Vacinas de nova geração para Rotavirus Paula Alves Laboratório de Tecnologia de Células Animais Ciência em Portugal – Ciência 2007 A5 – Biologia, Biotecnologia, Bioquímica Lisboa, 13/Abril/2007 Rotavirus ¾ Causa de ~ 40% das hospitalizações devidas a Gastroenterites agudas ¾ Aprox. 600.000 mortes/ano em 111 millhões de episódios de diarreia aguda em crianças com idades inferiores a 5 anos) Vacinas para ROTAVIRUS (no mercado desde 2006) Reoviridae Family VP1 VP2 VP4 RotaTeqTM (aprovada pela FDA) RotarixTM VP6 (aprovada pela EMEA) VP7 VP3 Virus atenuados em cultura 98 nm VACINAS DE NOVA GERAÇÃO VLP (Virus Like Particles) – Partículas Semelhantes a Vírus VLP’s (Virus Like Particles) – Partículas Semelhantes a Vírus i. Eficazes - mimetizam particulas virais nativas (conformação e apresentação dos antigénios ao sistema imunitário) ii. Seguras (não contêm material genético – ADN e ARN) iii. Custos reduzidos (após optimização dos processos de produção) VLP’s já no mercado: ¾ Hepatite B (desde 1986) ¾ 2006 - Virus do Papiloma Humano (HPV) : Gardasil® e Cervarix® Primeira vacina no mercado contra o cancro cervical VLP’s com UMA única proteína viral @ Lab TCA ¾ VLP para PPV (irá ser comercializada pela Ingenasa (Espanha) ¾ VLP candidata para HIV (utilizada em testes de diagnostico pela Innogenetics (Bélgica) Rotavirus-Like Particles ~ 75 nm ~ 64 nm VLP para ROTAVÍRUS OBJECTIVO “Re-desenhar” o genoma do Baculovirus (a nível dos promotores dos genes das proteinas recombinantes) Monomeros das proteínas virais nas proporções e nos tempos ideais (Estequiometria e termodinâmica) Desenvolvimento de Bioprocessos para produção de Rota VLPs Expressão das proteínas “Re-desenhar” estratégias de infecção (MOI and TOI) Particulas duplas 2/6 VLP Monomeros de VP7 Infecção com 3 Baculovirus Recombinantes (transportam genes que codificam as proteínas vp2, vp6 e vp7) vp2 gene vp6 gene Trimeros de VP6 Monomers of VP7 1 Partículas 2/6/7 VLP (triplas) 7 vp7 gene 2 6 VP6 H+ H+ H+ H+ VP7 H+ H+ H+ H+ H+ H+ H+ VP2 4 H+ 5 vDNA 3 Membrana Celular Membrana Nuclear mRNA Infecção Expressão dos genes Montagem VLPs Purificação Caracterização das cinéticas de infecção dos baculovirus Tráfego viral na célula hospedeira Replicação do transADN (vp2, vp6 and vp7) Transcrição - mARN (vp2, vp6 and vp7) Produção das proteínas recombinantes (VP2, VP6 and VP7) Montagem em partículas formadas correctamente (três camadas) Estratégias de assembly/disasembl y/reasembly VLPs Purificação Técnicas analíticas Q-PCR RT-Q-PCR Western blot, HPLC, Proteína total Western blot, HPLC, Proteína total ELISA Espect. de massa Microscopia Gradientes de CsCl (ultracentrif.) Filtração Gel Chromatografia Ultrafiltração 1,6 6,0 1,0 0,8 4,5 0,6 3,0 j 7,5 1,2 V (Virus.ml -1)×106 Ni (Cell.ml-1)×106 Cinéticas de Infecção do Baculovirus e tráfego viral MODELAÇÃO DA PRODUÇÃO DE VLP’s PARA ROTAVIRUS 9,0 1,4 0,4 1,5 0,2 0 24 48 72 96 120 DNA6T (CopiesDNA.cell-1)× 104 0 0 144 Time (hpi) Replicação ADN 4,0 3,5 3,0 2,5 2,0 1,5 1,0 0,5 0 0 24 48 72 96 120 144 96 120 144 96 120 144 Time (hpi) Expressão dos genes RNA7 (CopiesDNA.cell-1)×103 12 Sintese do mARN 10 8 6 4 2 0 0 24 48 72 Time (hpi) 1,6 Produção Protein de Production Proteinas VP7 (AU.ml -1)×103 1,4 1,2 1,0 0,8 0,6 0,4 0,2 700 0 Montagem dasVLPs VLP (μg.ml -1) 600 0 500 24 48 72 Time (hpi) 400 300 200 100 0 bVP2+bVP6+bVP7 bVP2/6/7 Colaboração com grupo Rui Oliveira Monomeros das proteínas virais nas proporções e nos tempos ideais (Estequiometria e termodinâmica) Redesenhar o genoma do Baculovirus Desenvolvimento de Bioprocessos para produção de Rota VLPs Expressão das proteínas “Redesenhar” estratégias de infecção 1. Antonis AF, Bruschke CJ, Rueda P, Maranga L, Casal JI, Vela C, Hilgers LA, Belt PB, Weerdmeester K, Carrondo MJ, Langeveld JP., 2006. A novel recombinant virus-like particle vaccine for prevention of porcine parvovirus-induced reproductive failure. Vaccine, 24(26): 5481-90 2. Vieira, HLA, Estevão, C, Roldão, A, Peixoto, C, Sousa, M, Cruz, PE, Carrondo MJT, Alves, PM (2005) “Triple layered rotavirus VLP assembly: kinetics of vector replication, mRNA stability and recombinant protein production”, Journal of Biotechnology, 120: 72-82 3. Vieira, HLA, Pereira, ACP, Carrondo, MJT, Alves, PM (2006) “Catalase effect on apoptosis for the improvement of recombinant protein production in baculovirus-insect cell system”, Bioprocess Biosystems Engineering., 29, 409-414. 4. Peixoto, C, Sousa, MFQ, Silva, AC, Carrondo, MJT, Alves, PM (2007) “Downstream Processing of Triple-layered Rotavirus Like Particles”, Journal of Biotechnology, 127, 452-461 5. Roldão, A, Vieira HLA, Alves, PM, Oliveira, R, Carrondo, MJT (2007) Intracellular dynamics in Rotavirus-like particles production: Evaluation of multigene and monocistronic infection strategies. Process Biochemistry, 41, 2188-2199. 6. Roldão, A, Vieira, HLA, Charpilienne, A, Poncet, D, Roy, P, Carrondo, MJT, Alves, PM, Oliveira, R (2007) Modeling Rotavirus-Like Particles production: infection kinetics, baculovirus DNA replication, mRNA synthesis and protein production” J Biotechnology, 128(4): 875-894. FCT-UNL (Portugal) Rui Oliveira LSHTM (UK) Polly Roy CNRS (France) Jean Cohen Didier Poncet Annie Charpilienne Karolinska (Sweden) Lennart Svensson Hopitaux de Paris (France) Nathalie Parez RVC (UK) Janice Bridger CIC Vaccinologie C Pasteur (France) Odile Launay Financiamento European Commission (QLRT-2001-01249) FCT (FCT/POCTI/BIO/55975/2004) SFRH/BPD/14575/2003 SFRH/BD/21910/2005 Lab TCA (ITQB/IBET) Equipa Rotavirus Paula Alves Helena Vieira Cristina C. Peixoto Marcos F.Q. Sousa Rosário Clemente Manuel J. T. Carrondo António Roldão Claudia Istrate Catarina Estêvão Candida Mellado