UNIVERSIDADE FEDERAL DE GOIÁS ESCOLA DE VETERINÁRIA E ZOOTECIA PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIENCIA ANIMAL Disciplina: SEMINÁRIOS APLICADOS SAÚDE INTESTINAL DAS AVES Édilon Sembarski de Oliveira Orientadora: Maria Auxiliadora Andrade GOIÂNIA 2012 ii ÉDILON SEMBARSKI DE OLIVEIRA SAÚDE INTESTINAL DAS AVES Seminário apresentado junto à Disciplina Seminários Aplicados do Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal da Escola de Veterinária e Zootecnia da Universidade Federal de Goiás. Nível: Mestrado Área de Concentração: Sanidade Animal, Higiene e Tecnologia de Alimentos. Linha de pesquisa: Etiopatogenia, epidemiologia, diagnóstico e controle das doenças infecciosas dos animais Orientadora: Profª. Drª. Maria Auxiliadora Andrade Comitê de Orientação: Drª. Eliete Souza Santana Prof. Marcos Barcelos Café Goiânia 2012 iii SUMÁRIO 1 INTRODUÇÃO ............................................................................................................. 1 2 REVISÃO BIBLIOGRAFICA ......................................................................................... 3 2.1 Estrutura e imunologia .............................................................................................. 3 2.1.1 Estrutura celular ..................................................................................................... 4 2.1.2 Estruturas linfoides especializadas ........................................................................ 6 2.1.3 Células do sistema imune inato.............................................................................. 8 2.1.4 Células sistema imune adaptativo .......................................................................... 9 2.2 Desenvolvimento e microbiota intestinal ................................................................. 10 2.2.1 Microrganismo entéricos comensais .................................................................... 11 2.2.2 Microrganismos entéricos causadores de enfermidades ..................................... 13 3 CONSIDERAÇÕES FINAIS ....................................................................................... 19 REFERÊNCIAS ............................................................................................................. 20 1 INTRODUÇÃO A avicultura brasileira exerce importante papel na economia, tendo sido registrado um consumo de carne de frango 44,09 per capita e uma exportação 3,8 milhões de toneladas, apenas para carne de frango no ano de 2010 (UBABEF, 2010). Há grandes avanços na seleção genética nesse setor, o que fez com que linhagens modernas apresentem uma melhor conversão alimentar, ganho de peso e desempenho, quando comparadas com aves de uma linhagem não selecionada. As aves selecionadas também apresentaram maior peso relativo do músculo do peito, amadurecimento mais precoce do fígado e maiores seções do intestino que as aves não selecionadas (SCHMIDT et al., 2009). A seleção de linhagens de frango para uma maior produção de carne alterou o crescimento relativo dos órgãos em linhagens modernas, em comparação com linhagens sem seleção. Alterando também a estrutura intestinal da ave moderna, quando comparada aos seus antepassados. Fazendo com que esta apresente uma maior densidade e área absortiva no intestino que aves sem seleção (CROOM et al., 1999). As aves necessitam de um intestino saudável e capaz de atender as necessidades de digestão, absorção de nutrientes e de defesa. Funções estas que são necessárias para que a ave possa expressar todo seu potencial genético e de desempenho. A saúde intestinal possui grande importância nesse papel, pois alterações nesta acarretam doenças, diminuição da digestibilidade e desempenho. O que leva a perdas na conversão alimentar e consequente prejuízos econômicos relevantes, pois cerca de 66% dos custos totais de produção são gastos na nutrição das aves (PORTER-JR, 1998). O intestino funciona como uma barreira física entre o meio interno e o meio externo. Além de funcionar como uma barreira seletiva, que necessita diferenciar antígenos de patógenos, antígenos de microrganismos comensais e nutrientes. Para isto diversos mecanismos imunes e de tolerância são empregados. Diversos microrganismos vivem de maneira comensal no intestino, estes podem auxiliar no processo digestivo e competir por sítios de ligação com patógenos. 2 Mudanças no meio intestinal podem predispor o surgimento de doenças, pela colonização do intestino por microrganismos patogênicos, ou por bactérias oportunistas. O intestino das aves possui diversas particularidades, tanto anatômicas como funcionais, quando comparado com o intestino de mamíferos. Assim se faz necessário o conhecimento dessas particularidades, para que seja possível a compreensão do funcionamento, facilitando o entendimento dos diversos mecanismos empregados pelo sistema gastrintestinal em doença ou em saúde. O objetivo dessa revisão é abordar tanto características anatômicas, quanto imunológicas e de alguns microrganismos, tanto patogênicos quando benéficos, para que haja uma melhor compreensão da saúde intestinal no processo saúde doença. 3 2 REVISÃO BIBLIOGRAFICA 2.1 Estrutura e imunologia O intestino das aves é semelhante ao dos mamíferos, possuindo entretanto algumas particularidades. O intestino pode ser dividido em intestino delgado e grosso, sendo o intestino delgado constituído por duodeno, jejuno e íleo, e o intestino grosso de ceco, colón e cloaca (BACHA & BACHA, 2000). O epitélio intestinal serve como uma barreira dinâmica, a qual, no decurso do seu funcionamento normal, mantém regulada a absorção de nutrientes e água, excluindo os potenciais agentes patogênicos, sendo o intestino a mais importante via de entrada para os antígenos estranhos (OSWALD, 2005). Para proteger o hospedeiro contra doenças é essencial que mecanismos de defesa sejam empregados na superfície da mucosa (BEAL et al., 2006). Estas defesas incluem os fatores específicos e os fatores não específicos. Os fatores específicos do hospedeiro são mediados por linfócitos e suas secreções, tais como anticorpos e citocinas. Os fatores não específicos incluem barreiras físicas, fagócitos, leucócitos e o sistema complemento. Outro componente importante da linha de defesa primaria é representado pelas barreiras não especificas como secreções gástricas, lisozimas e sais biliares, o peristaltismo e a competição por microrganismos comensais (YUN et al., 2005). O sistema imune do intestino, em contraste com outros sistemas imunes luminais, como aqueles protegendo os tratos respiratórios e reprodutivos, deve ser capaz de diferenciar entre dois tipos de