Qualidade microbiológica e bactérias acidúricas em bebidas não alcoólicas Maristela S. Nascimento Conteúdo programático Microrganismos indicadores Salmonella Bactérias deteriorantes Báctérias lácticas Bactérias acéticas Grupo Bacillus Alicyclobacillus Clostrídios butíricos Legislação Ministério da Agricultura (Inst. Norm. n.1, 07/01/00) Produto Determinação Polpa de fruta “in natura” Bolores e leveduras Polpa de fruta conservada quim. ou tratada term. Limite (UFC ou NMP/g) 5,0x103 Coliformes fecais 1,0 Salmonella (25g) Ausente Bolores e leveduras 2,0x103 Coliformes fecais 1,0 Salmonella (25g) Ausente Legislação ANVISA (RDC n.12, 02/01/01) – Grupo 17 Produto Determinação Limite Sucos, refrescos, néctar prontos para consumo Coliformes 35ºC (em 50ml) Sucos concentrados* Coliformes 35ºC (em 50ml) Ausente Salmonella (25ml) Ausente Suco desidratado Ausente Coliformes 35ºC 10/g Salmonella (25g) Ausente Xarope Coliformes 35ºC 10/g Pó para refresco Coliformes 35ºC 1/g Suco “in natura” Coliformes 45ºC 100/ml Salmonella (25ml) Suco pasteurizado e refrigerado Coliformes 45ºC Salmonella (25ml) Ausente 10/ml Ausente Microrganismos Indicadores Grupos ou espécies de microrganismos que, quando presentes em um alimento, podem fornecer informações sobre deterioração, contaminação de origem fecal e provável presença de patógenos, podendo indicar condições sanitárias inadequadas durante o processamento, armazenamento e distribuição do alimento. (Franco & Landgraf, 2003) COLIFORMES TOTAIS Família Enterobacteriaceae: Escherichia, Citrobacter, Enterobacter, Klebsiella Bacilos gram-negativos, não esporulados Fermentam lactose com produção de gás a 35-37ºC/24-48h Não indicam necessariamente contaminação fecal ou presença de enteropatógenos Coliformes Termotolerantes e Escherichia coli Hábitat primário: trato intestinal Fermentam lactose com produção de gás a 44,5 - 45,5ºC / 24h 90% de E. coli e algumas cepas de Enterobacter e Klebsiella Processamento, armazenamento, higienização ou manipulação inadequados Recontaminação pós-processamento pH 4 a 9 Tº 7 a 46ºC Escherichia coli EPEC – enteropatogênica clássica, gastroenterite em recém nascidos e lactentes EIEC – enteroinvasora, semelhante a shigelose ETEC – enterotoxigênica, diarréia dos viajantes EHEC – entero-hemorrágica, colite hemorrágica evoluindo para síndrome urêmica hemolítica (HUS), sorotipo O157:H7 Metodologia Método de Número Mais Provável (NMP) Série de 3 tubos Presença/Ausência em 50ml Lauril Sulfato Triptose (LST) 5 tubos de 10ml Simples ou duplo 35ºC/24-48h Verde Brilhante Bile (VB): 35ºC/24-48h EC: 45,5ºC/24h Tabela com inoculação de 0,1 - 0,01 e 0,001g ou ml de amostra Confirmação E. coli Caldos com fator de fluorescência Ágar Levine Eosina Azul de Metileno (L-EMB) 35ºC/24h Confirmação E. coli Bioquímica (IMVIC) Indol : + ou VM: + VP: - Citrato: - INDICADORES GERAIS Aeróbios mesófilos e psicrotróficos. Quando presentes em número elevado nos alimentos podem causar deterioração e/ou redução da vida-deprateleira Fornecem informações gerais sobre as condições durante o processamento e armazenamento do alimento AERÓBIOS MESÓFILOS FAO/OMS: 104 - 105 (máx permitido) A maioria das bactérias patogênicas são mesófilas: alta contagem indica que houve condições para multiplicação de patógenos Metodologia plaqueamento em profundidade ou superfície técnica de filtração por membrana OSA: 30ºC/48h AERÓBIOS PSICROTRÓFICOS Não há padrão estabelecido Inclui alguns patógenos (Listeria, Yersinia) e deteriorantes (Hafnia) Metodologia plaqueamento em superfície PCA: 7ºC/10dias Salmonella Família Enterobacteriaceae Bastonete Gram-negativo Não esporulado Anaeróbio facultativo Sensibilidade microbiana Temperatura: 5º a 47ºC pH: 3,8 a 9,5 Aw: 0,94 Concentração de NaCl: 8% Classificação Duas espécies S. enterica com 6 subespécies S. bongori 2501 sorotipos Antígenos somáticos Antígenos flagelares Características da Doença S. Typhi: Febre tifóide S. Paratyphi A, B e C: Febre entérica Febre alta, diarréia, vômito, septicemia, sangramentos Mortalidade: 10% Reservatório: homem Dose infectante: 103 Mesma sintomatologia, mais branda Salmonelose (S. enterica enterica) Diarréia, febre, dores abdominais e vômito Mortalidade: 1 a 15% Dose infectante: >106 Epidemiologia Flórida (2001): Salmonella Anatum, suco não pasteurizado EUA (1999) – 15 estados, 207 casos, Salmonella Muenchen, suco não pasteurizado Rio de Janeiro (2006): suco in natura 74% coliformes 35ºC 57% coliformes 45ºC Porto Alegre (2005): suco in natura 3 