDICO NA QUALIS CIÊNCIAS AGRÁRIAS............................................................................................................ 35 APÊNDICE: CERTIFICADO DO COMITÊ DE ÉTICA EM PESQUISA ................. 36 8 INTRODUÇÃO GERAL A toxoplasmose é uma doença parasitária com prevalência mundial. Esta zoonose acomete milhões de pessoas, sendo provocada pelo protozoário Toxoplasma gondii (REISCHL et al., 2003), parasito intracelular capaz de invadir os mais diversos tecidos de mamíferos e aves (JAUREGUI et al., 2001). Em humanos, os grupos com maior susceptibilidade são os indivíduos imunocomprometidos e os fetos. A toxoplasmose congênita ocorre quando a infecção primária se apresenta durante a gravidez, neste caso pode induzir abortos espontâneos ou sérias seqüelas ao feto como hidrocefalia, calcificações cerebrais, retardo mental, perturbações neurológicas, alterações oculares entre outras (REISCHL et al., 2003). Em indivíduos imunocompetentes a parasitose normalmente é assintomática. Em indivíduos imunocomprometidos como portadores do vírus da imunodeficiência adquirida - HIV, transplantados ou indivíduos com neoplasias, a sintomatologia é variável, dependendo da imunidade individual e da virulência da cepa do parasito, sendo capaz de levar os indivíduos acometidos ao óbito. A toxoplasmose é considerada uma das maiores causas de morbimortalidade em pacientes com síndrome de imunodeficiência adquirida - AIDS (EDVINSSON, 2006). Na vida pós-natal, os seres humanos infectam-se, na maioria das vezes, pela ingestão de oocistos esporulados encontrados no meio-ambiente ou pela ingestão de cistos teciduais em carne crua ou mal cozida de hospedeiros intermediários. Entretanto, na maioria das vezes, não se sabe qual destas vias é epidemiologicamente mais importante, sendo provável que as fontes principais de infecção pelo T. gondii sejam diferentes em populações humanas com hábitos culturais e alimentares distintos (TENTER, 1999). No Brasil, dados provenientes de genotipagem de cepas isoladas de diversas fontes, indicam uma alta freqüência de cepas recombinantes, o que evidencia que a maior parte das infecções ocorrem pela ingestão de oocistos, fortalecendo a importância dos felinos e da contaminação ambiental na transmissão e manutenção da enfermidade (FERREIRA et al., 2006). 9 Estimou-se em US$ 3.698.756 os custos relacionados à toxoplasmose congênita (ROBERTS, 1990). Em todos os países, a maior parte da população humana e animal apresenta parasitismo pelo T.gondii. Nos mais variados climas e condições sociais, as populações podem apresentar uma percentagem de indivíduos positivos que varia de 20 a 83% (um a dois bilhões de pessoas). Em algumas regiões, 40 a 70% de humanos adultos, aparentemente saudáveis, apresentam-se sorologicamente positivos para toxoplasmose. Provavelmente é o protozoário mais difundido entre a população humana e animal, incluindo as aves (TENTER, 2000). Nos Estados Unidos da América, pela análise dos dados de nove sistemas nacionais de notificação em saúde e dados publicados em periódicos especializados, estimam-se 1.500.000 infecções anuais em humanos, sendo cerca de 15% sintomáticas. Neste país, entre 1992 e 1996, a toxoplasmose foi a responsável por cerca de 5.000 hospitalizações, com pelo menos 2.500 casos de origem alimentar, o que representa 4,1% das internações causadas por infecções alimentares. No período foram registrados 750 óbitos por toxoplasmose, com cerca de 50% de infecções adquiridas pelo consumo de alimentos contaminados, o que representa 20,7% das mortes associadas às infecções de origem alimentar. Além disso, o desenvolvimento de casos crônicos de toxoplasmose, como naqueles indivíduos infectados pela via congênita, nos que desenvolvem corioretinite e em pacientes infectados pelo HIV, é estimado em 4.700 a 12.100 casos anuais (MEAD et al., 1999). Entre as fontes possíveis de infecção para o ser humano, as aves domésticas, notadamente as galinhas (Gallus gallus), principalmente as criadas de forma extensiva, vem sendo estudadas em várias regiões do mundo, notadamente por serem ótimas indicadoras da contaminação ambiental, dado os seus hábitos alimentares (DUBEY et al., 2006). No Brasil, como em outros países, tem-se verificado a prevalência da infecção de galinhas pelo T. gondii. Apontou-se uma prevalência de 10,3% entre as 155 amostras examinadas de soros de galinhas do município de Jaguapitã, PR, pela reação de imunofluorescência indireta, considerando como ponto de corte o título 16 (GARCIA et al., 2000). 