Produção de Controles Positivos para o Diagnóstico Molecular do Vírus da Síndrome da Mancha Branca (WSSV) e Vírus da Infecção Hipodermal e Necrose Hematopoiética (IHHNV) em Camarões Cultivados *RAMOS, Juliana da C., SILVA, Ana C G1., FEIJÓ, Rubens G1., ABREU, Paulo C.1, MARINS, Luis F.1 ¹ Universidade Federal do Rio Grande (FURG), Av. Itália, km 8 /Rio Grande- RS, Contato: [email protected] Palavras chaves: PCR, enfermidades, WSSV, IHHNV. Introdução Ao longo da última década, têm sido registrados problemas consideráveis com enfermidades na carcinicultura, principalmente devido a doenças virais (FAO, 2003). Dentre as principais doenças virais que acometem crustáceos, o vírus da Infecção Hipodermal e Necrose Hematopoiética (IHHNV) é o mais comumente encontrado nos cultivos brasileiros. Já o vírus da Síndrome da Mancha Branca (WSSV) é o que provoca os maiores índices de mortalidade em crustáceos (LIGHTNER, 2005). Para o diagnóstico dos vírus WSS e IHHN em crustáceos podem ser utilizadas técnicas histopatológicas e/ou ferramentas moleculares, a exemplo da reação em cadeia da polimerase (PCR), considerada de caráter confirmatório pela sensibilidade e especificidade gerada no diagnóstico de enfermidades de organismos aquáticos (OIE, 2003). Diante do exposto acima, o objetivo deste trabalho é a clonagem e produção de controles positivos para o diagnóstico molecular do WSSV e do IHHNV em camarões cultivados. Metodologia Para a obtenção de fragmentos de DNA do WSSV e IHHNV foram utilizados amostras de camarões contaminados adquiridos do Centro de Estudos de Enfermidades de Organismos Aquáticos (CEDECAM) da Universidade Federal do Ceará. Os controles positivos para a detecção dos vírus foram obtidos a partir do isolamento de 1447 pb do WSSV e 389 pb do IHHNV amplificados por PCR em amostras WSSV+ e IHHNV+ de camarões. Os fragmentos foram ligados em vetor de clonagem e utilizados para transformar cepas de E. coli. O DNA plasmidial foi extraído pelo método de miniprep e os controles positivos foram confirmados por PCR utilizando-se primers específicos para a detecção os vírus WSS e IHHN (Duran & Lightner, 2002; Tang & Lightner, 2001). Resultados e Discussão A análise de PCR dos controles positivos construídos confirmou a presença de 1447 pb para o WSSV e 389 pb para o IHHNV usando como amostras as diluições seriais (100 a 10-9) do DNA plasmidial (Figuras 1 e 2). Fig. 1 - Validação por PCR do controle positivo produzido para a detecção do WSSV. 100 a 10-9 diluições seriadas; M: marcador molecular (1 Kb DNA ladder plus); B: controle negativo. Fig. 2 - Validação por PCR do controle positivo produzido para a detecção do IHHNV. 100 a 10-9 diluições seriadas; M: marcador molecular (1 Kb DNA ladder plus); B: controle negativo. A técnica de clonagem gênica permite a produção in vitro de controles positivos a partir de clones transformados com fragmentos de DNA de patógenos específicos, evitando o emprego direto de amostras de animais contaminados. Conclusão Os controles positivos para os vírus WSS e IHHN aqui produzidos serão fundamentais para garantir uma maior confiabilidade na execução de diagnósticos moleculares realizados pelo Laboratório de Biologia Molecular (FURG), envolvendo desde a detecção molecular do patógeno por PCR convencional até a quantificação de sua carga viral por PCR em Tempo Real (qPCR). Referências Bibliográficas FAO - Global Aquaculture Production. Diponível em: http://www.fao.org. LIGHTNER, V. D. Biosecurity in Shrimp Farming: Pathogen Exclusion through use of SPF Stock and Routine Surveillance. 2005 OIE - OFFICE INTERNATIONAL DES EPIZOOTIES. OIE Listed diseases. Disponível em: http://www.oie.int/fr/normes/fmanual/A_00048.htm DURAND, S. V & LIGHTNER, D. V. Quantitative real time PCR for the measurement of white spot syndrome virus in shrimp. 2002. TANG, K. F. J. & LIGHTNER, D. V. Detection and quantification of infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus in penaeid shrimp by real-time PCR. 2001.