Identificação da mutação A1762T/G1764A do vírus da

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UNIVERSIDADE FEDERAL DE CIÊNCIAS DA SAÚDE DE
PORTO ALEGRE – UFCSPA
CURSO DE PÓS-GRADUAÇÃO EM HEPATOLOGIA
Adaliany Cecilia da Silva Souza
Identificação da mutação
A1762T/G1764A do vírus da hepatite
B em pacientes de Porto Alegre
Porto Alegre
2015
Adaliany Cecília da Silva Souza
Identificação da mutação A1762T/G1764A do
vírus da hepatite B em pacientes de Porto
Alegre
Dissertação submetida ao Programa de PósGraduação em Hepatologia da Fundação
Universidade Federal de Ciências da Saúde de
Porto Alegre como requisito para a obtenção
do grau de Mestre.
Orientadora: Profa. Drª Ana Beatriz Gorini da Veiga
Co-orientador: Dr. Nélson Alexandre Kretzmann Filho
Porto Alegre
2015
Catalogação na Publicação
da Silva Souza, Adaliany Cecília
Identificação da mutação A1762T/G1764A do vírus da
hepatite B em pacientes de Porto Alegre / Adaliany
Cecília da Silva Souza. -- 2015.
44 p. : tab. ; 30 cm.
Dissertação (mestrado) -- Universidade Federal de
Ciências da Saúde de Porto Alegre, Programa de
Pós-Graduação em Medicina: Hepatologia, 2015.
Orientador(a): Ana Beatriz Gorini da Veiga ;
coorientador(a): Nélson Alexandre Kretzmann Filho .
1. Hepatite B. 2. Mutação A1762T/G1764A do VHB. I.
Título.
Sistema de Geração de Ficha Catalográfica da UFCSPA com os dados
fornecidos pelo(a) autor(a).
Adaliany Cecília da Silva Souza
Identificação da mutação A1762T/G1764A do vírus da hepatite B em pacientes de Porto
Alegre
Dissertação de Mestrado submetida à Comissão Julgadora do Programa de Pós-Graduação em
Hepatologia da Fundação Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre como
parte dos requisitos necessários à obtenção do Grau de Mestre em Medicina: Hepatologia.
Banca Examinadora:
_________________________________________________________
_________________________________________________________
__________________________________________________________
Data de Aprovação ____/____/______
Porto Alegre
2015
Dedico ao meu esposo, Antonio David, ao meu querido e lindo filho, Artur David,
por toda parceria e dedicação na conquista do meu sonho. Em especial ao meu amado esposo
principalmente por compreender minha ausência, por sempre ofertar apoio, me confortar com
palavras amorosas, com muito carinho, bem como por dedicar a mim motivação e incentivos
constantes ao longo de muitos anos.
AGRADECIMENTOS
Aos meus pais, Eliane e Adailton, pela base familiar que me foi oferecida. Aos meus
amados irmãos, Lidiane e Eli, por todo amor, carinho e compreensão, aos meus cunhados e
cunhadas.
Aos meus amados sobrinhos: Renan, Felipe, João, Luiza, Julia e Gustavo, por todo
carinho e compreensão de minha ausência.
À minha orientadora, Dra Ana Beatriz Gorini da Veiga, por todo carinho,
compreensão, ensinamentos e esforço para conclusão deste meu sonho. Muito obrigada.
Ao meu co-orientador, Dr. Nélson Alexandre Kretzmann Filho.
À aluna de Iniciação Científica Lenise Oliveira e à Mestranda Giórgia Marasca por
toda a ajuda.
À Professora Dra Cristiane Valle Tovo e ao médico Dimas Alexandre Kliemann,
pelo apoio e dedicação.
A toda equipe do Setor de Infectologia do Hospital Conceição, por todo o carinho e
acolhimento.
A toda equipe do Laboratório de Biologia Molecular da UFCSPA, em especial a
Magda e Grasiela pelo carinho e ajuda.
À Dra Aline Gehlen Dall Bello e à Dra Tiane Martin de Moura por toda ajuda,
carinho e ensinamentos.
À secretária Luciani Spencer, por todo apoio.
A todos meus amigos que, de alguma forma, ajudaram nessa conquista, em especial a
minha amiga Keli Silveira, por toda amizade, carinho, companheirismo, lealdade e
ensinamentos.
RESUMO
Introdução: A infecção pelo vírus da hepatite B (VHB) é um problema de saúde pública
mundial, havendo cerca de 2 bilhões de pessoas infectadas no mundo. A infecção pelo VHB
pode manifestar como hepatite aguda, hepatite fulminante e hepatite crônica, sendo que os
pacientes com hepatite crônica podem desenvolver cirrose e carcinoma hepatocelular. Na
hepatite B crônica ocorre uma intensa replicação viral, na qual observa-se a presença do
antígeno e (HBeAg-positivo); a soroconversão, com surgimento do anti-HBe, está associada a
um prognóstico favorável. Algumas mutações no genoma viral, como a dupla mutação
A1762T/G1764A, estão associadas a um mau prognóstico da doença hepática, com maior
risco de desenvolver carcinoma hepatocelular, mesmo quando ocorre soroconversão.
Objetivo: Identificar a mutação A1762T/G1764A do VHB em pacientes infectados, por meio
da técnica de reação em cadeia da polimerase seguida pela análise de fragmentos de restrição
(PCR-RFLP), e relacionar a presença ou não da mutação com o prognóstico da doença
hepática. Metodologia: Foram selecionados 49 pacientes com hepatite B crônica com carga
viral acima de 200 cópias, no período de novembro de 2012 a dezembro de 2013. A
identificação da mutação A1762T/G1764A foi realizada por intermédio da técnica de PCRRFLP usando a enzima de restrição Sau3AI. Resultados: Dos 49 pacientes analisados, 21
eram do gênero feminino (42,85%) e 28 do gênero masculino (57,14%). A idade mínima foi
de 19 anos e a idade máxima foi de 79 anos (média 50,48 e desvio padrão de 12,764). Todas
as amostras apresentaram resultados positivos para VHB. A mutação A1762T/G1764A do
VHB foi identificada em 4 amostras (8,16%). Na análise da carga viral do VHB não houve
diferença significativa entre os grupos (p=0,43). Houve diferença significativa nos níveis de
ALT (p=0,0028), mas não de AST (p=0,051). Observou-se 75% de soroconversão HBeAnegativo e anti-HBe-positivo nos portadores de VHB contendo a mutação A1762T/G1764A.
Conclusão: A detecção da mutação A1762T/G1764A do VHB foi baixa devido ao baixo
número de amostras. Valores alterados da variável ALT em conjunto com a presença da
mutação A1762T/G1764A podem indicar um mau prognóstico da doença hepática. A
soroconversão do HBeAg em anti- HBe em pacientes com carga viral alta pode está
relacionada com a presença da mutação A1762T/G1764A do VHB.
Palavras-chave: Hepatite B; Mutação A1762T/G1764A do VHB; Hepatites Virais.
ABSTRACT
Introduction: Hepatitis B is an infectious disease caused by the Hepatitis B Virus (HBV),
which is a worldwide public health problem with around 2 billion people infected. The
infection with HBV can manifest as acute hepatitis, fulminant hepatitis and chronic hepatitis.
Patients with chronic hepatitis may develop cirrhosis and hepatocellular carcinoma. In chronic
hepatitis B there is an intense viral replication, in which the presence of the antigen (HBeAg
positive) is observed; seroconversion, with the appearance of anti-HBe, is associate with a
favorable disease prognosis. Viral mutations, such as the double mutation A1762T/G1764A,
are associated with poor prognosis, with a greater risk of developing hepatocellular
carcinoma,
even
when
occurs
seroconversion.
Objective:
Identify
the
mutation
A1762T/G1764A of HBV in infected patients by polymerase chain reaction followed by
restriction fragment analysis (PCR-RFLP), and correlate the presence or absence of the
mutation with disease prognosis. Methodology: 49 patients with chronic hepatitis B and viral
load above 200 copies were selected between November 2012 and December 2013. The
identification of the A1762T/G1764A mutation was performed by PCR-RFLP using the
restriction enzyme Sau3AI. Results: Among the 49 patients, 21 were female (42.85%) and 28
males (57.14%). The minimum age was 19 years old and the maximum age was 79 years old
(mean 50.48 and standard deviation of 12.764). All samples were positive for the wild strain
of HBV; 4 samples (8.16%) were positive for both the wild strain and the A1762T/G1764A
mutants. No significant difference was found in viral loads between groups (p = 0.43). There
was statistically significant difference in ALT levels (p = 0.0028), but not in AST levels (p =
0.051). 75% of HBeAgA-negative to anti-HBe-positive seroconversion was observed in
patients with the A1762T/G1764A HBV mutants. Conclusion: Detection of the
A1762T/G1764A HBV mutation was low due to the low number of samples. The change in
ALT levels along with the presence of A1762T/G1764A HBV mutants may be related to poor
prognosis of liver disease. The HBeAg seroconversion to anti-HBe in patients with high viral
load is related to the presence of A1762T/G1764A HBV.
Keywords: Hepatitis B; A1762T / G1764A HBV Mutation; Viral Hepatitis.