materiais estranhos. Antígenos inofensivos, tais como proteínas alimentares e bactérias comensais do intestino precisam ser tolerados, enquanto que antígenos provenientes de patógenos precisam acionar a resposta imune. Um fino balaço entre resposta e tolerância é essencial para a saúde intestinal (MOWAT, 2003; BEAL et al., 2006). Existem pelo menos dois grupos de efeitos que contribuem para o controle das respostas potencialmente prejudiciais contra antígenos derivados de não patógeno 4 no intestino, a primeira sendo a ausência de resposta devido à falta de exposição de um antígeno específico (ignorância oral) e o segundo devido a alguma forma de prevenção ativa ou a modulação de uma resposta (tolerância oral). A exigência de não responder à maioria do material estranho apresentado no intestino é um recurso que assinala este ambiente imunológico como único (SMITH & BEAL, 2008). O intestino é sensível a perturbações e as respostas imunes locais geralmente levam a manifestações macroscópicas. Os sinais clássicos de uma resposta imunológica em curso no intestino incluem o aumento da infiltração de leucócitos na lâmina própria e as mudanças na estrutura do intestino, como a atrofia das vilosidades e hiperplasia dos enterócitos nas criptas (SMITH & BEAL, 2008; BEAL et al., 2006). Os antígenos que podem entrar em contato com o intestino incluem proteínas alimentares, toxinas naturais, microbiota intestinal comensal e patógenos invasores (OSWALD, 2005). O intestino possui quatro camadas distintas: a mucosa, a submucosa, a muscular e a serosa. A camada mucosa inclui o epitélio de revestimento, a lâmina própria, as glândulas, a muscular da mucosa e os vilos. Os vilos são projeções da mucosa, estes são recobertos por epitélio colunar simples e estão presentes no intestino delgado e grosso. São maiores no intestino delgado e diminuem gradualmente de altura e se tornam mais largos ao longo do intestino. A submucosa é uma camada de tecido conjuntivo que é mais densa que a lâmina própria, sendo extremamente fina nas galinhas. A camada muscular consiste de uma camada de músculo liso interna circular e externa longitudinal, uma terceira camada de músculo liso pode estar presente nas aves. A serosa recobre todo o intestino consistindo de uma camada de tecido conjuntivo coberto por mesotélio. Nas aves há ausência de glândulas duodenais (Glândulas de Brunner), entretanto tecido linfático é particularmente abundante (BACHA & BACHA, 2000; AUGHEY & FRYE, 2001; FRAPPIER, 2007). Os vilos são constituídos por três tipos de células funcionalmente distintas: os enterócitos, as células caliciformes e as células enteroendocrinas (EROSCHENKO, 2008). 2.1.1 Estrutura celular 5 Os enterócitos são as células mais comuns no epitélio intestinal, são células colunares altas, com uma proeminente borda em escova de microvilos. São responsáveis por três funções principais, sendo sua função principal a de digestão final do alimento e transporte transepitelial dos nutrientes a partir do lúmen. Em segundo lugar, em função da superfície da mucosa do intestino ser a maior parte do corpo em contato com o ambiente externo, as suas células epiteliais estão expostas a uma grande variedade de antígenos estranhos e consequentemente compõem uma grande parte da primeira linha de defesa contra patógenos ingeridos. Atuando como uma barreira física, que separa o conteúdo luminal das camadas de tecido do meio interno. Finalmente células intestinais epiteliais passam por um ciclo contínuo de morte celular e regeneração, eliminando as células danificadas pelo processo digestivo ou agentes ambientais nocivos (MAIORKA, 2004; OSWALD, 2005; YUN et al., 2005; EROSCHENKO, 2008). Já as Células caliciformes ou células de Goblet estão intercaladas entre os enterócitos, aumentando em número gradualmente ao longo do intestino. São células secretoras de mucinas, que possuem como uma de suas funções proteger o epitélio intestinal da ação de enzimas digestivas e efeitos abrasivos da digesta. A mucina funciona como uma barreira protetora contra os componentes luminais nocivos, também atuando como uma barreira contra a translocação bacteriana (MAIORKA, 2004; SMIRNOV et al., 2005; EROSCHENKO, 2008). A camada de muco faz parte dos vários sistemas de proteção desenvolvidos pelas células intestinais. Esta é composta por mucinas associadas a outras proteínas e lipídios, que formam um gel fluido contínuo, rico em bicarbonato e com a função de promover a manutenção do pH neutro na superfície epitelial (OSWALD, 2005). A camada de muco tem papel importante contra a ação mecânica, lubrificando o intestino e, também, na proteção contra infecções, pois funciona como barreira protetora que impede o contato direto de microrganismos com as células epiteliais (MAIORKA, 2004). As mucinas são pouco digeridas antes de chegar ao intestino grosso. Neste local são fermentadas por bactérias entéricas, dessa forma influenciando o ambiente microbiano intestinal (OSWALD, 2005). 6 A camada de muco está em equilíbrio dinâmico entre a síntese e secreção de mucina pelas células caliciformes no epitélio intestinal. Muitas substâncias, incluindo contaminantes de alimentos, hormônios, neuropeptídios e mediadores inflamatórios tais como as citocinas e lipídios, podem regular a síntese de mucina e induzir sua liberação (OSWALD, 2005). As células enteroendócrinas estão distribuídas pelo epitélio dos vilos e glândulas intestinais. São produtoras de hormônios peptídicos (gastrina, secretina e colecistoquinina) e monoaminas biogênicas, substâncias essas que participam na regulação da digestão, absorção e utilização dos nutrientes (MAIORKA, 2004; EROSCHENKO, 2008). Células tronco estão localizadas na região das criptas e podem ser definidas como células proliferativas capazes de se manter, se dividir um grande número de vezes e produzir células filhas capazes de se diferenciar em várias linhagens, sendo também capazes de se manter para assegurar a expansão do número de células tronco requeridas após uma lesão (MARSHMAN et al., 2002). 2.1.2 Estruturas linfoides especializadas As estruturas linfoides especializadas basicamente possuem um epitélio especializado contendo células M, que apresentam antígenos presentes no lúmen intestinal para macrófagos e células dendríticas subjacentes. Em estreita proximidade com as células M, e com diferentes graus de organização, estão folículos ricos em linfócitos B e T (BEAL et al., 2006). Fazem parte das estruturas linfoides especializadas a Bursa de Fabricius, infiltrados linfoides difusos na mucosa, tonsilas cecais, divertículo de Meckel e placas de Peyer (CHRISTENSEN et al., 2006; SMITH & BEAL, 2008). Segundo BEFUS et al., (1980), o tecido linfoide do intestino delgado de frangos é considerado relativamente pouco organizado, quando comparado com o do intestino grosso. O tecido linfoide associado ao intestino compreende células linfoides residindo no epitélio e distribuídas na lâmina própria. Estas células linfoides são compostas de 80% linfócitos, 10 a 15% monócitos, cerca de 5% de outras células mononucleares e menos de 1% de leucócitos polimorfonucleares e células plasmáticas. 