amostras coliformes 45ºC 1 amostra Salmonella Isolamento e identificação Método tradicional ISO6579, FDA, FSIS Pré-enriquecimento BPW, Caldo lactosado, TSB: 35-37ºC/18-24h Enriquecimento Caldo tetrationato: 35-37ºC/24h Caldo Rappaport-Vassiliadis: 41-42ºC/24h Plaqueamento: 35-37ºC/24h Ágar Xilose Lisina Desoxicolato (XLD) Ágar Hectoen (HE) Ágar Bismuto sulfito (BS) Ágar Verde brilhante (BG) Confirmação bioquímica Ágar tríplice açúcar ferro (TSI) 35-37ºC/24h Ágar Lisina ferro (LIA) Caldo descarboxilase lisina 35-37ºC/24h Confirmação bioquímica Ágar Uréia de Christenson Teste Indol Voges-Proskauer Teste b-galactosidase Confirmação sorológica Poli O: soroaglutinação Poli H: soroaglutinação Testes bioquímicos Típicos Testes sorológicos Resultado Positivos Confirmado Típicos Negativos Pode ser Atípicos Positivos Pode ser Atípicos Negativos Não confirmado Bactérias lácticas Lactobacillus Leuconostoc Oenococcus Gram-positivos Cocos, cocobacilos ou bastonetes Mesófilos D65ºC = 0,5 a 1min Catalase negativa Acidúricos (pH 3 a 7) Não esporogênicos Bactérias lácticas Homo ou heterofermentativos Redução do pH Alteração de sabor e aroma Acetoína e diacetil Produção de gás Contagem em placa OSA (ágar soro de laranja), MRS 30-35ºC/48-72h Microaerofilia ou sobrecamada Presença/Ausência TAB (caldo Thermoacidurans) ou CA (caldo ácido) 30-35ºC Caldo APT ou MRS Bactérias acéticas Acetobacter Gluconobacter Gram negativas Bastonetes ou cocbacilos Aeróbias Mesófilas Catalase positiva Oxidase negativa Bactérias acéticas Produção de ácido acético Alteração de sabor e aroma PDA acidificado 30ºC/5dias Confirmação Ágar etanol Ágar GYC Coloração de Gram Bactérias acéticas Principais características Acetobacter Aceto. aceti Acidomonas Frateuria Gluconobacter Gram -/v -/v -/v -/v -/v Bastonetes ou cocobacilos + + + + + Oxidação de etanol a ácido acético + + + + + Oxidase - - + - - Catalase + + Pigmento marron nas colônias em Ágar GYC - - Colônias de cor amarela - - Fermentação de d-arabinose - - Filamentos +/- - +/- Cadeias +/- - +/- + +/- +/- - + - +/- + Grupo Bacillus (Flat Sour) Bacillus coagulans Gram-positivos Termófilo facultativo 30 a 61ºC Catalase positiva Acidúricos (pH 3,8) Esporogênicos Anaeróbio facultativo Redução do pH (ac láctico) sem produção de gás TAB (CA) 30-35ºC e 55ºC DTA (agar Dextrose Triptona) ou TAA (agar Thermoacidurans) 35ºC e 55ºC Alicyclobacillus Wisotzkey (1992) Bacilos termófilos acidófilos – “flat sour” Ácidos graxos alicíclicos na membrana celular Karavaiko (2005): nova classificação Gram-positivos Aeróbios ou anaeróbios facultativos Acidófilos estritos (pH 0,5 a 6,0) Termófilos estritos ou facultativos (mesófilos????) Catalase positiva ou negativa Alicyclobacillus A. acidoterrestris 20ºC a 62ºC D95ºC = 2,5 a 8,7min Solo, suco de frutas, concentrados Esporos viáveis: Brix 30º Produtor de guaiacol (104 UFC/g) Sabor estranho, odor fenólico, medicinal A. acidocaldarius (termófilo estrito) - suco concentrado UHT A. acidiphilus – refrescos ácidos A. pomorum – suco misto Alicyclobacillus Metodologia APHA ou IFU (International Federation of Juice Producers) ALI x YSG (agar extrato de levedura amido glicose) ou BAT (agar Bacillus acidoterrestris) Teste de contagem em placa + P/A Células vegetativas : sem choque térmico Esporos: choque de 80ºC/10min Preparo da amostra Suco pronto para consumo: incubação direta 45ºC/7dias Amostras solidas e concentradas: 10g : 90ml YSG caldo Sucos concentrados: 10g : 90ml água Contagem em placa Agar K e Agar BAT ou YSG 45ºC/5dias Alicyclobacillus Presença/Ausência Confirmação Incubação do restante da amostra a 45ºC/5dias Coloração de Gram Crescimento em PCA, TSA ou BHI Crescimento a 30ºC e 65ºC em YSG Teste de produção de guaiacol Princípio do teste de guaiacol peroxidase H2O2 + guaiacol O2 + H2O +composto oxidado (vermelho tijolo/castanho) Alicyclobacillus Tabela. Interpretação de resultados Perfil 1 Alicyclobacillus spp não deteriorantes Perfil 2 Alicyclobacillus spp deteriorantes potenciais (principalmente A. acidoterrestris) Crescimento em Ágar YSG ou BAT a 45ºC + + Crescimento em pH neutro (PCA/TSA/BHI) a 45ºC - - Formação de esporos + + Crescimento em YSG ou BAT a 65ºC + - Crescimento em YSG ou BAT a 30ºC - + Crescimento em Ágar K - + Característica Clostrídios Cl. pasteurianum Cl. butiricum Anaeróbios estritos Esporogênicos Calatase negativa Gram positivos Mesófilos pH 4,2-4,4 Emb. estufada (CO2 + H2), odor butírico TAB (CA) com ágar selo 30-35ºC TAA 35ºC anaerobiose OBRIGADA! [email protected]