LISTA DE FIGURAS E TABELAS
Figura 1 (Revisão da Literatura) - Prevalência da Hepatite B no mundo.................................11
Figura 2 (Revisão da Literatura) - Marcadores sorológicos na hepatite B aguda.....................14
Figura 3 (Revisão da Literatura) - Marcadores sorológicos na hepatite B crônica...................14
Figura 4 (Revisão da Literatura) - Genoma do VHB................................................................16
Figura 5 (Revisão da Literatura) - Partícula Dane VHB...........................................................17
Tabela 1 (Artigo) – Principais parâmetros sorológicos para VHB...........................................35
Tabela 2 (Artigo) - Principais parâmetros bioquímico para VHB ...........................................35
Figura 1 (Artigo) - Eletroforese em gel de agarose da RFLP...................................................36
Tabela 3 (Artigo) - Carga Viral das amostras sem a mutação e com a mutação......................37
Tabela 4 (Artigo) - Relação de AST das amostras sem a mutação e com a mutação...............38
Tabela 5 (Artigo) - Relação de ALT das amostras sem a mutação e com a mutação...............38
Tabela 6 (Artigo) - Comparação HBeAg e Anti-HBe e a Mutação A1762T/G1764A.............39
LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS
ALT
Alanina Aminotransferase
Anti-HBc
Anticorpo anti-HBc
Anti-Hbe
Anticorpo anti-HBe
AST
Aspartato Aminotransferase
BD
Bilirrubina Direta
BI
Bilirrubina Indireta
BT
Bilirrubina Total
CREAT
Creatinina
CHC
Carcinoma Hepatocelular
DNA
Ácido Desoxirribonucléico
G
Força Gravitacional
GGT
Gama Glutamiltransferase
HB
Hepatite B
HBcAg
Antígeno Core do Vírus da Hepatite B
HBeAg
Antígeno e do Vírus da Hepatite B
HBsAg
Antígeno de Superfície do Vírus da Hepatite B
HBxAg
Antígeno x do Vírus da Hepatite B
HIV
Vírus da Imunodeficiência Humana
IFN
Interferon
IFNα
Interferon Alfa
IgG
Imunoglobulina G
IgM
Imunoglobulina M
µL
Microlitro
µM
Micromolar
Nm
Nanômetro
ORF
Janela Aberta de Leitura
Pb
Pares de Base
PCR
Reação em Cadeia da Polimerase
PCB
Promotor Core Basal
qPCR
Reação em Cadeia da Polimerase em Tempo Real
RFLP
Polimorfismo de Comprimento de Fragmento de Restrição
VHB
Vírus da Hepatite B
SUMÁRIO
1. REVISÃO DA LITERATURA...........................................................................................11
1.1 Infecção pelo VHB.............................................................................................................11
1.2 Trajetória da Infecção pelo VHB.......................................................................................12
1.3 Transmissão........................................................................................................................13
1.4 Vacinação...........................................................................................................................13
1.5 Diagnóstico.........................................................................................................................13
1.6 Tratamento..........................................................................................................................15
1.6.1 Drogas..............................................................................................................................15
1.7 O Vírus da Hepatite B.........................................................................................................16
1.8 Antígenos Virais.................................................................................................................17
1.9 Genótipos do VHB.............................................................................................................18
1.10 Mutação Virais..................................................................................................................19
1.11 HBeAg e a dupla Mutação A1762T/G1764A ..................................................................20
1.12 Identificação da dupla Mutação A1762T/G1764A Através da Técnica de PCR-RFLP...20
2. JUSTIFICATIVA..................................................................................................................21
3. OBJETIVOS.........................................................................................................................22
3.1 Objetivo Primário................................................................................................................22
3.2 Objetivos Secundários.........................................................................................................22
4. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS..................................................................................23
5. ARTIGO................................................................................................................................29
6. CONSIDERAÇÕES FINAIS................................................................................................43
11 1. REVISÃO DA LITERATURA
1.1 Infecção pelo VHB
A infecção pelo vírus da hepatite B (VHB) é um problema de saúde pública mundial.
Mesmo sendo uma doença com prevenção a partir de vacinação, estima-se que 2 bilhões de
pessoas estejam infectadas pelo VHB no mundo, dessas, cerca de 350 milhões apresentam
marcadores sorológicos de infecção ativa. A cirrose hepática e o carcinoma hepatocelular
(CHC) são desfechos comuns da hepatite B, sendo previstas mais de 1 milhão de mortes
anualmente no mundo (1).
As regiões com alta prevalência de casos de VHB (>8%) estão concentradas no Sudeste
Asiático, China, Filipinas, África, Bacia Amazônica e Oriente Médio, as regiões com
prevalência intermediária (2-7%) inclui países do Leste Europeu, Ásia Central, Japão, Israel e
Rússia, as regiões com baixa prevalência (<2%) são Europa Ocidental, Austrália, Nova
Zelândia, América do Norte e América do Sul (Figura 1) (2-3).
A América do Sul apresenta baixa prevalência de VHB. Entretanto, na região
Amazônica brasileira a prevalência é considerada alta, comparável à da Ásia
(1-2)
. A
distribuição do VHB é bastante heterogênea no Brasil, destacando uma faixa que abrange os
estados do Acre, Rondônia e Roraima
(4-5)
. A incidência no Brasil, no período de 1999 a
2011, foram notificados 120.343 casos confirmados de hepatite B. Na região sul do Brasil, no
período de 1999 a 2011 foram notificados 38.007, só em 2010 foram notificados 3.906 casos
sendo, 1.167,89 (29,9%) dos casos no Rio Grande do Sul. Em Porto Alegre no período de
1999 a 2011 foram notificados 1693 casos de hepatite B (6).
Figura 1. Prevalência da Hepatite B no mundo.
Fonte: CDC, 2012 (7).
12 1.2 Trajetórias da Infecção pelo VHB
A hepatite B pode se manifestar de maneiras diferentes, conforme a atividade viral,
podendo ser classificada em hepatite aguda, hepatite fulminante ou hepatite crônica (2).
Quando o VHB infecta um indivíduo, ocorre um período de incubação que pode levar
de 45 a 180 dias. Após esse período, os indivíduos desenvolvem quadros de hepatite aguda,
na maioria das vezes subclínica e anictérica. Apenas 20% dos pacientes desenvolvem icterícia
e cerca de 0,1 a 0,5 % dos pacientes evoluem para um caráter fulminante, com taxa de
letalidade de 70% (2,7). A infecção aguda pelo VHB evolui para cura em 90-95% dos casos e,
em 5-10% dos casos, leva à hepatite B crônica (2, 8-9). Metade desses portadores de hepatite B
crônica não apresentam doença hepática, mas a outra metade mostra sinais de atividade
inflamatória no fígado por muitos anos, podendo desenvolver, nas fases mais tardias da
doença, cirrose hepática e/ou CHC
(2,10-12)
. Estima-se que 15 a 20% dos pacientes com
hepatite B crônica desenvolvem cirrose dentro de cinco anos (1, 12 ).
A hepatite B crônica é caracterizada pela intensa replicação viral, nessa fase, encontrase positivo o antígeno e do VHB (HBeAg-positivo), que é um marcador de replicação viral.
Quando o hospedeiro tem uma boa resposta imunologia, a hepatite B evolui para melhora no
quadro clínico, apresentando anticorpo contra o antígeno HBe (anti-HBe) por um processo de
soroconversão. Na soroconversão apresenta o seguinte perfil sorológico: HBeAg-negativo e o
anti-HBe-positivo. A soroconversão indica uma redução na replicação viral e,
consequentemente, a regressão na reação inflamatória no fígado; nessa fase, há uma
diminuição no risco de desenvolver cirrose e/ou CHC. O processo de soroconversão é
precedido por uma elevação abrupta das aminotransferases e exacerbação da inflamação
hepática, a qual requer atenção a um pequeno grupo de pacientes que podem desenvolver
hepatite fulminante (1,2 13-15).
Alguns pacientes, mesmo soroconvertidos apresentam um prognóstico desfavorável
para a hepatite B. Estudos têm demonstrado haver associação entre mutações virais e a
progressão da hepatite B em pacientes soroconvertidos. Pacientes portadores de cepas virais
que apresentam determinadas mutações na região Pre-Core ou na região Promotor Basal do
Core (PBC) apresentam um pior prognóstico da doença. Neste contexto, a dupla mutação
A1762T/G1764A merece destaque, uma vez que pacientes infectados por cepas mutantes
desenvolvem rapidamente cirrose hepática, a qual se instala progressivamente, muitas vezes
de forma assintomática, podendo evoluir para CHC (16-20).
13 1.3 Transmissão
Os principais mecanismos envolvidos na transmissão do VHB estão relacionados à
exposição percutânea do sangue e seus derivados. A transmissão do VHB se faz por meio de
vias como a perinatal, sexual, transfusão de sangue e seus componentes ou produtos derivados
do plasma, compartilhamento ou reutilização de agulhas e há, ainda, evidências que sugerem
a transmissão por compartilhamento de instrumentos de manicure e lâminas de barbear (4, 8, 9,
21)
.
1.4 Vacinação
A infecção pelo VHB pode ser prevenida a partir da vacinação, a qual está disponível
no Brasil e é distribuída pela rede pública de saúde. As vacinas são produzidas por meio de
engenharia genética por intermédio da inserção de um plasmídeo contendo o antígeno de
superfície do VHB (HBsAg) em leveduras. A resposta imunológica à vacina é bastante alta;
após três doses intramusculares, mais de 90% dos adultos jovens e mais de 95% das crianças
e adolescentes desenvolvem respostas adequadas de anticorpo. Essas doses são preconizadas
no calendário de vacinação infantil, onde a primeira dose é ao nascimento ainda na
maternidade, seguida de mais 3 doses com intervalo de 60 dias para cada dose. O mesmo
padrão de vacinação deve ser seguido para pessoas não vacinadas de outras faixas etárias.
Mesmo com as campanhas de vacinação, existem alguns estados brasileiros, como o Acre,
Roraima, Rondônia e Amazonas, que ainda apresentam alta prevalência de infecção pelo
VHB (4,22).
1.5 Diagnóstico
O diagnóstico da hepatite B é realizado primeiramente por técnicas sorológicas, as
quais são fundamentais não apenas para o diagnóstico, mas também no monitoramento da
infecção viral, na avaliação do estado clínico do paciente e no monitoramento da terapia
adotada (8).
A infecção pelo VHB é, em primeiro instante, detectada pelo antígeno HBsAg, sendo
este o primeiro marcador sorológico encontrado no sangue após um período de incubação. Em
seguida, encontra-se o anticorpo anti-HBc, contra o antígeno do core do VHB (HBcAg), e as
imunoglobulinas IgG e IgM (Figura 2). Neste momento, observa-se, também, uma alta
14 viremia do VHB (níveis séricos que podem variar de 109 a 1010 cópias por mililitro). No
primeiro momento da infecção aguda pelo VHB, estima-se que 75% a 100% dos hepatócitos
estejam infectados (1,16).
Figura 2 . Marcadores sorológicos na hepatite B
aguda. Fonte:
Dény & Zoulim,2010 (22) (adaptado para
português)
A persistência do HBsAg no soro por mais de seis meses indica uma infecção crônica
pelo VHB, junto com a presença do HBeAg, o qual indica uma alta replicação viral. No
processo de soroconversão, passa a ser detectado no soro o anti-HBe, o que ocorre junto com
a queda dos níveis de ácido desoxirribonucleico (DNA) do VHB (Figura 3) (23-25).
Figura 3. Marcadores sorológicos na hepatite B crônica.
Fonte: Dény & Zoulim, 2010
(22)
(Adaptado para
português).
Para avaliar a severidade da doença no fígado, são usados exames laboratoriais, como as
aminotransferases,
ou
transaminases:
aspartato
aminotrasferase
(AST)
e
alanina
15 aminotransferase (ALT). Usualmente, os níveis de ALT são mais altos do que os de AST.
Outros marcadores bioquímicos são importantes para auxiliar na avaliação de prognóstico,
como gama glutamiltransferase, fosfatase alcalina, tempo de protrombina e albumina do soro
(26)
.
O diagnóstico do VHB é focado nos marcadores sorológicos das proteínas virais
específicas e seus respectivos anticorpos. Entretanto, com os avanços da biologia molecular,
tornou-se possível avaliar fatores genéticos que possam levar a um mau prognótico da doença
hepática (27).