7 Estas células agem em locais efetores, assim como em estruturas linfoides especializadas localizadas em locais estratégicos ao longo do intestino, responsáveis pela indução da resposta imunitária. (YUN et al., 2000; MOWAT, 2003; BEAL et al., 2006). As placas de Peyer compreendem agregados linfóides, encontradas na submucosa ao longo do intestino delgado e fornecem um local importante para o contato entre antígenos e tecidos linfoides. São semelhantes as placas de Peyer dos mamíferos em muitos aspectos (BEFUS et al., 1980; MOWAT, 2003; YUN et al., 2005). As placas de Peyer presentes nas aves se desenvolvem de uma a duas estruturas em pintos de dez dias para cinco estruturas difusamente espalhadas no intestino de aves de 16 semanas de idade. Com o envelhecimento da ave o número de placas de Peyer declina para apenas uma as 58 semanas, localizada próxima a junção ileocecal. As placas de Peyer possuem epitélio linfoide distinto com células M com alta atividade de picnócitos, folículos e uma zona subepitelial e central semelhante as tonsilas cecais (BEFUS et al., 1980). A rota mais aceita para a apresentação de antígenos para linfócitos T ocorre nas placas de Peyer através das células M, entretanto rotas alternativas podem ser tão importantes quanto. Algumas destas são: a difusão do antígeno pelo sangue para tecidos linfoides periféricos; transferência de antígeno para o fígado através da veia porta, e apresentação de antígeno às células T por enterócitos ou células apresentadoras de antígeno profissionais na lâmina própria (MOWAT, 2003). A Bursa de Fabricius é essencial para o desenvolvimento normal dos linfócitos B em aves e um importante meio pelo qual os antígenos ambientais estimulam o sistema imunitário. É colonizado durante a vida embrionária por um número limitado de precursores de células B (MOORE & OWEN, 1966; EKINO, et al., 1985; RATCLIFFE, 2006). Após eclosão, antígenos do lúmen intestinal são facilmente absorvidos e depositados na parte medular dos folículos da Bursa. A Bursa está intrinsecamente exposta ao conteúdo próximo à cloaca através do duto da Bursa. Embora o desenvolvimento da Bursa antes da eclosão ocorra na ausência de antígeno exógeno, 8 o desenvolvimento de células B após a eclosão pode ser influenciado pela presença de antígenos do meio ambiente (SCHAFFNER et al., 1974; RATCLIFFE, 2006). Tonsilas cecais é o tecido linfoide de maior importância no ceco e constituem a maior coleção de linfócitos associados ao intestino no frango. Linfócitos em tonsilas cecais consistem de 45 ± 55% de linfócitos B e 35% de linfócitos T e estão envolvidos nas funções, tanto da produção de anticorpos, como das ações mediadas por células imunitárias (BEFUS et al., 1980). Anatomicamente, tonsilas cecais estão localizadas na junção ileocecal e não estão presentes no momento da eclosão, mas se desenvolvem pouco depois. Sua maturação imunológica e tamanho são dependentes do grau de estimulação antigénica no intestino (YUN et al., 2005). 2.1.3 Células do sistema imune inato Os macrófagos são células encontradas em todos os tecidos do corpo. Realizando diversas funções celulares, que permitem eliminar microrganismos invasores e células neoplásicas. Os principais papéis de macrófagos estão na fagocitose e na apresentação de antígenos. Estas células expressam diversas moléculas de reconhecimento de padrões na sua superfície, a fim de detectar agentes patogênicos. Também expressam uma variedade de receptores do tipo toll que reconhecem uma gama de compostos derivados de bactérias, fungos, vírus e parasitas (DIL & QURESHI, 2002; IQBAL et al., 2005). As células dendríticas na lâmina própria podem fazer a absorção de antígeno através do epitélio que recobre a mucosa das vilosidades e da lâmina própria. Estas células estão idealmente localizadas para recolher qualquer material que é transportado entre ou através das células epiteliais (MOWAT, 2003). A função e caracterização de células natural killers(NK) de aves estão relativamente bem definidas por comparação com equivalentes de mamíferos. Estas células são grandes, com proeminentes grânulos intracelulares contendo perforina e granzimas, entretanto não expressam os receptores para célula T, ou receptor para célula B (BEAL et al., 2006). As células NK representam uma classe de linfócitos 9 citotóxicos para células alvo singênico, alogênica, e xenogênica, incluindo as células hematopoiéticas, células tumorais e células infectadas por certos vírus ou outros parasitas intracelulares, na ausência de prévia sensibilização (YUN et al., 2005). Os heterófilos são o equivalente ao neutrófilo das aves. São os leucócitos polimorfos nucleares mais abundantes, desempenhando um papel importante na fagocitose e destruição de patógenos invasores. Heterofilos de aves dependem principalmente de defensinas para destruir microrganismos invasores. Heterofilos estão associados com a inflamação e são recrutados logo após a infecção (BEAL et al., 2006). Células M são células epiteliais altamente especializadas que cobrem as placas de Peyer e grandes nódulos linfáticos, não podendo ser encontrados em nem um outro local no intestino. As células M fagocitam antígenos luminais e os apresentam para linfócitos e macrófagos na lâmina própria, o que então estimula a produção de anticorpos específicos contra antígenos (EROSCHENKO, 2008). Entretanto apesar de sua atividade como célula de defesa, estas podem ser usadas como rota de invasão de uma ampla gama de agentes patogênicos como vírus, bactérias e protozoários. Acredita-se que isto ocorre pela relativa ausência de glicocálice e membrana em escova das células M (JEPSON, & CLARK, 1998). Acreditava-se que as células M fossem a principal, se não a única forma, na qual os antígenos complexos poderiam ter acesso às células de defesa intestinais. Porém células M provavelmente não processam antígenos próprios, em vez disso, acredita-se que passem os antígenos intactos para as células apresentadoras de antígenos profissionais no epitélio ou na região subjacente (MOWAT, 2003). As células de Paneth são células secretoras especializadas localizadas na base das criptas de Lieberkhun em algumas espécies. Contudo diversos estudos não demonstraram a evidencia da existência de células de Paneth em aves (NILE et al., 2004; ILLANES et al., 2006). Portanto enquanto lisozimas são produzidas no intestino das aves, esta é sintetizada por células do epitélio intestinal semelhantes a enterócitos (NILE et al., 2004). 