1 Avaliação do impacto de polimorfismos de nucleotídeo único na regulação por microRNAs em genes envolvidos no carcinoma colorretal Palermo J.M, Verbisck N.V. CCNH, Universidade Federal do ABC Av. dos Estados, 5001, Santo André, SP Os microRNAs são uma classe de pequenos RNAs não codificadores de proteínas que se ligam a RNAs mensageiros e interferem em sua tradução. Os miRNAs encontram-se com expressão alterada em diferentes tipos de câncer, existindo uma forte relação entre os miRNAs, seus genes-alvo e o desenvolvimento de câncer. Os polimorfismos genéticos de nucleotídeo único (SNPs) podem residir em locais de ligação de miRNAs ao mRNA, ou então na unidade transcricional do miRNA, sendo responsável pela sua alteração de expressão. Neste trabalho buscaram-se na literatura relatos sobre microRNAs com expressão alterada em câncer colorretal. Em seguida, cada artigo foi analisado de modo a listar os miRNAs alterados nesse tipo de câncer. A partir dessa análise, foram identificados 34 miRNAs com expressão aumentada e 34 miRNAs com expressão reduzida. Utilizando-se diferentes critérios, foram selecionados alguns miRNAs para estudo mais detalhado, como mir-21, mir-31, mir-200c, mir-191, mir-200a e mir-200b, super expressos em câncer colorretal, além do mir-145, mir-143, mir-342 e let-7b, pouco expressos. Na etapa seguinte, cada miRNA foi analisado de modo a identificar os SNPs presentes nos diferentes miRNAs maduros, e em elementos regulatórios de expressão gênica presentes nas unidades transcricionais desses miRNAs, tais como ilhas de CpG, regiões promotoras e sítios para ligação de fatores de transcrição (TFBS), já que alterações nessas estruturas podem desencadear alterações na expressão dos miRNAs. Foram encontrados diversos SNPs em cada elemento citado, sendo que 43 SNPs foram observados em 13 ilhas de CpG analisadas, e 83 SNPs em 42 elementos de regulação da expressão gênica analisados. Ainda foi identificado um único SNP em um TFBS, considerando todos os miRNAs analisados. A nossa análise dos SNPs nos microRNAs e em suas unidades transcricionais possibilitou identificar possíveis marcadores para diagnóstico (SNPs) e candidatos a tratamento (miRNAs) do carcinoma colorretal. Palavras chave: miRNA, câncer colorretal, SNP I. INTRODUÇÃO O câncer de cólon e reto ou colorretal é um dos tumores malignos mais comuns nos países ocidentais, sendo o 2º em países industrializados. A relativa facilidade com que os vários estágios do desenvolvimento do tumor podem ser observados faz com que o câncer colorretal seja um bom modelo de estudo para outros tipos de câncer. Muitos estudos demonstraram que a desregulação de genes é um mecanismo chave para o desenvolvimento de câncer. Recentemente têm sido descobertos novos mecanismos relacionados com o desenvolvimento do câncer, sendo que um importante mecanismo é a regulação pós-transcricional através de microRNAs (miRNAs). MicroRNAs representam umas classe de pequenos RNAs não codificadores de proteínas que regulam a expressão pós-transcricional de genes-alvo em função de suas sequências de nucleotídeos. Eles se ligam a RNAs mensageiros e interferem em sua tradução, regulando assim o crescimento, diferenciação celular e desenvolvimento das células. Assim, mesmo uma pequena mudança na expressão de um miRNA pode causar um grande efeito na expressão de centenas de mRNAs nos níveis pós-transcricionais e traducionais, havendo de fato uma estreita relação entre os miRNAs, seus genes alvos e o desenvolvimento do câncer, o que torna os microRNAs alvos de muitas pesquisas e estudos. Durante o projeto genoma humano de seqüenciamento de todo o DNA e sua informação, tornou-se claro que a extensão da variação genética é muito maior do que se estimava. A variação de seqüência mais comum no genoma humano é a substituição estável de uma única base, o polimorfismo de nucleotídeo único – SNP (da sigla do inglês Single