1.6 Tratamento
O objetivo no tratamento dos pacientes com HBeAg-positivo é prevenir o
desenvolvimento da cirrose hepática e/ou CHC, por meio da antecipação da soroconversão do
HBeAg-positivo em anti-HBe (24).
Pacientes com hepatite B crônica, HBeAg-positivo e níveis de aminotransferases
menor que duas vezes o valor normal não devem receber tratamento em função da baixa
resposta
terapêutica
(<10%).
Entretanto,
devem
ser
monitorados
os
níveis
de
aminotransferases desses pacientes a cada três meses (23-24).
Pacientes com hepatite B crônica, HBeAg-positivo e níveis de aminotransferases
maior ou igual a duas vezes o valor normal, devem receber tratamento. No caso desses
pacientes, a escolha adequada para o tratamento são os seguintes fármacos: interferon alfa
(IFNα), lamivudina, adefovir, entecavir, telbivudina e tenofovir (24, 28-29).
1.6.1 Drogas
Os fármacos disponíveis para o tratamento da hepatite B crônica são os interferons
(IFN) e análogos de nucleotídeos.
O IFNα foi a primeira droga aprovada para o tratamento da infecção da hepatite B
crônica; possui atividade antiviral e imunomoduladora, sendo ambas as ações importantes no
tratamento do VHB (28). A terapia com o IFNα deve ser adotada com portadores de hepatite B
crônicos com: HBeAg-positivo, atividade inflamatória hepática, alterações nos níveis normais
das aminotransferases e atividade necroinflamatória confirmada por biópsia do fígado
(30-32)
.
As principais vantagens com o tratamento do IFN são: uso do fármaco por tempo limitado,
reposta terapêutica que se mantém após o término do tratamento e ausência de resistências.
Por outro lado, há desvantagens como os efeitos colaterais severos e o alto custo deste
16 tratamento. Aproximadamente um em cada três pacientes tratados com IFN precisa reduzir a
dose em 5% devido aos efeitos adversos (24).
Os análogos de nucleotídeos ou nucleosídeos são administrados por via oral; sua ação
é bloquear a replicação viral, através da inibição da síntese da transcriptase reversa e da
atividade da polimerase do VHB
(33-34)
. As principais vantagens com o tratamento baseado
nesses análogos são a fácil administração via oral e os poucos efeitos colaterais. Dentre as
desvantagens, destaca-se a alta taxa de recidiva quando se interrompe a medicação. Com isso,
há necessidade de um tratamento prolongado, muitas vezes sem opção de interrupção ou
término. Além disso, pacientes com tratamento prolongado podem vir a desenvolver
resistência aos antivirais. Essas resistências ocorrem em função da presença de mutações
localizadas em regiões estratégicas do genoma viral, as quais proporcionam a replicação do
vírus mesmo em condições adversas (35-37).
1.7 O Vírus da Hepatite B
O vírus da hepatite B pertence à família Hepadnaviridae, é um vírus envelopado que
possui tropismo pelas células hepáticas e seu principal hospedeiro é o ser humano. O genoma
do VHB é constituído por DNA contendo aproximadamente 3.200 nucleotídeos (1).
O genoma do VHB é formado por quatro fragmentos sobrepostos de janela aberta de
leitura (open reading frame – ORF). As ORF são regiões do genoma compostas pelos
seguintes genes: gene S, formado pelas regiões Pré-S1, Pré-S2 e S, que codificam três
glicoproteínas de superfície – S (small), L (large) e M (middle) – e o HBsAg; gene C,
formado pelas regiões Pré-Core e Core, responsáveis pela síntese do HBcAg e do HBeAg;
gene P, que codifica a DNA-polimerase; e gene X, que codifica o antígeno x do VHB
(HBxAg) (Figura 4) (38-40).
Figura 4. Genoma do VHB.
Fonte: Zhang Q (40).
17 A partícula infecciosa do VHB é denominada de partícula Dane (Figura 5), com
diâmetro de aproximadamente 42 nm, a qual possui estrutura complexa com envoltório
externo e interno. O envoltório externo é formado pelo HBsAg e o envoltório interno é
formado pelos antígenos HBcAg e HBeAg, pela DNA-polimerase e pelo DNA
(40)
. Existem
outras partículas subvirais menores de 20 nm, as quais possuem formas filamentosas ou
esféricas, presentes apenas na corrente sanguínea dos indivíduos infectados pelo VHB. Tais
partículas são formadas exclusivamente pelo HBsAg (41).
Figura 5. Partícula Dane VHB.
Fonte: © James A. Perkins.
1.8 Antígenos Virais
Os antígenos do VHB são importantes no diagnóstico da hepatite B e na identificação
da real situação do desenvolvimento da doença em seu hospedeiro. Como já mencionado, os
antígenos do VHB são: HBsAg, HBcAg, HBxAg e HBeAg.
O HBsAg é formado principalmente pela proteína S, localizada junto à membrana do
retículo endoplasmático. A presença do anticorpo contra o antígeno HBs do VHB (anti-HBs)
na corrente sanguínea ocorre logo após o desaparecimento do HBsAg, isto é, cerca de dois
meses após a normalização dos níveis das aminotransferases, consequentemente, sua presença
está associada com o término da infecção pelo VHB. Destaca-se que o anticorpo anti-HBs
pode estar presente na resposta de imunização da vacina contra o VHB (16,42).
O HBcAg é expresso somente nos hepatócitos, assim não pode ser detectado na
corrente sanguínea, tendo como forma secretora o HBeAg. O HBcAg não tem importância
18 direta no diagnóstico da infecção pelo VHB, porém é importante para avaliar a replicação
viral em amostras de biópsia hepática (29,43-44).
O HBxAg é uma pequena proteína reguladora, a qual é produzida em baixos níveis na
hepatite B aguda ou crônica. A presença do HBxAg na corrente sanguínea induz uma resposta
imunocelular. Assim, acredita-se que possa contribui para a estabilização do vírus e na
manutenção da replicação viral em portadores de hepatite B crônica (40,44-47).
O HBeAg está associado com alta viremia do VHB, Portanto, sua presença na corrente
sanguínea está relacionada com a alta replicação viral. Os portadores do VHB, ao longo da
infecção, tornam-se HBeAg-negativos por meio da soroconversão. Nessa fase, estará presente o
anticorpo anti-HBe (43,48).
1.9 Genótipos do VHB
O VHB possui uma diversidade viral complexa, apresentando oito genótipos (A, B, C,
D, E, F, G e H). Além dos oitos genótipos, existem quatro principais subtipos e nove subtipos
secundários sorológicos do VHB: adw, ayw, adr e ayr, sendo nove subtipos secundários (adw:
adw2, adw4; ayw: aywl, ayw2, ayw3, ayw4; adr: adrq+, adrq-; e ayr. Os genótipos do VHB
são distintos entre si, devido às alterações em suas sequências de nucleotídeos, as quais estão
diretamente relacionadas com a gravidade da doença e com a resposta ao tratamento (6,49-52).
A epidemiologia e a heterogeneidade dos genótipos do VHB estão relacionadas com a
evolução clínica da doença e com a resposta ao tratamento antiviral (4,53). Na Ásia, observa-se
que portadores de hepatite B crônica com genótipo C apresentam doença mais grave no
fígado se comparados com os portadores do genótipo B. Assim, sugere-se que o genótipo C é
um fator de risco para o desenvolvimento da cirrose hepática e/ou CHC (4,27,53,54).
Os genótipos do VHB apresentam uma distinta distribuição geográfica. Os genótipos
A e D são prevalentes no Brasil, Europa, América do Norte, Índia e África. Os genótipos B e
C são prevalentes no Sudoeste da Ásia, China e Japão. O genótipo E é limitado à África e o
genótipo F é frequentemente encontrado nas populações nativas da América do Sul e da
América Central. O genótipo G é prevalente na França, Estados Unidos, Geórgia, GrãBretanha, Itália, Alemanha e México e o genótipo H só foi encontrado na América Central (6,
49,52,53)
.
O Brasil é um país que apresenta alta miscigenação na população. Em função disso,
observa-se uma distribuição genotípica do VHB distinta das encontrada nos demais países da
América Latina (54-55). Os genótipos encontrados no Brasil são A, B, D e F. Recentemente, no
19 ano de 2003, houve um caso isolado do genótipo E de um cidadão angolano residente em São
Paulo, que, com constância, percorria países da América Latina, África e Europa (4,54-56).
No Brasil, o genótipo A é o mais prevalente, com média de 48,5% dos casos, seguido
do genótipo D, com prevalência de 38,5% dos casos. Acredita-se que a alta prevalência dos
genótipos A e D no Brasil deve-se à imigração italiana no final do século XIX. Por outro lado,
na região Norte do Brasil e nas populações indígenas, o genótipo F apresenta uma prevalência
acima de 75% dos casos já o genótipo B apresenta baixa prevalência (4,54-56).
No Rio Grande do Sul existe a prevalência do genótipo D, com aproximadamente
63,0% dos casos, seguido do genótipo A com 32,0% dos casos e o genótipo F com 5% dos
casos (57).
1.10 Mutações Virais
O genoma do VHB evolui rapidamente, com altas taxas de substituições de
nucleotídeos ao longo do tempo, gerando mutações, tais como deleções e inserções. Esses
eventos ocorrem durante a replicação do DNA do VHB (49-50).
As mutações de maior relevância estão localizadas nas regiões Pre-Core e PBC, as
quais estão relacionadas com os antígenos HBcAg e HBeAg; essas mutações geram uma
seleção de cepas variantes que não produzem HBeAg (58-59).
Cepas não mutantes nas regiões Pre-Core e PBC, ao longo da infecção, podem inibir a
replicação viral, enquanto as cepas com mutações podem ter a replicação viral exacerbada, as
quais estão relacionadas com um prognóstico desfavorável da infecção pelo VHB (60-61).
Mutações na região PBC, frequentemente, são detectadas em pacientes HBeAgnegativos, porém alguns pacientes podem ter HBeAg-positivo
(62)
. A mutação mais
importante na região PBC é a dupla mutação A1762T/G1764A, a qual está associada com o
aumento no nível da replicação viral e com a diminuição ou ausência da síntese do HBeAg (6263)
. Neste sentido, foi observado que os portadores desta mutação desenvolvem rapidamente
cirrose hepática e/ou CHC (63-64).
1.11 HBeAg e a dupla Mutação A1762T/G1764A
O HBeAg foi descoberto há mais de três décadas e tornou-se instrumento útil no
diagnóstico do VHB
(9)
. O HBeAg é usado como indicativo de replicação viral e de atividade
viral, o qual está associado com a progressão da doença hepática (1,46,64).