10 No Estado de São Paulo, colhendo 82 amostras de galinhas de quatro diferentes localidades, foram encontradas 32 (39,02%) amostras sorologicamente reagentes ao método de aglutinação direta (MAD), considerando um título de 25 como indicativo de positividade (DUBEY et al., 2002). Em estudo realizado em Campos dos Goytacazes (RJ), encontrou-se uma prevalência de anticorpos anti-T. gondii da ordem de 65,15% entre as 198 amostras de soro examinadas pelo método de aglutinação direta. Houve variação da taxa de infecção entre as galinhas oriundas da zona rural (55,10%), suburbana (67,09%) e urbana (70,97%). Ao recolher amostras de cérebro e coração de 86 galinhas, isolou-se parasitos viáveis em camundongos de 61 (70,90%) das amostras testadas, inclusive de animais soronegativos, indicando assim o alto nível de contaminação ambiental e o risco para a saúde pública. Os autores frisam a descrição da área do estudo, onde em trabalho anterior (BAHIAOLIVEIRA, 2003) foi determinada uma infecção de 84% da população de menor condição social. No estudo citado, a prevalência de infecção esteve associada ao consumo de água não filtrada e/ou água obtida de lagos e riachos, provavelmente contaminados com oocistos do parasito lixiviados a partir do solo contaminado na época de chuvas (BAHIA-OLIVEIRA, 2003). No estado do Paraná, estudando aves da região de Santa Izabel do Ivaí, foram encontrados 16 de 40 (40%) das aves examinadas positivas ao método de aglutinação direta, considerando como ponto de corte a diluição 1:5 (DUBEY et al., 2006). A infecção pelo T. gondii pode ser diagnosticada indiretamente, por de métodos de detecção de anticorpos, e diretamente pela reação em cadeia da polimerase (PCR), hibridação, isolamento e detecção em cortes histológicos (TENTER, 2000). O T.gondii possui um genoma nuclear de aproximadamente 87Mb, o que equivale a um conteúdo de DNA de 100x10-15g/parasita (CORNELISSEN et al., 1984), com 11 cromossomos descritos, um genoma mitocondrial de seis kb e um genoma epissomal de 35 kb, na organela denominada apicoplasto (AJIOKA et al., 2001). Atualmente as técnicas utilizadas visam, na maioria das vezes, detectar 11 seqüências dos genes SAG-1, que codifica a principal proteína de membrana dos taquizoítos de T.gondii, do gene B1, de função desconhecida, ambos presentes no genoma nuclear e porções codificadoras de DNA ribossomal (rDNA). No genoma nuclear do T.gondii existe apenas uma cópia do gene SAG-1, 35 cópias do gene B1 e 110 cópias de genes para rDNA, o que em parte explica as diferenças encontradas na sensibilidade de muitos protocolos de PCR para a detecção de Toxoplasma (ELIS, 1998). Outra seqüência não codificadora, com 200 a 300 cópias no genoma nuclear do T.gondii, utilizada na PCR descrita por Homan et al. (2000), demonstrou sensibilidade maior que a detecção do gene B1, possibilitando ainda a quantificação de cistos parasitários no cérebro de animais experimentalmente infectados, usando um ensaio de quantificação competitivo. Os estudos que utilizam a PCR tradicional para detecção e discriminação de parasitas patogênicos são largamente empregados, o que ainda não ocorre em estudos que aplicam a técnica de PCR em tempo real na quantificação de parasitas (BELL; CARTWRIGHT, 2002). Na PCR em tempo real, os processos de amplificação e detecção são produzidos de maneira simultânea, usando marcadores fluorescentes. Há redução de problemas com contaminação, pois se utiliza um sistema fechado, não havendo necessidade de manipulação posterior dos produtos de amplificação. A detecção da fluorescência permite medir durante a amplificação a quantidade de DNA sintetizado, já que a fluorescência emitida é proporcional à quantidade de DNA formado, o que permite conhecer e registrar durante as sucessivas fases da reação à cinética de amplificação (COSTA, 2004). As metodologias de PCR “quantitativas” que não utilizam a técnica em tempo real apresentam diversas limitações inerentes ao uso de termocicladores convencionais e geralmente são descritos como métodos semiquantitativos. Técnicas semiquantitativas de PCR analisam produtos de amplificação limites, neste ponto, a síntese de "redes" (primers dimers) é significativamente reduzida, efeitos inibitórios acumulam e as diferenças de concentrações iniciais dos alvos de amplificação são mascaradas. Diferentemente do que se observa na quantificação por PCR em tempo real, que apresenta erros mínimos na performance (BELL; CARTWRIGHT, 2002). 12 Os sistemas de detecção por fluorescência utilizados na PCR em tempo real podem ser divididos em dois grupos: agentes intercalantes e sondas específicas marcadas com fluorocromos. Os agentes intercalantes são fluorocromos que aumentam significativamente a emissão de fluorescência, ao se unir a fitas de DNA de dupla hélice, e com isso o aumento de DNA em cada ciclo se reflete em um aumento proporcional da fluorescência emitida. SYBR® Green é o sistema de detecção mais utilizado neste grupo e apresenta como vantagens a facilidade na otimização das reações, além de um custo reduzido quando comparado às sondas específicas. A desvantagem é a redução da especificidade ocasionada pelo aumento na emissão de fluorescência gerada por produtos de amplificação inespecíficos da PCR e dímeros de primers (COSTA, 2004). Para analisar a presença de dímeros de primers ou outros produtos de amplificação inespecíficos da PCR, utiliza-se no final da reação uma curva de dissociação, para confirmação ou não da especificidade e acurácia da quantificação (NAGY, 2006). A curva de dissociação é baseada na aplicação de um gradiente de temperaturas crescentes depois da PCR, para monitorar a cinética de dissociação dos fragmentos amplificados, desta