2.1.4 Células sistema imune adaptativo 10 A resposta imune no intestino inclue a resposta química e resposta celular, podendo ser especificas ou inespecíficas (inatas). As respostas específicas são mediadas pelos linfócitos B e T. Os linfócitos B e T do intestino possuem algumas particularidades quando comparado aos linfócitos B e T do sistema imune sistêmico (BEAL et al., 2006). Os linfócitos são principalmente células T, predominantemente CD4 e de memória e células T efetoras e as células B e plasmócitos são em grande parte produtores de imunoglobulinas do tipo IgA. Linfócitos intestinais estão presentes nos dois compartimentos anatômicos, o epitélio e a lâmina própria (YUN et al., 2005). Ao contrário de roedores e primatas que têm duas cadeias leves κ e λ, a galinha tem uma única de cadeia leve de Ig (RATCLIFFE, 2006). 2.2 Desenvolvimento e microbiota intestinal As células tronco localizadas na região das criptas, com o decorrer de sua migração, se diferenciam e migram para o topo do vilo, sendo então extrusadas do ápice para o lúmen intestinal (UNI et al., 2001). O local de proliferação e a taxa de migração variam entre os vertebrados. Na maioria dos mamíferos a proliferação é restrita as criptas e a base do vilo, e as células filhas migram para o ápice do vilo, onde se especializam e perdem sua capacidade de multiplicação (UNI et al., 2006). Em frangos a proliferação de enterócitos não é restrita à região da cripta, mas também ocorre ao longo do vilo (UNI et al., 1998). Há um aumento no volume das vilosidades e profundidade das criptas entre quatro e 21 dias de idade, entretanto pouca mudança é detectada na densidade dos enterócitos com o aumento da idade (UNI et al., 1998). A taxa de turnover diz respeito à velocidade de renovação celular, em que esta é dependente do processo de proliferação, migração e extrusão celular. O tempo necessário para o enterócito migrar da base até o ápice das vilosidades aumenta com a idade, levando aproximadamente 72 horas em pintos de quatro dias e 96 horas em aves mais velhas (UNI et al., 2006; SMITH & BEAL, 2008). 11 A proliferação, migração, diferenciação e maturação das células tronco nas criptas são reguladas por uma variedade de fatores, incluindo nutrientes no lúmen intestinal, hormônios gastrointestinais tróficos, fatores de crescimento e citocinas (MARSHMAN et al., 2002). A composição da dieta, a microbiota, assim como a interação entre a dieta e a microbiota podem afetar o desenvolvimento intestinal, a arquitetura da mucosa e a composição do muco do trato gastrintestinal (LAN et al., 2005). 2.2.1 Microrganismo entéricos comensais Os microrganismos do trato gastrintestinal são compostos por bactérias, fungos e protozoários, com predomínio de bactérias. A parte superior do trato digestivo é basicamente ocupada por anaeróbios facultativos, enquanto que os cecos são principalmente ocupados por anaeróbios. Os tipos, números e atividades metabólicas dos organismos, que ocupam o sistema gastrintestinal, são afetados por vários fatores, como a idade, o indivíduo, o animal, o meio ambiente e a dieta (GABRIEL et al., 2006). A presença de bactérias no trato gastrintestinal logo após a eclosão é quase inexistente. A complexidade da microbiota intestinal aumenta com o avançar da idade, existindo fatores específicos do hospedeiro que exercem influencia no estabelecimento dessa microbiota dominante (WIELEN et al., 2002). As populações de bactérias comensais intestinais podem proteger o hospedeiro da colonização por patógenos invasores, ocupando sítios de ligação na superfície da mucosa, competindo por nutrientes, fortalecendo a resposta imune intestinal e pela produção de bacteriocinas (LAN et al., 2005; BURKHOLDER et al., 2008). A microbiota do trato gastrointestinal varia em relação a idade da ave, sendo os lactobacilos e bifidobactérias os presentes em maior proporção (AMITROMACH et al., 2004). Bactérias ácido láticas possuem propriedades imunoestimulatórias dos componentes da parede celular, como peptideoglicanos, polissacarídeos e ácido teicoico (LAN et al., 2005). A microbiota do trato gastrintestinal exerce um importante papel na nutrição, detoxificação de certos compostos, desempenho das aves e proteção contra 12 bactérias patogênicas. Diversos fatores estressantes, como jejum e altas temperaturas, exercem influencia sobre a microbiota intestinal, assim como promovem a suscetibilidade da ave a patógenos como Salmonella enterica sorovar Enteretidis (WIELEN et al., 2002; AMIT-ROMACH et al., 2004; BURKHOLDER et al., 2008). Aves aos quatro dias apresentam relativamente maiores números de Salmonella sp., Campylobacter spp., Escherichia.coli e Clostridium que aves aos 14 dias, havendo um aumento de bactérias principalmente no ceco e um aumento de lactobacilos e bifidobactérias (AMIT-ROMACH et al., 2004). Isto ocorre pelo fato do intestino da ave logo após a eclosão estar imaturo, não sendo capaz de montar uma resposta imune eficiente contra esses patógenos. Além de após a eclosão a microbiota não estár totalmente estabelecida, fazendo com que a ave se torne particularmente suscetível à invasão por patógenos (LAN et al., 2005). O intestino também é um local de colonização por vírus, bactérias e parasitas. Embora alguns patógenos continuem a ocupar o lúmen, outros invadem o tecido para ganhar acesso ao ambiente interno, onde sua replicação pode causar doença (BEAL et al., 2006). Ao considerar os mecanismos de imunidade intestinal é importante considerar a biologia dos agentes patogênicos em relação aos tecidos do hospedeiro. Por exemplo, alguns agentes patogênicos se localizam predominantemente no lúmen do intestino e causam pouco dano (por exemplo, nematódeos, cestódeos e algumas bactérias entéricas), mas podem persistir por períodos prolongados, enquanto que outros residem em nichos intracelulares e podem causar doença aguda (por exemplo, Eimeria spp.). Outros agentes patogênicos usam o intestino como uma porta de entrada para os tecidos, embora residindo no intestino por períodos de tempo relativamente curtos (SMITH & BEAL, 2008). Bactérias filamentosas segmentadas são microrganismos autóctones que colonizam o íleo de diversos animais por se ligar as células do epitélio intestinal. Estas bactérias apatogênicas estimulam o sistema imune da mucosa por elevar o número de células linfoides e a secreção de imunoglobulina A (KLAASEN et al., 1993). A colonização por bactérias nos diferentes segmentos parece estar dependente da aderência da fímbria de uma bactéria com o glicocálice do enterócito. 