20 No passado, a ausência do HBeAg no soro estava associada a pacientes que não
apresentavam mais a replicação do VHB. Já nos dias de hoje, pacientes portadores da hepatite
B crônica com HBeAg negativo representam um grupo com alto potencial de desenvolver
cirrose hepática e/ou CHC (29,65). A incidência anual de cirrose hepática varia de 2% a 6% para
pacientes HBeAg-positivos e de 8% a 10% para pacientes HBeAg-negativos (16-17).
Na década de 80, os primeiros pacientes com HBeAg negativo foram observados na
região do Mediterrâneo, os quais apresentavam infecção ativa pelo VHB. Em 1989, as
primeiras mutações na região Pre-Core e PBC no genoma do VHB foram identificadas, as
quais estão relacionadas com HBeAg-negativos em pacientes com replicação viral ativa. As
mutações localizadas nas regiões Pre-Core e PBC são as mais importantes, sendo a de maior
significância a dupla mutação A1762T/G1764A (66,67).
A mutação A1762T/G1764A é uma dupla mutação pontual que está localizada na
região PBC com substituição de adenina (A) por timina (T) na posição 1762, e a substituição
de guanina (G) por adenina (A) na posição 1764 (19, 68-69). Esta mutação está associada ao mau
prognóstico da hepatite B, sendo sua presença relacionada com o desenvolvimento precoce de
cirrose hepática e CHC (19, 70-71).
1.12 Identificação da Mutação A1762T/G1764A Através da Técnica de PCR-RFLP
Dentre as diversas técnicas da Biologia Molecular, destaca- se a reação em cadeia da
polimerase seguido da técnica polimorfismo de comprimento do fragmento de restrição PCRRFLP, a qual é uma técnica bastante utilizada para o estudo de sequências específicas de
genomas. Tem como objetivo amplificar um fragmento de interesse, clivar esse fragmento em
uma região específica utilizando uma enzima de restrição e analisar os fragmentos gerados. A
análise é feita por eletroforese em gel de agarose ou em gel de poliacrilamida. A visualização
pode ser feita com corantes específicos que se intercalam com DNA e registradas com um
fotodocumentador.
Assim, a mutação A1762T/G1764A pode ser facilmente detectada pela técnica de
PCR-RFLP, utilizando enzima de restrição que cliva especificamente o DNA na região
contendo a mutação (72-73).
21 2. JUSTIFICATIVA
A infecção pelo VHB é um problema de saúde pública mundial. Os portadores do
VHB podem desenvolver cirrose e/ou carcinoma hepatocelular, que levam ao óbito.
Os pacientes com hepatite B crônica apresentam o antígeno HBsAg por mais de 6
meses na corrente sanguínea, além do antígeno HBeAg, que é um marcador de replicação
viral. Uma parte dos pacientes conseguem reverter essa situação e evoluem para uma melhora
da doença hepática; nesses casos, ocorre o processo de soroconversão, com a ausência do
antígeno HBeAg e a presença do anticorpo anti-HBe. Entretanto, existem pacientes que,
mesmo soroconvertendo, apresentam doença hepática ativa, devido a mutações na região PCB
do VHB, as quais estão diretamente relacionadas ao mau prognóstico da doença hepática.
Dentre essas mutações, merece destaque a dupla mutação A1762T/G1764A, a qual
pode estar relacionada ao aumento da replicação viral e alterações nos níveis normais das
aminotrasferases, mesmo em pacientes soroconvertidos. Portadores do VHB com cepas com a
dupla mutação A1762T/G1764A, têm maiores chances de apresentarem um mau prognóstico
da doença hepática, como desenvolver cirrose hepática de forma assintomática, podendo
evoluir para CHC.
Assim, considerando a alta prevalência do VHB em todo o mundo e que a presença da
dupla mutação A1762T/G1764A no VHB aumenta as chances do portador da hepatite B ter
um mau prognóstico da doença hepática, é importante a identificação das cepas com a dupla
mutação A1762T/G1764A. Neste trabalho, foram analisados pacientes portadores de VHB
atendidos nos hospitais Complexo Hospitalar Santa Casa de Porto Alegre e Hospital Nossa
Senhora da Conceição de Porto Alegre, quanto à presença da dupla mutação A1762T/G1764A
viral; outros aspectos clínicos e laboratoriais também foram analisados.
A correlação da dupla mutação A1762T/G1764A com a carga viral, com os antígenos
e anticorpos e com as aminotrasferases é importante para o melhor entendimento do papel
dessa mutação na evolução da doença hepática nos pacientes de Porto Alegre.
22 3. OBJETIVOS
3.1 Objetivo Primário
O objetivo deste trabalho é identificar a mutação A1762T/G1764A do VHB em
amostras de pacientes do Complexo Hospitalar Santa Casa de Porto Alegre e do Hospital
Conceição através da técnica de PCR-RFLP.
3.2 Objetivos Secundários
 Associar a mutação A1762T/G1764A com a carga viral.
 Relacionar os níveis de AST e ALT com os mutantes e os não mutantes
 Associar a mutação A1762T/G1764A com o antígeno HBeAg e anticorpo anti-HBe.
23 4. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. Fonseca JCF. História natural da hepatite crônica B. SBMT. 2007; 40: 672-7.
2. Ferreira MS. Diagnóstico e tratamento da hepatite B. SBMT. 2000; 33(4): 389-400.
3. Kane M. Global program for control of hepatitis B infection. Vaccine. 1995; 13: 47-9.
4. Roncata M. Ballardin PAZ, Lunge VR. Influência dos genótipos no tratamento da hepatite
B. Rev HCPA. 2008; 28(3): 188-93.
5. Brasil LM, Braga WSM, Fonseca JCF. Prevalence of hepatitis B virus (HBV) infection in
children, Codajas, Amazon Basin, Brazil: a pre-study vaccination. Acta Hepatologica.
1991; 1(26).
6. Ministério da Saúde – Secretaria de Vigilância em Saúde – Departamento de DST, AIDS e
Hepatites Virais. Boletim epidemiológico hepatites virais ano III n.01. 2012.
7. Centers for Disease Control and Prevention (CDC). Hepatitis B. In: Yellow Book, Chapter
3
–
Infectious
diseases
related
to
travel.
2012
(http://
wwwnc.cdc.gov/travel/yellowbook/2012/chapter-3-infectious-diseases-related-totravel/hepatitis-b.htm#2403).
8. Wiens A, Correr JC, Pontarolo R. Hepatite B crônica: uma revisão sobre os aspectos
clínicos e terapêuticos. Visão Acadêmica, Curitiba, 2010; 11(2): 93-101.
9. Ministério da Saúde. Protocolo clínico e diretrizes terapêuticas para o tratamento da
hepatite viral crônica B e coinfecções. In: Secretaria de Vigilância em Saúde –
Departamento de DST: Programa Nacional para a Prevenção e o Controle das Hepatites
Virais. 2009; 128.
10. Di MV, Lo IO, Cammà C, Vaccaro A, Giunta M, Martorana G, et al. The long term
course of chronic hepatitis B. J Hepatol.1999; 30: 257-64.
11. Liaw YF, Tai DI, Chu CM, Chen TJ. The development of cirrhosis in patients with
chronic type B hepatitis: prospective study. J Hepatol. 1998; 8: 493-6.
12. Perrilo RP, Aach RD. The clinical course and chronic sequelae of hepatitis B virus
infection. Semin Liver Dis. 1981; 1: 15-25.
13. Realdi G, Alberti A, Rugge M, Bortolotti F, Rigoli AM, Tremolada F, Ruol A.
Seroconversion from hepatitis B e antigen to anti-HBe in chronic hepatitis B virus
infection. Gastroenterology. 1984; 86: 230-35.
14. Lok AS. Hepatitis B infection: pathogenesis and management. J Hepatol. 2000; 32: 8997.
24 15. Davis GL, Hoofnagle JH. Reactivation of chronic type B hepatitis presenting as acute
viral hepatitis. Ann Intern Med. 1985; 102: 762-5.
16. Lee WM. Hepatitis B virus infection. N Engl J Med.1997; 337: 1733-45.
17. Lok ASF, McMahon BJ. Chronic hepatitis B. Hepatology. 2007; 45: 507-39.
18. Koziel MJ, Peter MG. Viral hepatitis in HIV infection. N Engl J Med. 2007; 356: 144554.
19. Nie H, Evans AA, Londres WT, Block TM, Ren XD. Ultrasensitive quantification of
hepatitis B virus A1762T/G1764A mutant by a simpleproble PCR blocker and a primerblocker-probe partial-overlap approach. J Clin Microbiol. 2011; 49(7): 2440-48.
20. Utama A, Purwantomo S, Siburian MD, Dhenni R, Gani RA, Hasan I, et al. Hepatitis B
virus subgenotypes and basal core promoter mutations in Indonesia. World J
Gastroenterol. 2009; 15(32): 4028-36.
21. Liu CP, Zeng YL, Zhou M, Chen LL, Hu R, Wang L, et al. Factors associated with
mother-to-child transmission of hepatitis b virus despite immunoprophylaxis. Intern Med
2015; 54: 711-716.
22. Brasil LM, Fonseca JCF, Souza RB, Braga WSM, Toledo LM. Prevalência de
marcadores para o vírus da hepatite B em contato domiciliares no estado do amazonas.
Rev Soc Bras Med Trop. 2003; 36(5): 565-70.
23. Dény PAB, Zoulim FA. Hepatitis B virus: From diagnosis to treatment. Pathol Biol 2010;
58: 245-53.
24. Papatheodoridis GV, Hadziyannis SJ. Review article: current management of chronic
hepatitis B. Aliment Pharmacol Ther. 2004; 19: 25-7.
25. Chu CJ, Lok AS. Clinical utility in quantifying serum HBV-DNA levels using PCR
assays. J Hepatol. 2002; 36: 549-51.
26. Gong X, Yang J, Tang J, Gu C, Huang L, Zheng Y, et al. A mechanistic assessment of
the discordance between normal serum alanine aminotransferase levels and altered liver
histology in chronic hepatitis B. PLoS One. 2015; 10(7): 1-10.
27. Liu CJ, Kao JH, Chen DS. Therapeutic implications of hepatitis B virus genotypes. Liver
Int. 2005; 25 (6): 1097-107.
28. Lok AS, Heathcoat EJ, Hoofnagle JH. Management of hepatitis B: summary of a
workshop. Gastroenterology. 2001; 120: 1828-53.
29. Parise ER, Porta G. Manual de diagnóstico e tratamentos das doenças do fígado no
paciente adulto e pediátrico. São Paulo: Editora Atheneu; 2011.
30. Lok ASF. Treatment of chronic hepatitis B. J Viral Hepat. 1994; 1: 105-24.
25 31. Wong DK, Cheung AM, O´Rourke K, Naylor CD, Detsky AS, Heathcote J. Effect of
alpha-interferon in patients with hepatitis B e antigen-positive chronic hepatitis B: Metaanalysis. Ann Intern Med. 1993; 119: 312-23.