forma é possível comparar se a temperatura de melting (Tm) do DNA amplificado é compatível com a do DNA avaliado (COSTA, 2004). As sondas específicas são sondas marcadas com fluorocromos. A emissão da fluorescência é determinada por um processo de transferência de energia fluorescente mediante ressonância (FRET) entre as moléculas. As mais utilizadas são as sondas de hidrólise, denominadas TaqMan®, sondas de hibridização (molecular beacons) e primers modificados como Scorpion™ (COSTA, 2004). Diversos artigos descrevem ensaios moleculares para detecção de toxoplasmose, mas a maioria está direcionado ao diagnóstico humano ou estudos filogenéticos (JAUREGUI et al., 2001). Um estudo experimental foi realizado para o desenvolvimento de um ensaio por PCR em tempo real para detecçao de T. gondii em tecidos de suínos e camundongos, utilizando o sistema TaqMan®. Este estudo demonstrou que a 13 quantificação de T. gondii nesta metologia traz como vantagens em relação aos outros métodos moleculares o fato da reação ser realizada em sistema fechado e sem necessidade de manipulação posterior, a rapidez do ensaio, com resultados que podem ser confirmados dentro de 24 horas além da sensibilidade e ampla faixa de linearidade nas concentrações de DNA (JAUREGUI et al., 2001). A PCR em tempo real para quantificação de T. gondii pelo sistema SYBR®Green foi utilizada em um modelo experimental de toxoplasmose congênita. Neste estudo a detecção e a quantificação do parasito foram avaliadas em cobaias (Cavia porcelus), pela da amplificação do gene B1. A quantificação por PCR em tempo real foi comparada a nested PCR, apresentando sensibilidade inferior quando utilizado o gene B1 (FLORI et al., 2002). Em animais, testes sorológicos para identificação de infecção por T. gondii em suínos e em estudos epidemiológicos, seguidos do isolamento do parasita em camundongos ou gatos para confirmação da infecção são usualmente utilizados. Porém esta prática traz como desvantagem a necessidade de utilização de animais para o isolamento, o tempo necessário para o processo (de seis a oito semanas), tornando seu custo e o tempo para um diagnóstico definitivo, elevados. Com o desenvolvimento da técnica de PCR em tempo real, pode-se suprir estas desvantagens, além de ser um método direto, o processo pode ser completado em 24 horas ou menos (JAUREGUI et al., 2001). A inexistência de artigos descrevendo a detecção e quantificação do Toxoplasma gondii em tecidos de aves utilizando a PCR em tempo real, a redução do tempo para a finalização do diagnóstico e a importância das galinhas como marcadoras da contaminação ambiental, demonstram a relevância deste estudo. 14 QUANTIFICAÇÃO DE TOXOPLASMA GONDII PELA PCR EM TEMPO REAL EM TECIDOS DE GALINHAS SOROPOSITIVAS CRIADAS EXTENSIVAMENTE DO ESTADO DO PARANÁ, BRASIL Cleiton Paulo Aigner1, Aristeu Vieira da Silva2 1 Mestrado em Biotecnologia Aplicada à Agricultura, Universidade Paranaense/Alvaro Centro de Análises e Pesquisas Clínicas/Instituto de Investigação Científica do Paraná – IICP, Rua General Osório 212 – Centro, Cascavel, PR, Brazil. 2 Mestrado em Biotecnologia Aplicada à Agricultura / Mestrado em Ciência Animal, Universidade Paranaense – UNIPAR, Praça Mascarenhas de Moraes, s/n – Centro, Umuarama, PR, Brazil. Resumo Toxoplasma gondii é um protozoário parasito intracelular obrigatório, de distribuição mundial, que acomete todas as espécies homeotérmicas, incluindo o ser humano e animais de companhia e produção. As galinhas criadas extensivamente têm sido estudadas em todo o mundo como marcadoras da contaminação ambiental e no estudo da variabilidade genética do parasito. Este trabalho objetivou quantificar o parasito em amostras de cérebro e coração de galinhas sorologicamente positivas ao parasito, pela realtime PCR para um gene repetitivo. Amostras de sangue de 65 galinhas foram avaliadas para a presença de anticorpos pelo método de aglutinação direta (MAD), encontrando-se 28 amostras positivas. De 26 destas galinhas foram coletados cérebro e coração, submetidos à digestão pela pepsina e extração de DNA pelo Trizol®. O DNA parasitário foi amplificado e detectado em equipamento StepOneTM Real Time PCR System pelo sistema SYBR®Green. A quantificação do DNA se deu pela comparação entre os sinais de amplificação das amostras com aqueles obtidos em suspensões de amostras de cérebro e 15 coração artificialmente contaminadas com 104 a 100 taquizoítos da cepa RH. DNA parasitário foi detectado em 24 das 26 amostras examinadas, sem diferença significativa entre os tecidos examinados, seja na freqüência de positividade, seja na quantidade de parasitos por grama de tecido. Correlação positiva entre os títulos de anticorpos e a quantificação de parasitos foi registrada para as amostras de cérebro, mas não para as amostras de coração. Palavras-chave: Toxoplasma gondii; Galinha; PCR em tempo real; Diagnóstico; Quantificação 1. Introdução A toxoplasmose é uma doença parasitária com prevalência mundial. Esta zoonose acomete milhões de pessoas, sendo provocada pelo protozoário Toxoplasma gondii (Reischl et al., 2003), parasito intracelular