Nucleotide Polymorphism). Os polimorfismos genéticos podem residir em locais de ligação de miRNAs ao mRNA. Assim, é concebível que a regulação do mRNA por miRNAs possa ser afetada por polimorfismos nas UTRs (sigla do inglês UnTranslated Region). Como a desregulação gênica é um dos mecanismos chave através do qual as células podem progredir para o câncer, polimorfismos em sítios de ligação para miRNAs de genes-alvo podem ter uma importante influência no risco individual de câncer. II. MATERIAIS E MÉTODOS 1) Estudo na literatura Para o aprendizado dos conceitos básicos que se relacionam ao tema deste projeto, tais como expressão gênica, polimorfismos (SNPs), mutações, mecanismos de silenciamento gênico pós-transcricional, microRNAs, oncogenes e genes-supressores de tumor, carcinoma colorretal etc, foi feito o levantamento bibliográfico, em livros e periódicos especializados, com os quais foram feitos os estudos e produzido resenhas e resumos semanais dos artigos científicos. Utilizou-se para pesquisa de artigos específicos o banco de dados PubMed (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/entrez/), do NCBI, que constitui o mais importante ferramenta para acessar informação da biologia e ciências da saúde. 2 2) Análise in silico Foram realizados estudos para identificar polimorfismos de nucleotídeo único (SNPs) que possam alterar significativamente a regulação de genes com função no carcinoma colorretal, de modo a identificar possíveis microRNAs alvos de terapia. Para a obtenção das sequências gênicas completas e seus polimorfismos já identificados e caracterizados foi usado o GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Genbank/) e o Ensemble (http://www.ensembl.org/), dois dos mais utilizados bancos de dados genômicos. Foi usado o banco de dados de microRNAs denominado miRBase, e diferentes ferramentas de bioinformática disponíveis na Internet para predição de alvos de microRNAs, como por exemplo TargetScan (http://www.targetscan.org/), de acordo com as regras de predição estabelecidas até o momento. III. RESULTADOS A. Estudo bibliográfico Inicialmente buscaram-se na literatura artigos relacionados a microRNAs com expressão alterada em câncer colorretal de modo a listar todos os miRNAs encontrados e também seus genes-alvo, já que há uma importante relação entre a expressão alterada desses pequenos RNAs não codificadores, seu genes alvos e o desenvolvimento de diferentes tipos de câncer. Foram encontrados no total 70 microRNAs com expressão alterada em câncer colorretal. B. Expressão dos miRNAs em câncer colorretal e seleção de alguns para estudo A partir da pesquisa bibliográfica também foi possível identificar o nível de expressão alterada no carcinoma colorretal dos miRNAs encontrados. Muitos miRNAs são encontrados super expressos, como por exemplo, mir-21, mir31, mir-191, mir-200a, mir-200b, dentre outros, enquanto outros estão pouco expressos, como o caso do mir-143, mir145, mir-342. Os miRNAs encontrados alterados em câncer colorretal até o momento na literatura são no total 34 com expressão aumentada e 34 com expressão diminuída. Para podermos selecionar alguns miRNAs a serem estudados mais detalhadamente quanto à existência de SNPs em sítios de ligações ao mRNA, foi feita uma classificação arbitrária, de modo a estabelecer prioridade de análise, observando os seguintes critérios nos artigos estudados: tipos de amostras, se linhagem celular tumoral ou amostra de tumor de paciente; número de pacientes; número de artigos que estudaram um mesmo miRNA. Estabeleceu-se que os miRNAs alterados descritos após análise e validação com amostras de tecido de pacientes, em um número de pacientes maior que 50, teriam prioridade no nosso estudo. Assim, foi dado um score de 1 aos trabalhos que utilizaram tanto análise e validação com tecido de pacientes como o número destes maior que 50. Em seguida os miRNAs relatados com