32. Mattos AA. Tratado de Hepatologia. Rio de Janeiro: Editora Rubio, 2010.
33. Lai CL, Chien RN, Leung NW, Chang TT, Guan R, Tai DI, et al. A one year trial of
lamivudine for chronic hepatitis B: Asia hepatitis lamivudine study group. N Engl J Med.
1998; 339: 61-8.
34. Jarvis B, Faulds D. Lamivudine: a review of its therapeutic potential in chronic hepatitis
B. Drugs.1999; 58:101-41.
35. Dienstag JL , Schiff ER, Mitchell M, Casey DEJ, Gitlin N, Lissoos T, et al. Extended
lamivudine retreatment for chronic hepatitis B: maintenance of viral suppression after
discontinuation of therapy. Hepatology. 1999; 30: 1082-87.
36. Allen MI, Deslauriers M, Andrews CW, Tipples GA, Walters KA, Tyrrell DL, et al.
Identification and characterization of mutation in hepatitis B virus resistant to
lamivudine: lamivudine clinical investigation group. Hepatology. 1998; 27: 1670-77.
37. Hwang JA, Kim KB, Yang MJ, Lim SG, Hwang JC, Cheong JY et al. Impact of prior
lamivudine use on the antiviral efficacy and development of resistance to entecavir in
chronic hepatitis B patients. Clin Mol Hepatol. 2015; 21(2): 131–140.
38. Anderson M, Gaseitsiwe S, Moyo S, Wessels MJC, Mohammed T, Sebunya TK, et al.
Molecular characterisation of hepatitis B virus in HIV-1 subtype C infected patients in
Botswana. BMC Infect Dis. 2015; 15: 1-9
39. Summers J, Mason WS. Replication of the genome of a hepatitis B-like virus by reverse
transcription of an RNA intermediate. Cell. 1982; 29: 403-15.
40. Zhang Q, Cao G. Genotypes, mutations, and viral load of hepatitis B virus and the risk of
hepatocellular carcinoma. Hepat Mon. 2011;11(2): 86–91.
41. Burns M, Stefan M, Sylvie C, Hans W. Enhancement of Hepatitis B virus infection by
non-infectious sub viral particles. J. Virol. 1998; 72(2): 1462-68.
42. Su H, Yee JK. Regulation of hepatitis B virus gene expression. By its two enhancers.
Proc Natl Acad Sci USA. 1992; 89 (7):2708-12.
43. Fukuda R, Ishimura N, Kushiyama Y, Moriyama N, Ishihara S, Chowdhury A, et al.
Hepatitis B virus with X gene mutation is associated with the majority of serologically
"silent" non-b, non-c chronic hepatitis. Microbiol Immunol, 1996; 40 (7) 481-8.
44. Feitelson MA, Reis HM, Tufan NL, Sun B, Pan J, Lian Z. Putative roles of hepatitis B X
antigen in the pathogenesis of chronic liver disease. Cancer Letters. 2009; 286 (1): 69-79.
26 45. Yeh CT, So M, Ng J, Yang HW, Chang ML, Lai MW, et al. Hepatitis B virus DNA level
and basal core promoter A1762T/G1764A mutation in liver tissue independently predict
postoperative survival in hepatocellular carcinoma. Hepatology. 2010; 52(6): 1922-33.
46. Feitelson MA, Duan L X, Hepatitis B virus x antigen in the pathogenesis of chronic
infections and the development of hepatocellular carcinoma. Am J Pathol. 1997; 150(4):
1141-57.
47. Tufan NL, Lian Z, Liu J, Pan J, Arbuthnot P, Kew M, et al. Hepatitis Bx antigen
stimulates expression of a novel cellular gene, URG4, that promotes hepatocellular
growth and survival. Neoplasia. 2002; 4(4): 355-68.
48. Tong S. Impact of viral genotypes and naturally occurring mutations on biological
properties of hepatitis B virus. Hepatol Res. 2007; 37 (1): S3-8.
49. Kao JH. Molecular epidemiology of hepatitis B virus. KJIM. 2011; 26: 255-61.
50. Kao JH. Hepatitis B viral genotypes: clinical relevance and molecular characteristics J
Gastroenterol Hepatol. 2002; 17: 643-50.
51. Kidd LK, Miyakawa Y, Kidd AH. Genetic variability in hepatitis B viruses. J Gen Virol.
2002; 83: 1267-80.
52. Kao JH, Chen PJ, Lai MY, Chen DS. Hepatitis B genotypes correlate with clinical
outcomes in patients with chronic hepatitis B. Gastroenterology. 2000; 118: 554-59.
53. Lin CL. The clinical implications of hepatitis B virus genotypes: recent advances. J
Gastroenterol Hepatol. 2011; 26: 123-30.
54. Mello FC, Souto FJ, Nabuco LC, Villela Nogueira CA, Coelho HS, Franz HC, et al.
Hepatitis B virus genotypes circulating in Brazil: molecular characterization of genotype
F isolates. BMC Microbiol. 2007; 7(103): 1-9.
55. Teles SA, Martins RM, Vanderborght B, Stuyver L, Gaspar AM, Yoshida CF. Hepatitis
B virus: genotypes and subtypes in Brazilian hemodialysis patients. Artif Organs. 1999;
23 (12): 1074-78.
56. Sitnik R, Sette HJ, Santana RAF, Menezes LC, Graça CHN, Dastoli GTF, et al. Hepatitis
B virus genotype E detected in Brazil in an African patient who is a frequent traveller.
Braz J Med Biol Res. 2007; 40: 1689-92.
57. Becker CE, Mattos AA, Bogo MR, Branco F, Sitnik R, Kretzmann NA. Genotyping of
hepatitis B virus in a chort of patients evaluated in a hospital of Porto Alegre, South of
Brazil. Arq. Gastroenterol. 2010; 47 (1): 13-7.
58. Besharat S, Poustchi H, Mohamadkhani A, Katoonizadeh A, Moradi A, Roshandel G,
et al. Association of mutations in the basal core promoter and pre-core regions of
27 the hepatitis viral genome and longitudinal changes in HBV level in HBeAg negative
individuals: results from a cohort study in northern iran. Hepat Mon. 2015 Feb 21;15(2):
1-6.
59. Hunt CM, McGill JM, Allen MI, Condreay. Clinical relevance of hepatitis B viral
mutations. Hepatology. 2000; 31(5): 1037-44.
60. Tillmann H, Trautwein C, Walker D, Michitaka K, Kubicka S, Böker K, et al. Clinical
relevance of mutations in the precore genome of the hepatitis B virus. Gut.1995; 37(4):
568-573.
61. Kurasaki M, Saito T, Kaji H, Kojima Y, Saito K, Increased erythrocyte catalase activity
in patients with hyperthyroidism. Horm Metab Res. 1986; 18(1): 56-9.
62. Gunther S, Piwon N, Will H. Wild-type levels of pregenomic RNA and replication but
reduced pre-C RNA and e-antigen synthesis of hepatitis B virus with C (1653) --> T, A
(1762) -> T and G (1764) --> A mutations in the core promoter. J Gen Virol. 1998; 79 (2):
375-80.
63. Takahashi K, Aoyama K, Ohno N, Iwata K, Akahane Y, Baba K, et al. The precore/core
promoter mutant (T1762A1764) of hepatitis B virus: clinical significance and an easy
method for detection. J Gen Virol. 1995; 76 (12): 3159-64.
64. Magnius L, Espmar J. New specificities in Australian antigen positive sera distinct from
the Le Bouvier determinants. J Immunol. 1972; 109 (5): 1017-21.
65. Marrone A, Zampino R, Luongo G, Utili R, Karayaiannis P, Ruggiero G. Low HBeAg
serum levels correlate with the presence of the double A1762T/G1764A core promoter
mutation and a positive response to interferon in patients with chronic hepatitis B virus
infection. Intervirology. 2003; 46 (4): 222-6.
66. Parekh S, Zoulim F, Ahn SH, Tsai A, Li J, Kawai S, et al. Genome replication, virion
secretion, and e antigen expression of naturally occurring hepatitis B virus core promoter
mutants. J Virol. 2003; 77(12): 6601-12.
67. Lyu H, Lee D, Chung YH, Kim JA, Lee JH, Jin YJ, et al. Synergistic effects of A1896,
T1653 and T1762/A1764 mutations in genotype c2 hepatitis B virus on development of
hepatocellular carcinoma. Viral Hepat. 2013; 20(3): 219-2.
68. Yang HI, Yeh SH, Chen PJ, Iloeje UH, Jen CL, Su J, et al. Associations between
hepatitis B virus genotype and mutants and the risk of hepatocellular carcinoma. J Natl
Cancer Inst. 2008; 100(16): 1134-43.
28 69. Xiao L, Zhou B, Gao H, Ma S, Yang G, Xu M, et al. Hepatitis B virus genotype B with
G1896A and A1762T/G1764A mutations is associated with hepatitis B related acute-onchronic liver failure. J Med Virol. 2011; 83(9): 1544-50.
70. Lee JH, Han KH, Lee JM, Park JH, Kim HS. Impact of hepatitis B virus (HBV) X gene
mutations on hepatocellular carcinoma development in chronic HBV infection. Clin
Vaccine Immunol. 2011; 18(6): 914–21.
71. Liu S, Zhang H, Gu C, Yin J, He Y, Xie J, et al. Association between hepatitis B virus
mutations and the risk of hepatocellular carcinoma: A meta- analysis. J Natl Cancer
Inst. 2009; 101(15): 1066-82.
72. Takahashi K, Aoyama K, Ohno N, Iwata K, Akahane Y, Baba K, et al. The precore/core
promoter mutant (T1762A1764) of hepatitis B virus: clinical significance and an easy
method for detection. J Gen Virol. 1995; 76 (12): 3159-64.
73. Hou J, Lau GKK, Cheng J, Cheng CC, Luo K, Carman WE, et al. T1762A1764 variants
of the basal core promoter of hepatitis B virus; serological and clinical correlations in
Chinese patients.Liver.1999; 19: 411-17.
29 5. ARTIGO (Elaborado segundo as normas de publicação da revista Journal of
Gatrointestinal and Liver Diseases)
Identificação da mutação A1762T/G1764A do vírus da hepatite B em
pacientes de Porto Alegre Adaliany Cecília da Silva Souza1, Giórgia de Souza Marasca2, Nélson Alexandre Kretzmann
Filho3, Aline Gehlen Dall Bello4, Tiane Martin de Moura5, Dimas Kliemann6, Ana Beatriz
Gorini da Veiga7*
1
Bióloga, Mestranda do Programa de Pós-Graduação em Medicina: Hepatologia da
Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (UFCSPA), BR.