capaz de invadir os mais diversos tecidos de mamíferos e aves (Jauregui et al., 2001). Em humanos, os grupos com maior susceptibilidade são os indivíduos imunocomprometidos e os fetos. A toxoplasmose congênita pode ocorrer quando a infecção primária se dá durante a gravidez, induzindo abortos espontâneos ou sérias seqüelas ao feto como hidrocefalia, calcificações cerebrais, retardo mental, perturbações neurológicas e alterações oculares, entre outras (Reischl et al., 2003). Na vida pós-natal, os seres humanos infectam-se, na maioria das vezes, pela ingestão de oocistos esporulados encontrados no meio-ambiente ou pela ingestão de cistos teciduais em carne crua ou mal cozida de hospedeiros intermediários. Entretanto, na maioria das vezes, não se sabe qual destas vias é epidemiologicamente mais importante, sendo provável que as fontes principais de infecção pelo T. gondii sejam diferentes em populações humanas com hábitos culturais e alimentares distintos (Tenter, 1999). No 16 Brasil, dados provenientes de genotipagem de cepas isoladas de diversas fontes, indicam uma alta freqüência de cepas recombinantes, o que evidenciaria que a maior parte das infecções ocorreriam pela ingestão de oocistos, fortalecendo a importância dos felinos e da contaminação ambiental na transmissão e manutenção da enfermidade (Ferreira et al., 2006). As galinhas (Gallus gallus), principalmente as criadas de forma extensiva, vêm sendo estudadas em várias regiões do mundo, por serem ótimos indicadores da contaminação ambiental, dado os seus hábitos alimentares (Dubey et al., 2006). Nestas aves altas taxas de infecção são frequentemente encontradas em todos os países estudados, e no Brasil são comuns taxas de 39% (Dubey et al., 2002) a 66% (Dubey et al., 2006). Para os estudos genéticos das cepas circulantes em populações de aves criadas extensivamente, frequentemente recorre-se a inoculação de camundongos com tecidos obtidos das aves, e posterior análise molecular das cepas isoladas. Entretanto, além de consumir até dois meses para que se obtenha um resultado final, a utilização de animais é dispendiosa e incorre em entraves éticos. Por outro lado, apesar da proporção de cepas isoladas em camundongos a partir de tecidos de galinhas soropositivas ser de cerca de 75% na maioria dos trabalhos conduzidos no Brasil, De Oliveira et al. (2008) obtiveram sucesso de isolamento em 28,4% das aves soropositivas. Adicionalmente, a passagem do parasito pelo animal pode selecionar genótipos mais virulentos para esta espécie (Villena et al., 2004), prejudicando a interpretação e o alcance dos resultados obtidos nestas análises. Desta maneira, este estudo propõe-se avaliar a PCR em tempo real para uma seqüência genômica repetitiva para detecção de T. gondii em amostras de cérebro e coração de galinhas de criação extensiva sorologicamente reagentes ao parasito, de forma a propor uma alternativa rápida para análise e triagem de amostras candidatas a genotipagem. Adicionalmente, o estudo teve como objetivo avaliar a correlação entre os 17 títulos de anticorpos séricos e a quantidade de parasitos detectado em cada tecido examinado. 2. Material e Métodos 2.1. Animais e exame sorológico Amostras de sangue de 65 galinhas criadas extensivamente em cinco propriedades rurais localizadas no município de Toledo, PR, Brasil, foram coletadas pela punção da veia da asa. O soro obtido por centrifugação foi examinado pelo método de aglutinação direta (MAD), a diluição inicial foi de 1:25, e os soros reagentes, titulados em diluições sucessivas na base dois até 1:3200 (Desmonts e Remington, 1980). 2.2. Preparação dos tecidos As aves reagentes ao MAD foram abatidas por deslocamento crânio cervical e coletados o coração e o cérebro, acondicionados em tubos Falcon com 30 mL de solução de antibióticos (penicilina G + estreptomicina) e mantidas sob refrigeração até o processamento laboratorial. No Laboratório de Medicina Veterinária Preventiva e Saúde Pública da Universidade Paranaense, Umuarama, PR, Brasil, estas amostras foram submetidas, individualmente, a digestão em solução ácida de pepsina segundo Dubey (1998). O sedimento obtido após o último estágio de centrifugação foi pesado e ressuspendido em cinco vezes o volume em solução salina 0,9%, de forma obter 200 µg de tecido por mL de suspensão. Esta suspensão foi imediatamente congelada a -20oC para extração de DNA e detecção molecular de Toxoplasma gondii realizada na unidade de Biologia Molecular do Alvaro Centro de Análises e Pesquisas Clínicas, em Cascavel, PR, Brasil. 