Laboratório de Citogenética e Diversidade Vegetal Departamento de Biologia Geral, CCB, Universidade Estadual de Londrina Tel: 43 3371 4509 – Fax: 43 3371-4417 - Campus Universitário Caixa Postal 6001, CEP: 86.051-990 – Londrina – Paraná - Brasil Obtenção de fases da Meiose em plantas Antes de preparar as lâminas, é importante entender como as flores e inflorescências estão organizadas. Quando há muito tecido cobrindo as anteras, maior será a dificuldade de uma boa fixação das células alvo (meiócitos) no saco polínico, já que o fixador terá que atravessar muitas barreiras até alcançar os meiócitos. Assim, é fundamental dissecar as flores. O melhor é fixar somente as anteras, mas para muitas espécies isso é difícil por conta da textura das flores e do tamanho das anteras. Normalmente, botões florais coletados e fixados sem uma dissecção prévia não rendem preparações perfeitas. Sempre haverá citoplasma corado mais densamente e cromossomos meióticos amontoados. A renovação do fixador uma hora após a primeira fixação, a constante agitação da solução e um volume de fixador 10 vezes maior que o de tecido, poderá ajudar bastante a melhorar a qualidade das amostras. A solução de etanol: ácido acético (3:1, v:v) funciona muito bem, desde que seja preparado momentos antes do uso. A vantagem desta fixação é que as amostras poderão ser usadas para preparações convencionais (qualquer uma), bandeamento cromossômico, hibridização in situ e imunolocalização com anti-5-metilcitosina. Para acertar o tamanho das anteras, você pode dissecar 10 botões florais de tamanhos diferentes, colocá-los em uma lâmina com uma gota de ácido acético de 45 a 60%, organizados do menor para o maior. Faça um corte nas anteras, uma de cada vez, e cheque a fase da meiose de cada uma das anteras, usando um microscópio convencional com o condensador abaixado. Estabeleça uma relação tamanho-fase e passe a fixar somente as anteras naquele trecho de tamanho préselecionado. Se as anteras forem fixadas diretamente, uma hora de fixação é o suficiente para a obtenção de boas células. Caso contrário, as anteras podem permanecer até 24 horas à temperatura ambiente e depois estocadas em freezer por tempo indeterminado. Preparo das lâminas 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. lave as anteras em água destilada. Pelo menos três lavagens de cinco minutos cada; hidrolise em HCl 1M a 60 graus por 5 a 8 minutos; transfira as anteras para água destilada; deixe as anteras em ácido acético 45 a 60% por 10 minutos; disseque as anteras em uma gota de ácido acético 45 a 60%; cuide para a expulsar os meiócitos em uma gota pequena, para não perder células quando cobrir com lamínula; cubra com lamínula e faça uma leve pressão usando um papel de filtro; remova a lamínula usando após congelamento em nitrogênio líquido; deixe a lâmina secar e core com Giemsa 2%; monitore a coloração observado-a em microscópio após o primeiro minuto; lave a lâmina com um jato leve de água, seque e monte-a permanente.