2
Biomédica, Mestranda do Programa de Pós-Graduação em Medicina: Hepatologia da
Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (UFCSPA).
3
Professor do Programa de Pós-Graduação em Medicina Animal da Universidade Federal do
Rio Grande do Sul (UFRGS) e professor do Curso de Medicina Veterinária do Centro
Universitário Ritter dos Reis (UNIRITTER).
4
Pós-Doutoranda da Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (UFCSPA)
no Programa de Pós-Graduação em Patologia – Laboratório Microbiologia Molecular.
5
Pós-Doutoranda da Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre (UFCSPA)
no Laboratório Microbiologia Molecular Laboratório Microbiologia Molecular.
6
Médico Infectologista Hospital Nossa Senhora da Conceição (HNSC). Doutorando do
Programa de Pós-Graduação em Medicina: Hepatologia, UFCSPA.
7
Professora Associada, Departamento de Ciências Básicas da Saúde. Laboratório de Biologia
Molecular, Programa de Pós-Graduação em Medicina: Hepatologia, Programa de PósGraduação em Patologia. Universidade Federal de Ciências da Saúde de Porto Alegre
(UFCSPA).
*Dados para correspondência:
Ana Beatriz Gorini da Veiga
Rua Sarmento Leite, 245 / sala 309 – UFCSPA. Porto Alegre, RS, Brasil - CEP 90050-170
Telefone: +55 (51) 3303-8763
Email: [email protected]
30 Resumo
Introdução: A infecção pelo vírus da hepatite B (VHB) é um problema de saúde pública
mundial, havendo cerca de 2 bilhões de pessoas infectadas no mundo. A infecção por esse
vírus pode se manifestar como hepatite aguda, hepatite fulminante e hepatite crônica, sendo
que os pacientes com hepatite crônica podem desenvolver cirrose e carcinoma hepatocelular.
Na hepatite B crônica, ocorre uma intensa replicação viral, na qual observa-se a presença do
antígeno e (HBeAg-positivo); a soroconversão, com surgimento do anti-HBe, está associada a
um prognóstico favorável. Algumas mutações no genoma viral, como a dupla mutação
A1762T/G1764A, estão associadas a um mau prognóstico da doença hepática, com maior
risco de desenvolver carcinoma hepatocelular, mesmo quando ocorre soroconversão.
Objetivo: Identificar a mutação A1762T/G1764A do VHB em pacientes infectados, através
da técnica de reação em cadeia da polimerase seguida pela análise de fragmentos de restrição
(PCR-RFLP), e relacionar a presença ou não da mutação com o prognóstico da doença
hepática. Metodologia: Foram selecionados 49 pacientes com hepatite B crônica com carga
viral acima de 200 cópias, no período de Novembro de 2012 a Dezembro de 2013. A
identificação da mutação A1762T/G1764A foi realizada através da técnica de PCR-RFLP
usando a enzima de restrição Sau3AI. Resultados: Dos 49 pacientes analisados, 21 eram do
gênero feminino (42,85%) e 28 do gênero masculino (57,14%). A idade mínima foi de 19
anos e a idade máxima foi de 79 anos (média 50,48 e desvio padrão de 12,764). Todas as
amostras apresentaram resultados positivos para VHB. A mutação A1762T/G1764A do VHB
foi identificada em 4 amostras (8,16%). Na análise da carga viral do VHB não houve
diferença significativa entre os grupos (p=0,43). Houve diferença significativa nos níveis de
ALT (p=0,0028), mas não de AST (p=0,051). Observou-se 75% de soroconversão HBeAnegativo e anti-HBe-positivo nos portadores de VHB contendo a mutação A1762T/G1764A.
Conclusão: A detecção da mutação A1762T/G1764A do VHB foi baixa devido ao baixo
número de amostras. Valores alterados da variável ALT juntamente com a presença da
mutação A1762T/G1764A podem indicar um mau prognóstico da doença hepática. A
soroconversão do HBeAg em anti- HBe em pacientes com carga viral alta pode está
relacionada com a presença da mutação A1762T/G1764A do VHB.
Palavras-Chaves: Hepatite B; Mutação A1762T/G1764A do VHB; Hepatites Virais.
31 Introdução
A infecção pelo vírus da hepatite B (VHB) é um problema de saúde pública mundial.
Mesmo sendo uma doença para a qual existe vacina, estima-se que 2 bilhões pessoas estejam
infectadas no mundo, com cerca de 350 milhões de pessoas com marcadores sorológicos de
infecção ativa
[1]
. Os portadores do VHB podem desenvolver cirrose e/ou carcinoma
hepatocelular (CHC), os quais são responsáveis por mais de 1 milhão de mortes, anualmente,
no mundo [2] .
As regiões com alta prevalência de casos do VHB (>8%) estão concentradas no
Sudeste Asiático, China, Filipinas, África, Bacia Amazônica e Oriente Médio; as regiões com
prevalência intermediária (2-7%) são regiões do Leste Europeu, Ásia Central, Japão, Israel e
Rússia; e as regiões com baixa prevalência (<2%) são Europa Ocidental, Austrália, Nova
Zelândia, América do Norte e América do Sul
[3,4]
. No Brasil, a distribuição do VHB é
bastante heterogênea, sendo mais prevalente na região norte do país, que abrange os estados
do Acre, Amazonas, Rondônia e Roraima, e menos prevalente na região sul. A incidência no
Brasil, no período de 1999 a 2011, foram notificados 120.343 casos confirmados de hepatite
B. Na região sul do Brasil, no período de 1999 a 2011 foram notificados 38.007, só em 2010
foram notificados 3.906 casos sendo, 1.167,89 (29,9%) dos casos no Rio Grande do Sul. Em
Porto Alegre no período de 1999 a 2011 foram notificados 1693 casos de hepatite B
[5-6]
.
O VHB apresenta oito genótipos (A, B, C, D, E, F, G e H), os quais são distintos entre
si devido às alterações em suas sequências de nucleotídeos
encontrados são A, B, D e F
do genótipo D, com 38,5%
[7-11]
. No Brasil, os genótipos
[12-13]
[5,12,14]
, sendo mais prevalentes o genótipo A com 48,5%, seguido
. No Rio Grande do Sul, existe a prevalência do genótipo D,
com aproximadamente 63,0% dos casos, seguido do genótipo A, com 32,0% dos casos; o
genótipo F representa 5% dos casos (7,12).
O VHB pertence à família Hepadnaviridae e seu genoma é constituído por ácido
desoxirribonucleico (DNA) contendo aproximadamente 3.200 nucleotídeos (3.2 kb)
organizados em genes sobrepostos
[2,5]
. O VHB é um vírus envelopado; dentro do envelope
lipoproteico encontra-se o nucleocapsídeo, que abriga, no seu interior, o genoma constituído
por DNA circular com fita dupla parcial. O envelope apresenta o antígeno de superfície S
(HBsAg), enquanto o nucleocapsídeo contém o antígeno C (HBcAg) .[15-18]
A infecção pelo VHB pode se manifestar clinicamente de formas diferentes, conforme
a atividade viral, classificada como: hepatite aguda, hepatite fulminante ou hepatite crônica. A
32 hepatite crônica pode evoluir para cirrose hepática e/ou CHC [3]. Estima-se que 15 a 20% dos
pacientes com hepatite B crônica desenvolvem cirrose dentro de cinco anos [2,19]
A hepatite B crônica é caracterizada pela intensa replicação viral, nessa fase, encontrase positivo o antígeno e do VHB (HBeAg-positivo), que é um marcador de replicação viral.
Quando o hospedeiro tem uma boa resposta imunologia, a hepatite B evolui para melhora no
quadro clínico, apresentando anticorpo contra o antígeno HBe (anti-HBe) por um processo de
soroconversão. Na soroconversão apresenta o seguinte perfil sorológico: HBeAg-negativo e o
anti-HBe-positivo. A soroconversão indica uma redução na replicação viral e,
consequentemente, a regressão na reação inflamatória no fígado; nessa fase, há uma
diminuição no risco de desenvolver cirrose e/ou CHC. O processo de soroconversão é
precedido por uma elevação abrupta das aminotransferases e exacerbação da inflamação
hepática, a qual requer atenção a um pequeno grupo de pacientes que podem desenvolver
hepatite fulminante (2, 3,20-21) .
Porém alguns pacientes, mesmo sendo soroconvertidos apresentam um prognóstico
desfavorável. Normalmente, esses pacientes são portadores de cepas virais que apresentam
mutações nas regiões Pre-Core e Promotor Basal Core (PBC)
[22]
. As mutações são eventos
biológicos normais, que ocorrem durante a replicação do DNA do VHB [23-24].
A região PCB está localizada na sobreposição do Pré-Core com o gene X na janela
aberta de leitura e é responsável em regular a expressão do HBeAg. Mutações nessa região
frequentemente são detectadas em pacientes com HBeAg-negativo, sendo menos frequentes
em pacientes HBeAg-positivos. Das mutações descritas na região PBC, merece destaque a
dupla mutação A1762T/G1764A, a qual apresenta importância clínica significante, pois os
pacientes portadores dessas cepas mutantes desenvolvem rapidamente cirrose hepática, a qual
se instala progressivamente e, muitas vezes, de forma assintomática, podendo evoluir para
CHC [25-28].
Estudos sugerem que a presença desta dupla mutação no VHB aumenta as chances do
portador da hepatite B ter um mau prognóstico da doença hepática
[30]
, pois a mutação está
associada com o aumento no nível da replicação viral e com a diminuição ou ausência da
síntese do HBeAg [31-32].
O objetivo deste trabalho foi identificar a mutação A1762T/G1764A na PBC do vírus
da hepatite B, por meio da técnica de reação em cadeia da polimerase seguida por análise de
fragmentos de restrição (PCR-RFLP) e avaliar se a presença da mutação está associada com
mau prognóstico.
33 Métodos
Este trabalho é um estudo transversal, o qual acompanhou pacientes portadores do
VHB do ambulatório de Infectologia Adulto do Hospital Nossa Senhora da Conceição de
Porto Alegre, Brasil, e do ambulatório de Gastroenterologia do Complexo Hospitalar Santa
Casa de Porto Alegre, Brasil, no período de novembro de 2012 a dezembro de 2013. Este
estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética em Pesquisa (CEP), conforme parecer: 575.347.