2.3. PCR em tempo real Extração de DNA 18 O DNA foi extraído de 400µL da suspensão de tecidos com TRIZOL® LS Reagent (Invitrogen, Paisley, UK) seguindo o protocolo do fabricante. Sensibilidade analítica da PCR em tempo real Duas suspensões de tecido, obtidas a partir do cérebro e coração de galinhas sabidamente negativas para T. gondii, foram artificialmente contaminadas com 104 taquizoítos de T. gondii, cepa RH. Desta suspensão foi extraído o DNA total, diluído em série na base 10 em água destilada estéril, obtendo-se soluções de DNA correspondentes a 103, 102, 101 e 100 taquizoítos do parasito. Uma curva padrão para cálculo da amplificação foi obtida pela diluição seriada do DNA de T. gondii e subseqüente análise das cinco concentrações (104, 103, 102, 101 e 100). Estas suspensões foram submetidas a PCR em tempo real como descrito para as amostras de tecido. Amplificação e quantificação do DNA pela PCR em tempo real Utilizou-se para a detecção de fluorescência na PCR em tempo real o sistema SYBR®Green, por meio do equipamento StepOne™ Real Time PCR System (Applied Biosystems). Os oligonucletídeos utilizados (Invitrogen) amplificam uma região de 529 pares de base, que se repete de 200 a 300 vezes no genoma do parasito, sendo as seqüências direta e reversa respectivamente: 5’CACAGAAGGGACAGAAGT e 5’TCGCCTTCATCTACAGTC (Edvinsson et al., 2006). Para o ensaio, foi utilizado como volume final de reação, 20 μL, sendo 10 µL de SYBR®Green PCR Master Mix (Applied Biosystems), 1,5 µL de cada oligonucleotídeo na concentração de 10 pmol/µL, 5 µL de DNA e 2 µL de água destilada estéril. A reação ocorreu com incubação inicial a 95oC por cinco minutos (hot start), seguido de 35 ciclos de 95°C por 30 s, 55°C por 30 s e 72°C for 1,5 min, finalizando com uma extensão adicional 72°C por sete minutos. 19 O número de parasitos por grama de tecido foi obtido pela fórmula (FN x 1000)/80, onde o fator de normalização (FN) foi obtido por: (Concentração de DNA da curva-padrão / Concentração de DNA da amostra) x número de amplicons na amostra. As amostras que apresentaram sinal de amplificação menor que o limite inferior de detecção da curva padrão foram submetidas a um segundo ensaio de 40 ciclos, seguido de uma análise pela curva de melting para avaliar a presença de dímeros de primers ou outros produtos não-específicos da PCR. 2.4. Análise estatística A comparação da freqüência de amplificação de DNA segundo o tecido avaliado foi realizada pelo teste de McNemar, enquanto que a quantificação de DNA entre os tecidos foi comparada pelo teste de Wilcoxon. A correlação entre o título de anticorpos e a quantificação do parasito em cada um dos tecidos avaliados foi realizada pelo cálculo do coeficiente de Spearmann. Foram considerados significativos valores de p menores que 0,05. 3. Resultados 3.1. Sorologia Das 65 amostras de soro testadas, 28 (43,1%) foram positivas ao MAD, com os títulos descritos na Tabela 1. Foram coletados o cérebro e o coração de 26 aves positivas ao MAD para extração de DNA e amplificação do mesmo pela PCR em tempo real. 20 Tabela 1. Propriedades, animais e respectivos títulos ao MAD e quantificação de Toxoplasma gondii em amostras de cérebro e coração de galinhas criadas extensivamente. Toledo, PR, Brasil. 2008. Quantificação de T. gondii (parasitos/g) Propriedade Animal Título ao MAD Cérebro Coração 1 7 ≥ 3200 672.06 ND 1 10 50 114.55 118.58 1 11 ≥ 3200 NQ ND 1 15 800 ND 49.26 1 17 800 486.70 ND 1 18 200 109.67 155.21 1 19 800 NQ 58.07 2 3 400 NQ 571.76 2 4 200 NQ 33.49 2 8 1600 234.02 ND 2 9 400 228.23 982.80 2 10 1600 ND 332.98 2 13 800 263.31 23.68 2 16 800 93.02 323.96 2 17 400 435.20 831.65 2 18 400 437.46 578.82 2 19 1600 1470.09 NQ 3 1 800 ND ND 3 2 1600 22742.38 62.81 4 5 200 518.93 NQ 4 8 1600 NQ 60.06 4 9 800 500.08 NQ 5 1 400 1350.80 ND 5 2 800 ND ND 5 3 ≥ 3200 6545.50 NQ 5 9 400 81.10 163.75 ND: não detectável NQ: não quantificável 21 3.2. Sensibilidade analítica A figura 1 apresenta a curva padrão de amplificação do DNA obtido das diluições sucessivas de T. gondii nas suspensões de cérebro e coração. Como se verifica na figura, nos tecidos em que o parasito foi diluído, a detecção do mesmo foi obtida em todos os pontos de diluição testados. Com isso a PCR obteve uma sensibilidade analítica correspondente a um parasito por mL de suspensão. A B Figura 1. Detecção pela PCR em tempo real de um elemento repetitivo de 529 pares de base de T. gondii. Gráficos de amplificação com 104(a), 103(b), 102(c), 101(d) e 100(e) taquizoítos da cepa RH como amostra inicial de DNA homogeneizada com suspensões de cérebro (A) ou coração (B) de galinha. ΔRn, sinal de fluorescência. 3.3. PCR em tempo real No ensaio de quantificação, das 26 amostras de cérebro testadas, em 22 (84,6%) houve amplificação de DNA de T. gondii. Destas amostras, cinco apresentaram amplificações inferiores ao limiar mínimo de detecção da curva padrão, sendo os resultados destas amplificações confirmados em um segundo ensaio com 40 ciclos seguido por uma curva de dissociação. Para as 26 amostras de coração avaliadas, a detecção de DNA do parasito foi observada em 21 (80,8%), onde seis destas amostras foram 22 confirmadas no segundo ensaio. Ao comparar os tecidos quanto à amplificação de DNA, não houve diferença entre eles quando avaliada a proporção de amostras positivas (p=0,6547) e mesmo quanto à quantidade de DNA parasitário por grama de amostra (p=0,4258). Considerando os resultados obtidos em cérebro e coração, houve amplificação de DNA de T. gondii em 24 (92,3%) das aves avaliadas. A Tabela 1 demonstra os valores de quantificação nas amostras que apresentaram sinal de amplificação acima do limiar inferior de detecção da curva padrão, ajustadas para um grama de tecido. Nas amostras de cérebro (Figura 2) foram detectados de 81 a 22742 parasitos por grama, com mediana de 437 parasitos por grama de tecido, e de 23 a 982 parasitos por grama, com mediana de 155 nas amostras de coração. A B Figura 2. Detecção pela PCR em tempo real de um elemento repetitivo de 529 pares de base de T. gondii. Gráficos de amplificação com 104(a), 103(b), 102(c), 101(d) e 100(e) taquizoítos da cepa RH como amostra inicial de DNA homogeneizada com suspensões de cérebro de galinha, e uma amostra de cérebro de galinha soropositiva (f) com alta (A) ou baixa (B) quantidade de DNA de T. gondii. ΔRn, sinal de fluorescência. 