13 Em muitos casos o elo entre estas estruturas, pode ser uma proteína denominada de lectina, a qual se liga especificamente a um polissacarídeo com estrutura molecular peculiar (MAIORKA et al., 2001). O intestino também é o principal local de desenvolvimento, colonização e porta de entrada de microrganismos patogênicos para os tecidos mais profundos do corpo, portanto qualquer perturbação da fisiologia do intestino muitas vezes resulta em consequências clínicas relevantes (SMITH & BEAL, 2008). A etiologia das doenças entéricas é complexa, podendo estar envolvidos uma combinação de vírus, bactérias e outros agentes infecciosos ou não infecciosos. (SAIF et al., 2008). 2.2.2 Microrganismos entéricos causadores de enfermidades a- Vírus A maior parte das infecções virais entéricas ocorre nas primeiras três semanas de vida. Os sinais clínicos e lesões induzidas por diferentes vírus são semelhantes, sendo difícil atribuir uma doença entérica a um vírus específico. A menos que sejam iniciados estudos laboratoriais para identificar o agente causador. Além disso, a presença de diferentes combinações de vírus pode resultar em apresentações da doença de variadas formas. Em geral, alta morbidade e baixa letalidade existem quando apenas um vírus é detectado, mas letalidade pode ser alta quando vários vírus estão presentes (SAIF et al., 2008). Infecção viral e consequente dano aos enterócitos nos vilos altera o balanço por reduzir a superfície de contato da mucosa (atrofia de vilo) e por alterar a função individual dos enterócitos nos vilos. Esses efeitos levam a redução generalizada da capacidade digestiva e absortiva (GUY, 2006). Diversos vírus foram identificados como causadores de infecções do trato gastrointestinal nas aves. Estes incluem vírus do gênero Rotavirus, Coronavirus, Adenovirus, Enterovirus, Astrovírus e Reovirus. Além disso, outros vírus de importância 14 desconhecido tem sido associado com doenças gastrointestinais em aves com base em análises em microscópico eletrônico de excreta e conteúdo intestinal (GUY, 1998). Enterite induzida por vírus em frangos e perus é comumente causada por vírus que tem como alvo enterócitos que cobrem o vilo intestinal, sendo a diarreia e trato gastrointestinal distendido com gás e conteúdo líquido uma manifestação comum da doença. Diferentes vírus replicam em diferentes partes do trato gastrintestinais e em locais diferentes dos vilos. Entretanto, vírus que causam doenças, como resultado da replicação em enterócitos comprometendo a cripta de Lieberkuhn (ex. Parvovirus), não foram identificados em frangos e perus (GUY, 2006; SAIF et al., 2008). Estudos epidemiológicos indicaram que vírus entéricos não persistem por muito tempo nas aves. Vírus entéricos são geralmente a causa da maior parte dos desafios primários do trato gastrointestinal de aves jovens. Isto proporciona a outros agentes, principalmente bactérias, um meio de replicar, anexar e penetrar neste tecido, levando a novas lesões (SAIF et al., 2008). Outra possibilidade é que o dano causado pela enterite induzida por vírus pode potencializar a proliferação de outros agentes infecciosos por alterar o lúmen intestinal e pela presença de alimento não digerido (GUY, 2006). O Coronavirus, agente da bronquite infecciosa, afeta ovários, sistema respiratório e sistema digestivo, permanecendo por mais tempo nos tecidos intestinais do que respiratórios, sendo encontradas ocasionalmente lesões microscópicas com infiltração heterofílica (OWEN et al., 1991; SAIF et al., 2008) O Paramixovirus aviário tipo 1, agente da doença de Newcastlle (doença de notificação compulsória) apresenta diferentes formas clínicomorfologicas, de acordo com a virulência, o patótipo e o tropismo do vírus. Na forma viscerotrópica, as lesões se caracterizam pela presença de úlceras e hemorragia no sistema gastrintestinal (SANTOS et al., 2009), principalmente na mucosa do proventrículo e intestinos, as quais parecem resultar de necrose da parede intestinal ou tecidos linfóides das tonsilas cecais e placas de Peyer (SAIF et al., 2008). O vírus do gênero Influenzavirus causa a influenza aviária. Também possui formas clinicas variáveis dependendo da patogenicidade do vírus (SANTOS et al., 2009). Como o vírus da doença de Newcastlle apresenta lesões no trato digestivo 15 confinado principalmente as áreas linfoides, placas de Peyer e tonsilas cecais. Destas áreas, a tonsila cecal é a mais afetada, apresentando enterite hemorrágica com infiltrações heterofílica (PERKINS & SWAYNE, 2001). 2.2.2.2 Bactérias Dentre as doenças bacterianas três se destacam por infectar principalmente o intestino: enterite necrótica, enterite ulcerativa e espiroquetose. Enquanto que outras bactérias responsáveis pela salmonelose, colibacilose, micobacteriose, erisipela, e cólera aviária, além do intestino podem disseminar para vario outros órgãos (PORTER-JR, 1998). Espiroquetose, em frangos tem sido associada a doença entérica e menor produção de ovos (TRAMPEL et al., 1994), sendo que a necropsia das aves apresenta conteúdo cecal verde-escuros de consistência pastosa no ceco e um número mínimo de linfócitos, células plasmáticas e macrófagos no interior da lâmina própria (SWAYNE et al., 1995). Enterite necrótica em galinhas é frequentemente associada ao Clostridium perfringens, produtor de toxina, que é encontrado naturalmente no intestino de 75-90% de aves. Número elevado de clostrídios não se correlaciona diretamente com a incidência de enterite necrótica e doença é influenciada por fatores como a co-infecção de outros agentes, pH intestinal e dieta (SMITH & BEAL, 2008). As lesões são normalmente restritas ao intestino delgado. O intestino geralmente se encontra distendido por gás e por líquido marrom escuro. A necrose muitas vezes estende para dentro da túnica muscular e pode ulcerar através da serosa (PORTER-JR, 1998). Outro agente Campylobacter jejuni é uma causas da enterite inflamatória em humanos, mas no trato gastrointestinal dos animais está presente de maneira comensal. In vitro, a C. jejuni induz a produção de citocinas em humano e aves. Isto sugere que, in vivo, esta poderia induzir sinais pró-inflamatórios em ambos os hospedeiros Estes resultados sugerem que em aves pode haver um processo inflamatório controlado durante a colonização (SMITH et al., 2008). 