Foram selecionados 49 pacientes conforme: critérios exclusão, HBsAg negativo,
carga viral abaixo de 200 cópias de DNA, pacientes que estavam incapacitados de ler e
assinar o Termo de Consentimento Livre e Esclarecido, critérios inclusão, HBsAg positivo
por mais de 6 meses e carga viral acima de 200 cópias. Todos os pacientes concordaram em
participar do estudo e assinaram o Termo de Consentimento Livre e Esclarecido. Para cada
paciente foi criado um banco de dados clínicos, contendo dados de exames laboratoriais
sorológicos e bioquímicos, exames hematológicos, dados de biópsia. Todos os 49 pacientes
foram submetidos à coleta de sangue, a qual foi realizada através de punção venosa a vácuo
em tubo contendo anticoagulante no volume de 4 ml de sangue. As 49 amostras foram
transportadas para o Laboratório de Biologia Molecular da Universidade Federal de Ciências
da Saúde (UFCSPA), onde foram realizadas as análises moleculares.
O sangue foi centrifugado a 500 g por 5 minutos em temperatura ambiente; o plasma
foi separado em um tubo de volume de 1,5 ml. Todas as amostras de plasma seguiram uma
sequência numérica e foram armazenadas em freezer a -80ºC até o momento da extração do
DNA.
A extração de DNA foi realizada com Kit PureLinkTM viral DNA/RNA da Invitrogen
Life Technologies, conforme protocolo do fabricante. Os produtos da extração foram
analisados no aparelho NanoDrop (NanoDrop Technologies, Wilmington, USA), com o
objetivo de analisar a quantidade e qualidade do produto de extração; as amostras de DNA
viral foram armazenadas a -20ºC. O DNA viral foi utilizado em Reações em Cadeia da
Polimerase (PCR) usando o primer forward P2-1(5´- CACAAGAGGACTCTTGGACT-3´)
na posição 1653 – 1672, na concentração de 0,05 µM, e o primer reverse P2-2 (5´GGCAAAAAAGAGAGTAACTC-3´) na posição 1940 – 1959, na concentração de 0,05 µM.
O volume final da PCR foi de 25 µl e a reação ocorreu nas seguintes condições: 95ºC por 5
minutos; 40 ciclos de 95ºC por 1 minuto, 55ºC por 1 minuto, 72ºC por 1 minuto; extensão
final a 72ºC por 5 minutos. O produto da PCR foi analisado por eletroforese em gel de
agarose 1,5 % contendo brometo de etídeo (80 V por 1 hora).
34 O produto da PCR, com tamanho de 307 pb, foi submetido à técnica de RFLP usando
a enzima Sau3AI; essa enzima reconhece a região que apresenta a dupla mutação e cliva o
produto amplificado em dois fragmentos, de 110pb e de 197pb. Para a técnica de RFLP foram
usados 10 µl do produto da PCR para 10 unidades de enzima Sau3AI, em volume final de 50
µl. A reação foi incubada a 37ºC por 100 minutos e inativada a 65ºC por 20 minutos. O
produto da RFLP foi analisado por eletroforese em gel de agarose 2% contendo brometo de
etídeo (80 V por 1 hora).
As variáveis quantitativas foram analisadas estatisticamente por mínima, máxima,
média, desvio padrão e Teste t Student. As variáveis qualitativas foram analisadas por
comparação de duas proporções. O nível de significância adotado foi de 5,0%.
Resultados
Foram analisados 49 pacientes, sendo 21 do gênero feminino (42,85%) e 28 do gênero
masculino (57,14%). A idade mínima foi de 19 anos e a idade máxima foi de 79 anos (média
50,48 e desvio padrão de 12,764).
A análise do perfil dos principais antígenos e anticorpos marcadores da hepatite B
nesses pacientes é apresentada na Tabela 1. Na Tabela 2 são apresentados os principais
parâmetros bioquímicos.
Tabela 1. Principais parâmetros sorológicos para VHB.
HBeAg :antígeno e do vírus da hepatite B; HBeAg: antígeno e do vírus da hepatite B; anti-HBs:
anticorpo anti –HBs; anti-HBe : anticorpo HBe
Tabela 2. Principais parâmetros bioquímicos para VHB.
AST: aspartato aminotrasferase; ALT: alanina aminotransferase; BT:
bilirrubina total; BD: bilirrubina direta; BI: bilirrubina indireta; CREAT:
creatinina.
35 Foi coletada uma amostra de sangue de cada paciente, da qual foi extraído DNA viral.
Todas as extrações foram bem sucedidas e o DNA foi utilizado na PCR para amplificação da
região do genoma do VHB compreendida entre os nucleotídeos 1652 e 1959, gerando um
fragmento de 307pb.
Para a técnica de RFLP, todos os produtos de amplificação foram submetidos à reação
de clivagem com a enzima de restrição Sau3AI. Após, os fragmentos de restrição foram
analisados por eletroforese em gel de agarose. A Figura 1 mostra um gel de agarose com os
resultados de algumas das amostras analisadas.
Todas as amostras apresentaram produtos de amplificação de 307pb, referente à região
amplificada do VHB sem a mutação A1762T/G1764A. Já a presença de VHB contendo a
mutação A1762T/G1764A foi detectada em um total de 4 amostras (8,16%). De acordo com
os resultados das análises dessas 4 amostras, além do fragmento de 307pb referente ao VHB
sem mutação, foram observados os dois fragmentos resultantes da clivagem com a enzima
Sau3AI, de 110pb e 197pb, indicativos da presença da mutação. Ou seja, esses pacientes
apresentaram infecção tanto pela cepa mutante como pela cepa de VHB sem a mutação.
Figura 1. Eletroforese em gel de agarose da RFLP
Amostras com cepa selvagem: 30, 31, 44 e 45. As amostras com
cepa selvagem e cepa mutante: 25, 32, 42 e 47.
Para a análise da carga viral do VHB, as amostras foram separadas em dois grupos:
um grupo com a mutação A1762T/G1764A e outro grupo sem a mutação.
O grupo das amostras positivas para a mutação A1762T/G1764A apresentaram carga
viral com o valor mínimo de 83.000 cópias de vírus, e máximo de 9.480.000 cópias de vírus,
média 3.478.000 e desvio padrão 5.212.795. O grupo das amostras sem a mutação
36 A1762T/G1764A apresentaram carga viral com o valor mínimo de 20 cópias de vírus, e
máximo de 170.000.000 cópias de vírus, média 6.320.278 e desvio padrão 27.373.142. Não
houve diferença significativa nessa associação (p=0,43) (Tabela 3).
Tabela 3. Carga Viral das amostras sem a mutação A1762T/G1764A e com a mutação
A1762T/G1764A.
Sem Mutação
A1762T/G1764A
Mínima
20
83.000
Máxima
170.000.000
9.480.000
Média
6.320.278
3.478.000
Desvio Padrão
27.373.142
5.212.795
39
3
N°
p=0,43
Teste-t: duas amostras presumindo variâncias equivalentes
Os níveis das aminotransferases AST e ALT foram analisados nas amostras de 48
pacientes. Para a AST, 79,16% dos pacientes apresentaram níveis acima de 40 U/l, enquanto
20,83% apresentaram níveis abaixo de 40 U/l. Em relação à ALT, 73,46% dos pacientes
apresentaram níveis acima de 40 U/l, e 26,53% dos pacientes apresentaram níveis abaixo de
40 U/l.
Os níveis de AST e ALT foram analisados considerando-se dois grupos: sem a
mutação e o com a mutação A1762T/G1764A. Como mostrado na Tabela 4, os níveis de AST
foram, em média, mais altos nos pacientes portadores da cepa mutante VHB
A1762T/G1764A do que nos pacientes que não apresentaram vírus com essa mutação, porém
essa diferença não foi estatisticamente significativa (p=0,051). Por outro lado, como mostrado
na Tabela 5, os níveis de ALT foram significativamente mais elevados nos pacientes
portadores do VHB mutante A1762T/G1764A do que nos pacientes que não apresentaram
essa cepa viral (p=0,0028).
37 Tabela 4. Relação de AST das amostras sem a mutação e com a mutação.
Sem Mutação
A1762T/G1764A
Mínima
16
32
Máxima
298
139
Média
37,70
79,25
Desvio Padrão
47,14
14,66
N°
44
4
p=0,051
Teste-t: duas amostras presumindo variâncias equivalentes
Tabela 5. Relação de ALT das amostras sem a mutação e com a mutação.
Sem Mutação
A1762T/G1764A
Mínima
11
30
Máxima
198
214
Média
36,53
101,50
Desvio Padrão
35,82
86,91
N°
45
4
p=0,0028
Teste-t: duas amostras presumindo variâncias equivalentes
Os níveis do antígeno HBeAg, está associado à replicação viral, foram analisados nas
amostras de 42 pacientes, sendo 4 dessas amostras positivas para a mutação A1762T/G1764A
do VHB. Também foram analisados os níveis do anticorpo anti-HBeAg, indicativo de
soroconversão e melhora do quadro clínico, nas amostras de 46 pacientes, sendo 4 dessas
amostras positivas para a mutação A1762T/G1764A do VHB. De acordo com os resultados,
apresentados na Tabela 6, o perfil sorológicos das amostras com a mutação A1762T/G1764A
foi: 25% HBeAg-positivo, 75% HBeAg-negativo, 75% anti-HBe-positivo e 25% antiHBenegativo. Em relação às amostras sem a mutação, 26,31% foram HBeAg-positivo, 73,68%
HBeAg-negativo, 71,42% anti-HBe-positivo e 28,57% antiHBe-negativo. Não houve
diferença significativa nos valores encontrados para o HBeAg e para o antiHBe.
38 Tabela 6. Comparação HBeAg e Anti-HBe e a Mutação A1762T/G1764A.
Sem Mutação
A1762T/G1764A
HBeAg-positivo
10 (26,31%)
1 (25%)
HBeAg-negativo
28 (73,68)
3 (75%)
Anti-HBe-positivo
30 (71,42%)
3 (75%)
Anti-HBe-negativo
12 (28,57%)
1 (25%)
Teste de comparação de duas proporções
Discussão
O VHB é um problema de saúde pública. Por isso, são necessários cada vez mais
estudos para compreender melhor a doença e suas consequências. O estudo do vírus e o
aperfeiçoamento das técnicas destinadas a identificar as mutações podem contribuir para uma
melhora no prognóstico da doença.
Alguns estudos sugerem que mutações na região na região PBC estão associadas ao
aumento no risco de desenvolver cirrose e CHC. A dupla mutação A1762T/G1764A é um
preditivo marcador para o desenvolvimento cirrose e CHC, a qual, está envolvida na
soroconversão HBeAg em anti – HBe em pacientes com aumento a replicação viral [34-35].
Estudos sugerem que a técnica de PCR-RFLP está bem estabelecida para a
identificação da mutação A1762T/G1764A do VHB, bem como o uso da enzima de restrição
em estaque Sau3AI, com bons resultados na sensibilidade da técnica [32].
No presente estudo, foram encontradas 4 (8,16%) amostras positivas para a mutação
A1762T/G1764A do VHB. Comparando com outro estudo com a mesma metodologia, o qual,
apresentou uma frequência da dupla mutação A1762T/G1764A de 55% amostras positivas
[32]
. A frequência de amostras positivas nesse estudo foi baixa devido ao pouco número
selecionado para estudo.