23 Quando confrontados pelo teste de Spearmann, verificou-se correlação significativa entre os títulos de anticorpos e a quantificação de parasitos no cérebro (r=0,5315; p=0,0281 – Figura 3), não se verificando o mesmo comportamento para as amostras de coração (r=0,1955; p=0,4850). Figura 3. Correlação entre os títulos ao MAD e o número de parasitos/g de tecido cerebral. Toledo, PR, Brasil. 2008. Discussão Este trabalho demonstra a amplificação de DNA de T. gondii em amostras de cérebro e coração de galinhas soropositivas pelo método de aglutinação direta. Como no trabalho de Jauregui et al. (2001), em amostras de cérebro de suínos, foi demonstrada correlação entre os títulos de anticorpos séricos e a quantidade de DNA do parasito na amostra. No presente trabalho, entretanto, quando avaliada esta correlação em amostras de coração, não houve significância. Este resultado reflete a irregularidade de recuperação do parasito dos órgãos de galinhas, já verificado em trabalhos de inoculação experimental 24 (Dubey et al., 1993; Kaneto et al., 1997), normalmente com superioridade de detecção no cérebro, seguido do coração. Em duas amostras com título pelo MAD de 800, não se observou amplificação de DNA de T. gondii. Possíveis causas para o fato são as de que os cistos não necessariamente serão localizados somente nos tecidos avaliados ou ainda a possibilidade de degradação do DNA durante o processo de digestão. A elevada sensibilidade do método em conjunto com a região do genoma utilizada, demonstrada pela detecção tanto em cérebro quanto em coração de um parasito por mL, reflete a sensibilidade descrita por Edvinsson et al. (2006), que também utilizaram a PCR em tempo real dirigida para um elemento repetitivo de 529 pares de base com o sistema SYBR®Green, porém em amostras de sangue de humanos transplantados e imunocomprometidos. Jauregui et al. (2001) detectaram a mesma sensibilidade em amostras de tecidos de suíno e camundongos, porém utilizando o sistema TaqMan e amplificação de seqüência dirigida para a região ITS1 do gene 18S rRNA. Em nove reações (cinco de cérebro e quatro de coração) o número de cópias detectadas foi inferior ao menor ponto da curva padrão. Para excluir a possibilidade de que o sinal de amplificação observado nestas amostras fosse decorrente de dímeros de primers, produtos inespecíficos da PCR e confirmar se o produto correto foi amplificado, foi realizado um segundo ensaio seguido de uma curva de dissociação. A análise deste ensaio confirmou que os produtos amplificados não eram inespecíficos. Curvas de dissociação com este objetivo, também foram utilizadas por de Edvinsson et al. (2006) e Nagy et al. (2006) em trabalhos com T. gondii. Não se observou diferença estatística (p=0,6547) na detecção do T. gondii entre os tecidos analisados, fato que vai ao encontro com a informação que os cistos 25 frequentemente são encontrados concomitantemente em coração e cérebro, por serem os órgãos preferenciais de alojamento dos cistos nesta espécie (Dubey et al., 1993). Kijlstra et al. (2008) testaram, por um ensaio quantitativo duplex baseado na TaqMan®PCR em tempo real usando um elemento repetitivo (AF146527) como alvo primário e uma seqüência de DNA ribossomal 18S das células hospedeiras como alvo secundário, amostras de coração de 79 roedores e 22 Crocidura russula (Mammalia:Soricidae); em 71 destes animais os cérebros também foram testados. Doze animais foram positivos para a presença de DNA de T. gondii, sendo oito em coração e quarto em cérebro, e nenhum animal com o coração e o cérebro positivos, resultados que divergem do nosso estudo, onde se encontrou positividade tanto em cérebro como em coração em 16 dos 24 animais positivos (66,67%). Jauregui et al. (2001) aponta a dificuldade de detecção do T. gondii em tecidos de animais de grande porte, por motivos como erros de amostragem, local de preferência do parasito e a possibilidade de, ao executar qualquer teste para a detecção de cistos teciduais, resultados falso-negativos poderem resultar de amostras de tamanho insuficiente. Esta dificuldade e a possibilidade de resultados falsos negativos é reduzida quando se trabalha com galinhas, pois se possibilita a utilização do órgão inteiro, tanto para o cérebro quanto para o coração. Por outro lado, a seqüência gênica alvo utilizada para amplificação também influencia o sucesso da técnica, como demonstrado por Da Silva & Langoni (2003), que comparam