16 Bactérias do gênero Salmonella possuem preferencia para colonizar o trato intestinal. Infecções por salmonela podem ser sistémicas e são, por vezes, acompanhadas por lesões entéricas (PORTER-JR, 1998). Salmonelas adaptadas ao hospedeiro, como Salmonella enterica sorovar Pullorum e sorovar Gallinarum são altamente virulentas e patogênicas em frangos de corte, produzindo o tifo aviário e pulorose, respectivamente. Estes sorovares causam alta mortalidade em pintos de um dia, mas não em frangos de três semanas, entretanto causam a doença. Estes efeitos não acontecem quando estas foram testadas em camundongos, indicando uma especificidade ao hospedeiro (BARROW et al., 1994). Outros sorovares como o sorovar Typhimurium foram capazes de gerar doença tanto em camundongos quanto em pintos de um dia, no entanto não produziram esse efeito em frangos de três semanas. Outros sorovares não adaptados aos hospedeiros não produziram mortalidade ou morbidade em camundongos e frangos. (BARROW et al., 1994). A penetração a partir do intestino para o sistema retículo-endotelial é um processo multi etapas que envolve, pelo menos, a sobrevivência no intestino, a adesão, a invasão e a translocação para o baço (BARROW et al., 1994). Na invasão a ausência de flagelos das Salmonella enterica sorovar Pullorum, ou sorovar Gallinarum, não causa inflamação significativa, como causado por Salmonella enterica sorovar Typhimurium ou S. Enteritidis. A ausência de flagelos faz com que estas não sejam reconhecidas pelos receptores tipo toll 5, que exerce um papel chave na iniciação da resposta inflamatória. A salmonela invade então os macrófagos e provavelmente células dendríticas e são transportadas para o baço e fígado, onde a replicação acontece (IQBAL et al., 2005; CHAPPELL et al., 2009). Elas persistem por mais tempo no ceco que em outras regiões do intestino. Esta localização preferencial de salmonela no ceco pode ser o resultado de fatores não específicos ou do hospedeiro. Isto pode incluir a lenta taxa de fluxo do conteúdo através desse órgão, que permitiria a maior multiplicação microbiana e persistência (BARROW et al., 1988). Salmonella enterica sorovar Pullorum causa infecção persistente em aves de postura, em que macrófagos do baço são o principal local de persistência. Ao atingir 17 a maturidade sexual o número de bactérias aumenta e se dissemina para o trato reprodutivo, o que pode levar à transmissão vertical através dos ovos (WIGLEY et al., 2005). Infecção por Escherichia coli em aves (muitas vezes referido como colibacilose) inclui uma variedade de infecções localizada ou sistêmica, em que a E. coli pode estar envolvida como o agente infeccioso primário ou secundário (SAIF et al., 2008). Para muitos pesquisadores aparentemente a infecção no intestino por E. coli não é comum ou não reconhecida, em que as infecções mais notáveis são extra intestinais. No entanto, doença diarreica em que a E. coli aparenta estar envolvida como o agente etiológico primário tem sido relatada (CHRISTENSEN et al., 2006). Pasteurella multocida produtora de toxina é o agente causador da cólera aviária. A avaliação histopatológica do intestino pode revelar apenas marcada congestão das mucosas, no entanto, infiltrados de heterófilos na lâmina própria e bactérias em pequenos vasos sanguíneos das vilosidades às vezes podem ser observados (PORTER-JR, 1998). Mycobacterium avium afeta principalmente o trato digestório, entretanto a doença causa lesões, que podem envolver os pulmões, intestinos, baço, medula óssea e articulações (SANTOS et al., 2008). A doença é rara no setor avícola organizado, devido a práticas agrícolas aperfeiçoadas. As manifestações clínicas em aves incluem depressão, emagrecimento e diarreia, juntamente com atrofia do músculo do peito. Ao contrário de tuberculose em outros animais e no homem, lesões nos pulmões são raras (DHAMA et al., 2011). Dentre os parasitas que afetam o intestino se destacam os protozoários e helmintos, sendo os protozoários do gênero Eimeria os mais importantes para a indústria avícola (SMITH & BEAL, 2008). Causam a coccidiose aviária, sendo a gravidade da doença dependente da espécie do parasita, podendo haver variação de patogenicidade dentro da própria espécie (SANTOS et al., 2008). Os sinais clínicos mais graves são diarreia, diminuição do ganho de peso, pobre conversão alimentar, podendo haver hemorragia intestinal e mortalidade (WILLIAMS, 2005). 18 A doença também está sujeitas a fatores do hospedeiro como linhagem e idade. Podendo causar uma serie de efeitos, que levam a aumento da velocidade de passagem e má absorção como: a destruição de vilosidades, diminuição do pH intestinal, diminuição da viscosidade intestinal e predisposição a infecções secundárias (WILLIAMS, 2005). Histomoniase também conhecida como entero-hepatite, é uma doença parasitária causada pelo protozoário Histomonas meleagridis. A doença se caracteriza por apresentar ulceração na mucosa cecal e necrose hepática, podendo causar letalidade de 100% em perus, entretanto em frangos é geralmente marcado por alta morbidade, mas com subsequente recuperação. A distribuição da doença está relacionada com o nematodo Heterakis gallinarum, que parasita cecos de aves susceptíveis, e possibilita a manutenção do Histomonas meleagredis por longos períodos no solo (MCDOUGALD, 1998; SANTOS et al., 2008). 19 3 CONSIDERAÇÕES FINAIS Existem grandes diferenças do intestino das aves para os mamíferos. Além das diferenças anatômicas pela existência de dois cecos, presença de divertículo de Meckel, tonsilas cecais. Além dessas diferenças anatômicas pode se citar a não existência das células de Paneth e glândulas duodenais, e a migração e proliferação das células tronco, que não é restrita somente a cripta como nos mamíferos, mas ocorre também ao longo do vilo. O sistema imune intestinal é um dos mais complexos, pois necessita reconhecer antígenos ligados a patógenos, no entanto também necessitam tolerar os antígenos providos de nutrientes ou de bactérias comensais. Há diversas vias para a apresentação destes antígenos, como pelas células apresentadoras de antígenos profissionais, pelas células M nas placas de Peyer para células apresentadoras de antígenos profissionais, ou mesmo diretamente pelos enterócitos. Tais rotas também podem ser usadas por microrganismos patogênicos como uma via para infecção sistêmica. A microbiota intestinal desempenha papel fundamental na exclusão competitiva, sendo a quase não existência desta no momento da eclosão, além de um sistema imune não totalmente desenvolvido, fatores de risco e predisposição a doenças nessa idade. Microrganismos patogênicos podem colonizar e causar lesão no intestino, podendo utilizar o intestino como via para outros órgãos, ou fazer ambos. Para alguns sorovares de Salmonella sp., o que provavelmente acontece com diversos outros microrganismos, a colonização do intestino para posterior migração para outros tecidos é um fator limitante para a ocorrência da doença. Para que o animal esteja saudável e para que ocorra a otimização do desempenho da ave, esta não deve possui lesões ou inflamações que comprometam as suas funções. 