As investigações sugerem que a presença da mutação A1762T/G1764A do VHB está
relacionada com o aumento significativo da replicação viral e, com isso, o mau prognóstico da
doença hepática [34-37]. No presente estudo, não foi encontrada diferença significativa (p=0,43)
nos valores da carga viral comparando os dois grupos: o grupo de pacientes infectados por
VHB sem a mutação A1762T/G1764A, e o grupo de pacientes infectados por VHB que
apresenta a mutação A1762T/G1764A.
As aminotransferases, AST e ALT, são importantes para o monitoramento do dano
hepático. Estudos sugerem que valores acima dos normais podem estar relacionados com a
39 presença da mutação A1762T/G1764A do VHB [32,33]. Neste estudo, os níveis de AST e ALT
foram analisados nos dois grupos de pacientes, com a presença da mutação A1762T/G1764A
do VHB e sem a presença da mutação. Não foi encontrada diferença significativa nos níveis
de AST entre os dois grupos (p=0,051), porém houve uma tendência para níveis mais
elevados no grupo de pacientes que apresentaram o VHB com a mutação A1762T/G1764A.
Em relação à ALT, os níveis foram significativamente mais elevados no grupo de pacientes
portadores de VHB mutante (p=0,0028).
Portadores da dupla mutação A1762T/G1764A do VHB apresentam o perfil
sorológico para o HBeAg: HBeAg-negativo e anti-HBe-positivo na maioria dos casos [32,34].
Conforme estudo do Liao Yun, o qual relaciona a soroconversão do HBeAg em anti-
HBe ao mau prognóstico dos pacientes com VHB. No entanto, quando presente a dupla
mutação A1762T/G1764A do VHB a soroconversão é uma fator independente para o
desenvolvimento de cirrose e/ou CHC [38].
Nesse estudo, à análise da soroconversão do HBeAg-negativo e anti-HBe-positivo
apresentou 75% nos portadores da mutação A1762T/G1764A do VHB e 25% não apresentou
a soroconversão.
Neste contexto, concluímos que são necessárias técnicas mais sensíveis para
identificar a dupla mutação A1762T/G1764A do VHB, levando em conta a importância do
desenvolvimento de cirrose e/ou CHC e aumento do número de amostras para melhorar o
estudo. Assim, poderá contribuir positivamente no entendimento da correlação da dupla
mutação A1762T/G1764A do VHB com os estágios da doença hepática.
40 Referências Bibliográficas 1. Liu WC, Mizokami M, Buti M, et al. Simultaneous quantification and genotyping of
hepatitis B virus for genotypes A to G by real- time PCR and two-step melting curve analysis.
JCM.DEC. 2006; 44(12): 4491-97.
2. Fonsec JCF. História natural da hepatite crônica B. SBMT. nov-dez 2007;40: 672-7.
3. Ferreira MS. Diagnóstico e tratamento da hepatite B. SBMT. jul-ago 2000; 33(4): 389-400.
4. Kane M. Global program for control of hepatitis B infection. Vaccine. 1995; 13:547.
5. Ministério da Saúde – Secretaria de Vigilância em Saúde – Departamento de DST, AIDS e
Hepatites Virais. Boletim epidemiológico hepatites virais ano III n°01. 2012.
6. Brasil LM, Braga WSM, Fonseca JCF. Prevalence of hepatitis B virus (HBV) Infection in
children, Codajas, Amazon Basin, Brazil: a pre-study. Acta Hepatologica. 1991; 1(26).
7. Becker CE, Mattos AA, Bogo MR, et al. Genotyping of hepatitis B virus in a cohort of
patients evaluated in a hospital of porto alegre, south of brazil. Arq. Gastroenterol. jan-mar
2010; 47 (1): 13-7.
8. Kao JH. Molecular epidemiology of hepatitis B virus. KJIM. 2011; 26: 255-61.
9. Kao JH. Hepatitis B viral genotypes: clinical relevance and molecular characteristics. J
Gastroenterol Hepatol. 2002; 17: 643-50.
10. Kidd LK, Miyakawa Y, Kidd AH. Genetic variability in hepatitis B viruses. J Gen Virol.
2002; 83: 1267-80.
11. Kao JH, Chen PJ, Lai MY, et al. Hepatitis B genotypes correlate with clinical outcomes
in patients with chronic hepatitis B. Gastroenterology. 2000; 118: 554-59.
12. Mello FC, Souto FJ, Nabuco LC, et al. Hepatitis B virus genotypes circulating in Brazil:
molecular characterization of genotype F isolates. BMC Microbiol. 2007; 7(103).
13. Teles SA, Martins RM, Vanderborght B, et al. Hepatitis B virus: genotypes and subtypes
in Brazilian hemodialysis patients. Artif Organs. 1999; 23 (12): 1074-78.
14. Sitnik R, Sette HJ, Santana RAF, et al. Hepatitis B virus genotype E detected in Brazil in
an African patient who is a frequent traveller. Braz J Med Biol Res. 2007; 40: 1689-92.
15. Pawlotsky JM. Molecular diagnosis of viral hepatitis. Gastroenterology. Maio 2002; 122
(6): 1554-68.
16. Summers J, Mason WS. Replication of the genome of a hepatitis B-like virus by reverse
transcription of an RNA intermediate. Cell. 1982; 29: 403-15.
17. Wei Y, Neuveut C, Tiollais P, et al. Molecular biology of the hepatitis B virus and role of
the X gene. Pathol. Biol. 2010; 58: 267-72.
41 18. Burns M, Stefan M, Sylvie C, et al. Enhancement of Hepatitis B virus infection by noninfectious sub viral particles. J. Virol. 1998 feb; 72(2): 1462-68.
19. Fonseca JCF. Diagnóstico sorológico das hepatitis virais. Gastroenterologia. 1994; 1: 610.
20. Brasil LM, Fonseca JCF, Souza RB, et al. Prevalência de marcadores para o vírus d
hepatite B em contato domiciliares no estado do amazonas. Rev Soc Bras Med Trop. 2003;
36(5): 565-70.
21. Perrilo, RP, Aach RD. The clinical course and chronic sequelae of hepatitis B virus
infection. Semin Liver Dis. 1981; 1: 15-25.
22. Lok AS, Heathcoat EJ, Hoofnagle JH. Management of hepatitis B: Summary of a
workshop. Gastroenterology. 2001; 120: 1828-53.
23. Hatzakis SJ, Haida E. HBV virological assessment. J Hepatol. 2006; 44: 71-6.
24. Liu CJ, Kao JH, Chen DS. Therapeutic implications of hepatitis B virus genotypes. Liver
Int. 2005; 25 (6): 1097-107.
25. Parise ER, Porta G. Manual de diagnóstico e tratamentos das doenças do fígado no
paciente adulto e pediátrico. São Paulo: Editora Atheneu; 2011.
26. Lok ASF. Treatment of chronic hepatitis B. J Viral Hepat. 1994; 1:105-24.
27. Wong DK, Cheung AM, O´Rourke K, et al. Effect of alpha-interferon in patients with
hepatitis B e antigen-positive chronic hepatitis B: Meta-analysis. Ann Intern Med. 1993; 119:
312-23.
28. Parekh S, Zoulim F, Ahn SH, et al. Genome replication, virion secretion, and e antigen
expression of naturally occurring hepatitis B virus core promoter mutants. J Virol. 2003 Jun;
77(12): 6601-12.
29. Marrone A, Zampino R, Luongo G, et al Low HBeAg serum levels correlate with the
presence of the double A1762T/G1764A core promoter mutation and a positive response to
interferon in patients with chronic hepatitis B virus infection. Intervirology.01/2003; 46 (4):
222-6.
30. Magnius L, Espmar J. New specificities in Australian antigen positive sera distinct from
the Le Bouvier determinants. J Immunol. 1972 nov; 109 (5): 1017-21.
31. Gunther S, Piwon N, Will H. Wild-type levels of pregenomic RNA and replication but
reduced pre-C RNA and e-antigen synthesis of hepatitis B virus with C (1653) --> T, A
(1762) --> T and G (1764) --> A mutations in the core promoter. J Gen Virol. 1998 feb; 79
(2): 375-80.
42 32. Takahashi K, Aoyama K, Ohno N, et al. The precore/core promoter mutant
(T1762A1764) of hepatitis B virus: clinical significance and an easy method for detection. J.
Gen Virol. 1995 Dec; 76 (12): 3159-64.
33. Papatheodoridis GV, Hadziyannis SJ. Review article: current management of chronic
hepatitis B.AP&T.2004; 19:25-37.
34. Liu S, Zhang H, Gu C, et al. Association between hepatitis B virus mutations and the risk
of hepatocellular carcinoma: A meta- analysis. J Natl Cancer Inst. 2009 Aug 5; 101(15):
1066-82.
35. Wang YZ, Zhu Z, Zhang HY, et al. Detection of hepatitis B virus A1762T/G1764A
mutant by amplification refractory mutation system. Braz J Infect Dis. 2014; 18 (3): 261-265.
36. Eloy AMX, Moreira RC, Lemos MF, et al. Hepatitis B virus in the State of Alagoas,
Brazil: genotypes characterization and mutations of the precore and basal core promoter
regions. Braz J Infect Dis. 2 0 1 3; 17(6): 704–706.
37. Yuan JM, Ambinder A, Fan Y, et al. Prospective evaluation of hepatitis b 1762(t)/1764(a)
mutations on hepatocellular carcinoma development in shanghai, china. Cancer Epidemiol
Biomarkers Prev. 2009 Feb; 18(2): 590-4.
38. Liao Y, Hu X, Chen J, et al. Precore mutation of hepatitis b virus may contribute to
hepatocellular carcinoma risk: evidence from an updated meta-analysis. PLoS One. 2012; 7
(6): e38394.
43 CONSIDERAÇÕES FINAIS
Os resultados encontrados apresentam baixa significância em decorrência do pouco
número de amostras selecionadas, isso ocorreu devido a um dos critérios de inclusão, carga
viral alta, critério esse necessário na análise molecular do VHB.
Senso assim é necessário aumentar o número de amostras, propondo novas parcerias
em centros de pesquisas, com o objetivo de captar novos pacientes com VHB e carga viral
alta.
Apesar da técnica de RFLP está bem estabelecida para a identificação da mutação
A1762T/G1764A do VHB, seria vantajoso implementar técnicas mais avançadas como a
qPCR, a qual aumenta a sensibilidade do teste e, ao mesmo tempo, podemos quantificar as
cepas mutadas, considerando a comprovação de que em uma mesma amostra podemos
encontrar cepas selvagem e cepas mutadas ao mesmo tempo.
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