quatro pares de oligonucleotídeos na amplificação de DNA de T. gondii em amostras de cérebro e músculo de ratos experimentalmente infectados, encontrando superioridade para a seqüência repetitiva, mesma utilizada neste trabalho. Os resultados encontrados confirmam a sensibilidade analítica da detecção do parasito em amostras de tecido de aves pela utilização da amplificação de um gene repetitivo num sistema de PCR em tempo real baseado em detecção fluorescente pelo 26 SYBR®Green. A quantificação do parasito nos tecidos demonstra a possibilidade de aplicação de outros sistemas de detecção molecular para análise genotípica diretamente nas amostras de tecidos, permitindo a comparação com os resultados obtidos pela inoculação em camundongos, e, eventualmente, prescindido da utilização da bioprova para estas análises. Agradecimentos Os autores agradecem a Cintia Larissa Schmitt e Marciano Antunes, do Alvaro Centro de Análises e Pesquisas Clínicas pelo auxílio prestado, a Ronaldo César da Rosa e Rodrigo Mattei (PIBIC/UNIPAR), Jacqueline Batista de Araújo e Franciele Rossandra Piassa (Mestrado em Ciência Animal), pelo auxílio na obtenção e preparação das amostras. Ao Rodrigo Cosa da Silva e Vanessa Yuri de Lima, da Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da UNESP pelo auxílio com as referências bibliográficas, e à Universidade Paranaense, à Fundação Araucária e ao Alvaro Centro de Análises e Pesquisas Clínicas pelo suporte financeiro a este projeto. 27 Referências Da Silva, A.V.; Langoni, H. Comparação de oligonucleotídeos na PCR para detecção de Toxoplasma gondii em tecido muscular e nervoso de ratos Fischer experimentalmente infectados. 2003. Arq. Cien. Vet. Zool. UNIPAR, 6, 201. De Oliveira, L.; Costa Junior, L.M.; de Melo, C.; Ramos Silva, J.; Bevilaqua, C.M.; Azevedo, S.; Muradian, V.; Araujo, D.; Dubey, J.P.; Gennari, S.M. 2008. Toxoplasma gondii isolates from free-range chickens from the northeast region of Brazil. J. Parasitol., 25 (in press). Desmonts, G.; Remington, J.S.. 1980. Direct agglutination test for diagnosis of Toxoplasma infection: Method for increasing sensitivity and specificity. J. Clin. Microbiol., 11, 562-568. Dubey, J.P. 1998. Refinement of pepsin digestion method for isolation of Toxoplasma gondii from infected tissues. Vet. Parasitol., 74, 75-77. Dubey, J.P.; Gennari, S.M.; Labruna, M.B.; Camargo, L.M.; Vianna, M.C.; Marcet, P.L.; Lehmann, T. 2006. Characterization of Toxoplasma gondii isolates in free-range chickens from Amazon, Brazil. J. Parasitol., 92, 36-40. Dubey, J.P.; Graham, D.H.; Blackston, C.R.; Lehmann, T.; Gennari, S.M.; Ragozo, A.M.; Nishi, S.M.; Shen, S.K.; Kwok, O.C.; Hill, D.E.; Thulliez, P. 2002. Biological and genetic characterisation of Toxoplasma gondii isolates from chickens (Gallus domesticus) from São Paulo, Brazil: unexpected findings. Int. J. Parasitol., 32, 99-105. Dubey, J.P.; Ruff, M.D.; Camargo, M.E.; Shen, S.K.; Wilkins, G.L.; Kwok, O.C.; Thulliez, P. 1993. Serologic and parasitologic responses of domestic chickens after oral inoculation with Toxoplasma gondii oocysts. Am. J. Vet. Res., 54, 1668-1672. Edvinsson, B.; Lappalainen, M.; Evengård, B. 2006. Real-time PCR targeting a 529-bp repeat element for diagnosis of toxoplasmosis. Clin. Microbiol. Infect., 2, 131-136. 28 Ferreira, A.M.; Vitor, R.W.; Gazzinelli, R.T.; Melo, M.N. 2006. Genetic analysis of natural recombinant brazilian Toxoplasma gondii strains by multilocus PCR-RFLP. Infec. Gen. Evol., 6, 22-31. Jauregui, L.H.; Higgins, J.; Zarlenga, D.; Dubey, J.P.; Lunney, J.K. 2001. Development of a real-time PCR assay for detection of Toxoplasma gondii in pig and mouse tissues. J. Clin. Microbiol. Buenos Aires, 39, 2065-2071. Kaneto, C.N.; Costa, A.J.; Paulillo, A.C.; Moraes, F.R,; Murakami, T.O.; Meireles, M.V, 1997. Experimental toxoplasmosis in broiler chickens. Vet. Parasitol., 69, 203-210. Kijlstra, A.; Meerburg, B.; Cornelissen, J.; De Craeye, S.; Vereijken, P.; Jongert, E. 2008. The role of rodents and sherews in the transmission of Toxoplasma gondii to pigs. Veterinary Parasitology. (in press). Nagy, B.; Bán, Z.; Beke, A.; Nagy, G.R.; Lázár, L.; Papp, C.; Tóth-Pál, E.; Papp, Z. 2006. Detection of Toxoplasma gondii from amniotic fluid, a comparison of four different molecular biological methods. Clin. Ch. Acta, 368, 131-137. Reischl, U.; Bretagne, S.; Krüger, D.; Ernault, P.; Costa, J.M. 2003. Comparison of two DNA targets for the diagnosis of Toxoplasmosis by real-time PCR using fluorescence resonance energy transfer hybridization probes. BMC Infect. Dis., 2, 3-7. Tenter, A.M.; 1999. Current knowledge on the epidemiology of infections with Toxoplasma. Tokai J. Exp. Clin. Med., 23, 291. Villena, I.; Marle, M.; Darde, M.L.; Pinon, J.M.; Aubert, D. 2004. Toxoplasma strain type and human disease: risk of bias during parasite isolation? Trends in Parasitol., 20, 160-162. 