20 REFERÊNCIAS 1 AMIT-ROMACH, E.; SKLAN, D.; UNI, Z. Microflora Ecology of the Chicken Intestine Using 16S Ribosomal DNA Primers. Poultry Science, Champaign, v.83, n. 7, p. 1093-1098, 2008. 2 AUGHEY, E.;FRYE, F.L. Digestive system. In:_____. Comparative veterinary histology: with clinical correlates. London: Manson Publishing Ltd., 2001. cap. 8, p. 97136. 3 BACHA, W.J.J.; BACHA, L.M. Digestive system.In:_____. Color atlas of veterinary histology. 2.ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2000. cap. 13, p. 119-162. 4 BANDOPADHYAY, A.C.; VEGAD, J.L. Observations on the pathology of experimental avian spirochaetosis. Research in Veterinary science, London, v.35, n. 2, p. 138-144, 1983. 5 BANDOPADHYAY, A.C.; VEGAD, J.L. Observations on the pathology of experimental avian spirochaetosis. Research in Veterinary science, London, v.37, n. 3, p. 381-382, 1984. 6 BARROW P.A.; SIMPSON, J.M.; LOVELL, M.A. Intestinal colonisation in the chicken by food-poisoning salmonella serotypes; microbial characteristics associated with faecal excretion. Avian pathology, Huntingdon, v. 17, n. 3, p. 571-588, 1988. 7 BARROW, P. A.; HUGGINS, M. B.; LOVELL, M. A. Host Specificity of Salmonella Infection in Chickens and Mice Is Expressed In Vivo Primarily at the Level of the Reticuloendothelial System, Infection and Immunity, Washington, v. 62, n. 10, p. 4602-4610, 1994. 8 BEAL, R.K.; POWERS,C.; DAVISON, T.F.; SMITH, A.L. Immunological development of the avian gut in: PERRY,G.C.Avian Gut Function in Health and Disease, Cab International, Wallingford, 2006. v. 28, cap. 6, p. 85-103. 9 BEAL, R.K; WIGLEY, P.; POWERS, C.; HULME, S.D.; BARROW, P.A.; SMITH, A.L. Age at primary infection with Salmonella enterica serovar Typhimurium in the chicken influences persistence of infection and subsequent immunity to re-challenge, Veterinary Immunology and Immunopathology, v. 100, n. 3-4, p. 151-164, 2004. 10 BEFUS, A.D.; JOHNSTON,N.; LESLIE, G.A.;BIENENSTOCK, J. Gut-associated lymphoid tissue in the chicken. I. Morphology, ontogeny and some functional characteristics of Peyer’s patches, Journal of immunology, Baltimore, v.125, n. 6, p. 2626-2632, 1980. 21 11 BROWN, C.; KING, D. J.; SEAL, B. S.Pathogenesis of Newcastle Disease in Chickens Experimentally Infected with Viruses of Different Virulence, Veterinary Pathology, Washington, v. 36, n. 2, p. 125-132, 1999. 12 BUCKLES, E. L.; EATON, K. A.; SWAYNE, D. E. Cases of SpirocheteAssociated Necrotizing Typhlitis in Captive Common Rheas (Rhea americana), Avian Diseases, Kennett Square, v. 41, n. 1, p. 144-148, 1997. 13 BURKHOLDER, K.M.; THOMPSON, K.L.; EINSTEIN, M.E.; APPLEGATE,T.J.; PATTERSON, J.A. Influence of Stressors on Normal Intestinal Microbiota, Intestinal Morphology,and Susceptibility to Salmonella Enteritidis Colonization in Broilers. Poultry Science, Champaign, v.87, n. 9, p. 1734-1741, 2008. 14 CHAPPELL, L.; KAISER, P.; BARROW, P.; B, JONES, M. A.; JOHNSTON, C.; WIGLEY, P.The immunobiology of avian systemic salmonellosis, Veterinary Immunology and Immunopathology, Amsterdam, v. 128, n. 1-3, p. 53-59, 2009. 15 CHRISTENSEN,J.P.; CHADFIELD, M.S.; OLSEN, J.E.; BISGAARD, M. The gastrointestinal tract as a port of entry for bacterial infections in poultryin: PERRY,G.C. Avian Gut Function in Health and Disease, Cab International, Wallingford, 2006. v. 28, cap. 16, p. 244-258. 16 CROOM, W.J.; BRAKE, J.; COLES, B. A.; HAVENSTEIN, G. B.; CHRISTENSEN, V. L.; MCBRIDE, B. W.; PEEBLES, E. D.; TAYLOR, I. L. Is Intestinal Absorption Capacity Rate-Limiting for Performance in Poultry?. The journal of applied poultry research, Savoy, v. 8, n. 2, p. 242-252, 1999. 17 DHAMA, K.; MAHENDRAN, M.;TIWARI, R.; SINGH, S.D.; KUMAR, D.; SINGH, S.; SAWANT, P.M. Tuberculosis in Birds: Insights into the mycobacterium avium infections ( Review ), Veterinary medicine international, v. 2011, p. 1-14, 2011. 18 DIL, N.; QURESHI, M.A. Involvement of lipopolysaccharide related receptors and nuclear factor κB in differential expression of inducible nitric oxide synthase in chicken macrophages from different genetic backgrounds. Veterinary Immunology and Immunopathology, Amsterdam, v. 88, n. 3–4, p. 149-161, 2002. 19 EDELMAN, S.; LESKELA, S.; RON, E.; APAJALAHTI, J.; KORHONEN, T. K. In vitro adhesion of an avian pathogenic Escherichia coli O78 strain to surfaces of the chicken intestinal tract and to ileal mucus. Veterinary Microbiology, Amsterdam, v. 91, n. 1, p. 41-56, 2003. 20 EKINO,S.; SUGINOHARA, K.; URANO,T.; FUJII, H.; MATSUNO, K.; KOTANI,M. The bursa of Fabricius: a trapping site for environmental antigens, Immunology, London, v. 55, n. 3, p. 405–410, 1985. 22 21 EROSCHENKO, V. Atlas of histology: with functional correlations. 11.ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2008. 532 p. 22 FRAPPIER, B.L. Digestive system. In: EURELL, J. A.;FRAPPIER, B.L. Dellman’s Textbook of Veterinary Histology. 6.ed. Hoboken: Wiley-Blackwell, 2007. cap. 10, p. 170-210. 23 GABRIEL, I.; LESSIRE, M.; MALLET, S.; GUILLOT, J.F. Microflora of the digestive tract: critical factors and consequences for poultry. World's Poultry Science Journal, Cambridge, v. 62, n. 3, p. 499-511, 2006. 24 GUY, J. S. Virus Infections of the Gastrointestinal Tract of Poultry, Poultry Science, Champaign, v. 77, n. 1, p. 166–117, 1998. 25 GUY, J.S. Virally induced gastrointestinal diseases of chickens and turkeys in: PERRY,G.C. Avian Gut Function in Health and Disease, Cab International, Wallingford, 2006. v. 28, cap. 15, p. 227-243. 26 ILLANES, J.; FERTILIO, B.; CHAMBLAS, M.; LEYTON, V.; VERDUGO, F. Descripción Histológica de los Diferentes Segmentos del Aparato Digestivo de Avestruz (Struthio camelus var. domesticus). International Journal of Morphology, Temuco, v. 24, n. 2, p. 205-214, 2006. 27 IQBAL, M.; PHILBIN, V. J.; SMITH, A. L. Expression patterns of chicken Toll-like receptor mRNA in tissues, immune cell subsets and cell lines. Veterinary Immunology and Immunopathology, Amsterdam, v. 104, n. 1-2, p. 117-127, 2002. 