29 CONCLUSÕES GERAIS O estudo de quantificação de T. gondii em amostras de cérebro e coração de galinhas pela PCR em tempo real, apresentou-se como um teste rápido podendo ser utilizado como alternativa para análise e triagem de amostras de animais candidatas à genotipagem. A correlação entre os títulos de anticorpos séricos e a quantidade de parasitos detectados foi observada quando o tecido analisado foi cérebro. Os resultados positivos apresentados ao avaliar-se T. gondii em tecidos de galinha, por exemplo, a rapidez do teste, abrem perspectivas futuras para a utilização desta técnica na pesquisa de outros parasitas ou microrganismos em galinhas em situações onde a necessidade de agilidade no diagnóstico é fundamental. Enfermidades como a coccidiose, micoplasmoses e salmoneloses, importantes na produção avícola podem ter o diagnóstico maximizado pela adoção de técnicas moleculares de alta performance. As mesmas perspectivas podem ser avaliadas na detecção de microrganismos em outras espécies, principalmente quando há a necessidade de diagnóstico rápido e específico, como nos casos de suspeitas de febres hemorrágicas e outras viroses de progressão clínica rápida. 30 REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS AJIOKA, J.W.; FITZPATRICK, J.M.; REITTER, C.P. Toxoplasma gondii genomics: shedding light on pathogenesis and chemotherapy. Experimental Review of Molecular Medicine, 2001 [cited 2008]. Avaiable from: http://www- ermm.cbcu.cam.ac.uk/01002204h.htm. BAHIA-OLIVEIRA, L. M. G. et al. Highly endemic waterborne toxoplasmosis in north Rio de Janeiro State, Brazil. Emerging Infectious Diseases, v.9, n.1, p.5562, 2003. BELL, A. S.; CARTWRIGHT, L. C. R. Real-time quantitative PCR in parasitology. Trends in Parasitology, v.18, n.8, p.337-342, 2002. CORNELISSEN, A. W. C. A.; OVERDULVE, J. P.; van der PLOEG. M. Determination of nuclear DNA of five eucoccidian parasites, Isospora (Toxoplasma) gondii, Sarcocystis cruzi, Eimeria tenella, E.acervulina and Plasmodium berghei, with special reference to gamontogenesis and meiosis in I.(T.)gondii. Parasitology, v.88, n.3, p.531-553, 1984. COSTA, J. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a tiempo real. Enfermedades Infecciosas. Microbiologia e Clinica, v.22, n.55, p.299-305, 2004. DUBEY, J. P. et al. Biological and genetic characterization of Toxoplasma gondii isolates from chickens (Gallus domesticus) from São Paulo, Brazil: unexpected findings. International Journal for Parasitology, v.32, n.1, p.99-105, 2002. DUBEY, J. P. et al. Characterization of Toxoplasma gondii isolates in free-range chickens from Portugal. Journal of Parasitology, v.92, n.1, p.184-186, 2006. 31 EDVINSSON, B. Diagnosis of pulmonary infection with Toxoplasma gondii in immunocompromised HIV-positive patients by real-time PCR. 2006. 66 f. Thesis (Ph.D.) - Karolinska University, Estocolmo, 2006. ELLIS, J. T. Polymerase chain reaction approaches for the detection of Neospora caninum and Toxoplasma gondii. International Journal for Parasitology, v.28, n.7, p. 1053-1060, 1998. FERREIRA, A. M. et al. Genetic analysis of natural recombinant brazilian Toxoplasma gondii strains by multilocus PCR-RFLP. Infection, Genetics and Evolution, v.6, n.1, p.22-31, 2006. FLORI, P. et al. Experimental model of congenital toxoplasmosis in guinea-pigs: use of quantitative and qualitative PCR for the study of maternofetal transmission. Journal of Medical Microbiology, v.51, n.10, p. 871-878, 2002. GARCIA, J. L. et al. Soroprevalência do Toxoplasma gondii em galinhas (Gallus gallus domesticus) de criações domésticas, oriundas de propriedades rurais do Norte do Paraná, Brasil. Ciência Rural, v.30, n.1, p.123-127, 2000. HOMAN, W. L. et al. Identification of a 200- to 300-fold repetitive 529 bp DNA fragment in Toxoplasma gondii, and its use for diagnostic and quantitative PCR. International Journal for Parasitology, v.30, n.1, p.69-75, 2000. JAUREGUI, L. H. et al. Development of a real-time PCR assay for detection of Toxoplasma gondii in pig and mouse tissues. Journal of Clinical Microbiology, v.39, n.6, p.2065-2071, 2001. MEAD, P.S. et al. Food related illness and death in the United States. Emerging Infectious Diseases, v.5, n.6, p.607-625, 1999. 32 NAGY, B. et al. Detection of Toxoplasma gondii from amniotic fluid, a comparison of four different molecular biological methods. Clinica Chimica Acta, v.368, n.1-2, p.131-137, 2006. REISCHL, U. et al. Comparison of two DNA targets for the diagnosis of Toxoplasmosis by real-time PCR using fluorescence resonance energy transfer hybridization probes. BMC Infectious Disease, v.2, n.3, p.3-7, 2003. ROBERTS, T.; FRENKEL, J. K. Estimating income losses and other preventable costs caused by congenital toxoplasmosis in people in the United States. Journal of the American Veterinary Medical Association, v.196, n.2, p.249-256, 1990. TENTER, A. M. Current knowledge on the epidemiology of infections with Toxoplasma. Tokai Journal of Experimental and Clinical Medicine, v.23, n.1, p.291, 1999. TENTER, A. M.; HECKEROTH, A. R.; WEISS, L. M. Toxoplasma gondii: from animals to humans. International Journal of Parasitology, v.30, n.12-13, p.1217-1251, 2000. 33 APÊNDICE: COMPROVANTE DE SUBMISSÃO DO ARTIGO 34 35 APÊNDICE: CLASSIFICAÇÃO DO PERIÓDICO NA QUALIS CIÊNCIAS AGRÁRIAS 36 APÊNDICE: CERTIFICADO DO COMITÊ DE ÉTICA EM PESQUISA