28 IQBAL, M.; PHILBIN, V.J.; WITHANAGE, G. S. K.; WIGLEY, P.; BEAL, R.K.; GOODCHILD, M. J.; BARROW, P.; MCCONNELL, I.; MASKELL, D. J.; YOUNG, J.; BUMSTEAD, N.; BOYD,Y.; SMITH, A. L.; Identification and Functional Characterization of Chicken Toll-Like Receptor 5 Reveals a Fundamental Role in the Biology of Infection with Salmonella enterica Serovar Typhimurium. Infection and Immunity, Washington, v. 73, n. 4, p. 2344-2350, 2005. 29 JEPSON,M.A.; CLARK,M.A. Studying M cells and their role in infection. Trends in Microbiology, Cambridge,v. 6, n. 9, p. 359-365, 1998. 30 KLAASEN, H. L. B. M; VAN DER HEIJDEN, P. J.; STOK, W.; POELMA, F. G.J.; KOOPMAN J. P.; VAN DEN BRINK, M. E.; BAKKER, M. H.; ELING, W. M. C.; BEYNEN, A. C. Apathogenic, Intestinal, Segmented, Filamentous Bacteria Stimulate the Mucosal Immune System of Mice. Infection and Immunity, Washington, v. 61, n. 1, p. 303-306, 1993. 31 LAN, Y.; VERSTEGEN, M.W.A.; TAMMINGA, S.; WILLIAMS, B.A. The role of the commensal gut microbial community in broiler chickens. World's Poultry Science Journal, Cambridge, v. 61, n. 1, p. 95-104, 2005. 23 32 MAIORKA, A. 2004.Impacto da saúde intestinal na produtividade avícola. Anais do V Simpósio Brasil Sul de Avicultura. Chapecó, Santa Catarina, Brasil, 26–41. 33 MARSHMAN, E.; BOOTH, C.; POTTEN, C.S. The intestinal epithelial stem cell. Bioessays, Cambridge, v. 24, n. 1, p. 91–98, 2002. 34 MCDOUGALD, L.R. Intestinal Protozoa Important to Poultry. Poultry Science, Champaign, v. 77, n. 8, p. 1156-1158, 1998. 35 MOORE, M.A.S.; OWEN, J.J.T. Experimental studies on the development of the bursa of Fabricius. Developmental Biology, San Diego, v. 14, n. 1, p. 40-51, 1966. 36 MOWAT, A. M. Anatomical basis of tolerance and immunity to intestinal antigens. Nature Reviews Immunology, London, v. 3, n. 4. p. 331-341, 2003. 37 NILE, C.J.; TOWNES, C.L.; MICHAILIDIS, G.; HIRST, B.H.; HALL, J. Identification of chicken lysozyme g2 and its expression in the intestine. Cellular and molecular life sciences, Basel, v. 61, n. 21, p. 2760–2766, 2004. 38 OWEN, R. L.; COWEN, B. S.; HATTEL, A. L.; NAQI, S. A.; WILSON, R. A. Detection of viral antigen following exposure of one‐day‐old chickens to the Holland 52 strain of infectious bronchitis virus, Avian Pathology, Huntingdon, v. 20, n. 4, p. 663673, 1991. 39 PERKINS, L. E. L.; SWAYNE, D. E. Pathobiology of A/Chicken/Hong Kong/220/97 (H5N1) Avian Influenza Virus in Seven Gallinaceous Species, Veterinary Pathology, Washington, v. 38, n. 2, p. 149-164, 2001. 40 PORTER-JR, R. E. Bacterial Enteritides of Poultry. Poultry Science, Champaign , v.77, n. 8, p. 1159–1165, 1998. 41 RATCLIFFE, M.J.H. Antibodies, immunoglobulin genes and the bursa of Fabricius in chicken B cell development. Developmental and Comparative Immunology, New York, v. 30, n. 1-2, p. 101-118, 2006. 42 SAIF, Y. M.; FADLY, A. M.; GLISSON, J. R.; MCDOUGALD, L. R.; NOLAN, L. K.; SWAYNE, D. E. Diseases of Poultry, 12. Ed. 2008, Wiley-Blackwell, 1352 p. 43 SANTOS, B.M.; MOREIRA, M.A.S.; DIAS, C.C.A. Manual de doenças avícolas, ed. UFV, viçosa, 2009, 223p. 44 SCHAFFNER, T.; MUELLER, J.; HESS, M.W.; COTTIER, H.; SORDAT, B.; ROPKE, C. The bursa of fabricius: Acentralorganproviding for contact between the lymphoidsystem and intestinalcontent. Cellular Immunology, New York, v. 13, n. 2, p. 304-312, 1974. 24 45 SCHMIDT,C. J.; PERSIA, M. E.; FEIERSTEIN, E.; KINGHAM, B.; SAYLOR, W. W.; Comparison of a modern broiler line and a heritage line unselected since the 1950s. Poultry science, Champaign, v. 88, n. 12, p. 2610-2619, 2009. 46 SMIRNOV, A.; PEREZ, R.; AMIT-ROMACH, E.; SKLAN, D.; UNI, Z.Mucin dynamics and microbial populations in chicken small intestine are changed by dietary probiotic and antibiotic growth promoter supplementation. Journal of nutrition, Rockville Pike, v. 135, n. 2, p. 187-192, 2005. 47 SMITH, A.L.; BEAL, R.The avian enteric immune system in health and disease. In: DAVISON, F.; KASPERS, B.; SCHAT, K.A. Avian Immunology.Academic Press, London, 2008, cap. 13, p. 243–271. 48 SMITH, C. K.; ABUOUN, M.; CAWTHRAW, S. A.; HUMPHREY, T. J.; ROTHWELL, L.; KAISER, P.; BARROW, P.A.; JONES, M. A. Campylobacter colonization of the chicken induces a proinflammatory response in mucosal tissues. FEMS Immunology and Medical Microbiology, Amsterdam, v. 54, n. 1, p. 114-121, 2008. 49 STEPHENS, C. P.; HAMPSON, D. J. Experimental infection of broiler breeder hens with the intestinal spirochaete Brachyspira (Serpulina) pilosicoli causes reduced egg production, Avian Pathology, Huntingdon, v. 31, n. 2, p. 169-175, 2002. 50 STEPHENS, C.P.; HAMPSON, D.J. Intestinal spirochete infections of chickens: a review of disease associations, epidemiology and control, Animal Health Research Reviews, Wallingford, v. 2, n. 1, p. 83-91, 2001. 51 SWAYNE, D. E.; EATON, K.A.; STOUTENBURG, J.; TROTT, D. J.; HAMPSON,D. J.; JENSEN, N. S. Identification of a New Intestinal Spirochete with Pathogenicity for Chickens. Infection and Immunity, Washington, v. 63, n. 2, p. 430436, 1995. 52 TRAMPEL,D.W.; JENSEN, N.S.; HOFFMAN, L.J. Cecal Spirochetosis in Commercial Laying Hens. Avian Diseases, Kennett Square, v. 38, n. 4, p. 895-898, 1994. 53 UBABEF, União Brasileira de Avicultura. Relatório anual. São Paulo, 2010/2011.: <www.abef.com.br> Acesso em: 5 setembro. 2012 54 UNI, Z. Early development of small intestinal function, in: PERRY,G.C.Avian Gut Function in Health and Disease, Cab International, Wallingford, 2006. v. 28, cap. 3, p. 29-42. 25 55 UNI, Z.; GAL-GARBER, O.; GEYRA, A.; SKLAN, D.; YAHAV, S. Changes in growth andfunction of chick small intestine epithelium due to early thermal conditioning. Poultry Science, Champaign, v. 80, n. 4, p. 438-445, 2001. 56 UNI, Z.; NOY, Y.; SKLAN, D.Posthatch developmentof muscosal function in the broiler small intestine. Poultry Science, Champaign, v.77, n. 1, p. 75-82, 1998. 57 WIELEN, P.W.J.J.; KEUZENKAMP,D.A.; LIPMAN, L.J.A.; KNAPEN, F.; BIESTERVELD, S. Spatial and Temporal Variation of the Intestinal Bacterial Community in Commercially Raised Broiler Chickens During Growth. Microbial Ecology, New York, v. 44, n. 3, p. 286-293, 2002. 58 WIGLEY, P.; HULME, S.D.; POWERS, C.; BEAL, R.K.; BERCHIERI,-JR, A.; SMITH, A.; BARROW, P. Infection of the Reproductive Tract and Eggs with Salmonella enterica Serovar Pullorum in the Chicken Is Associated with Suppression of Cellular Immunity at Sexual Maturity. Infection and Immunity, Washington, v. 73, n. 5, p. 29862990, 2005. 59 WILLIAMS, R.B. Intercurrent coccidiosis and necrotic enteritis of chickens: rational, integrated disease management by maintenance of gut integrity. Avian pathology, Huntingdon, v. 34, n, 3, p. 159-180, 2005. 60 YUN, C.H.; LILLEHOJ, H.S.; LILLEHOJ, E.P. Intestinal immune responses to coccidiosis. Developmental and Comparative Immunology, New York, v. 24, n. 2-3, p. 303-324, 2000.