amostras de tecido de pacientes e linhagens de células, em um número de pacientes menor que 50, o score dado a esses trabalhos foi de 0,5. Por último os miRNAs que fizeram validação apenas com linhagens de células, nos quais foram dados um score de 0,2. Foi feita a soma do score de cada miRNA e os microRNAs mais pontuados foram selecionados para o estudo detalhado, sendo eles mir-21, mir31, mir-200c, mir-191, mir-200a e mir-200b, que estão super expressos em câncer colorretal, além do mir-145, mir-143, mir-342 e let-7b, que estão pouco expressos em câncer colorretal. C. Análise da unidade transcricional dos miRNAs Na etapa seguinte, cada miRNA foi analisado de modo a identificar os SNPs presentes nos diferentes miRNAs maduros, em ilhas de CpG, em elementos de regulação gênica e TFBS das unidades transcricionais dos miRNAs selecionados, já que alterações nessas estruturas podem desencadear alterações na expressão dos miRNAs. Foram encontrados diversos SNPs em cada elemento citado. A partir da análise dos SNPs em ilhas de CpG foi possível encontrar 43 SNPs em 13 ilhas de CpG analisadas, enquanto que a análise dos elementos de regulação gênica permitiu encontrar 83 SNPs em 42 elementos de regulação da expressão gênica analisados. Ainda foi identificado um único SNP em um TFBS, presente na unidade transcricional tanto do mir-143, quanto do mir-145. IV. DISCUSSÃO Muitos trabalhos recentes têm se concentrado no estudo de miRNAs, já que mesmo uma pequena alteração na expressão do miRNA pode causar um grande efeito na expressão de centenas de genes de mRNAs a nível pós-transcricional ou traducional. Há muitas evidências de que os miRNAs estão envolvidos em câncer, inclusive no câncer colorretal. Como os SNPs podem residir em locais de ligação de miRNAs ao mRNA, é possível que a regulação do mRNA por miRNAs possa ser afetada por eles. Assim, polimorfismos, em sítios de ligação para miRNAs-alvo, podem ter uma importante influência no risco individual de câncer. Atualmente há poucos artigos publicados que relacionam miRNAs e câncer colorretal, tornando importante o estudo destes. A pesquisa de SNPs relacionados a miRNAs ou genes-alvo em câncer colorretal é ainda mais deficiente. A partir da análise dos diferentes miRNAs observou-se que nenhum deles possui SNPs na sua estrutura. Assim, partiu-se para análise alargada da unidade transcricional de cada um. Com isso, analisaram-se SNPs nas ilhas de CpG, em elementos de regulação gênica e em TFBS, já que alterações nessas estruturas podem desencadear alterações na expressão dos miRNAS. Entretando, somente um SNP foi encontrado nos TFBS. V. CONCLUSÃO Com esta análise foi possível, a partir de dados da literatura, listar os miRNAs que têm um papel funcional no carcinoma colorretal. A partir da análise da bibliografia encontrada sobre esse tema foram selecionados alguns miRNAs, como mir-21, mir-31, mir-200c, mir-191, mir-200a e mir-200b, que estão super expressos em carcinoma colorretal, além do mir-145, mir-143, mir-342 e let-7b, que estão pouco expressos nesse 3 tipo de câncer. A análise de variações em ilhas de CpG, em elementos de regulação gênica e em TFBS, revelou 43 SNPs em 13 ilhas de CpG analisadas, e 83 SNPs em 42 elementos de regulação da expressão gênica analisados. Considerando os TFBS, foi encontrado apenas um SNP. A nossa análise dos SNPs nos microRNAs e em suas unidades transcricionais possibilitou identificar possíveis marcadores para diagnóstico (SNPs) e candidatos a tratamento (miRNAs) do carcinoma colorretal. REFERÊNCIAS [1] [2] [3] [4] [5] [6] [7] [8] [9] [10] [11] [12] [13] [14] [15] [16] [17] [18] [19] [20] [21] [22] [23] [24] [25] [26] Instituto Nacional do Câncer – INCA – estimativa 2008-11-23. American Cancer Society – Global Facts and Figures 2007. Stallmach A, et al. Diminished expression of integrin adhesion molecules on human colonic epithelial cells during the benign to malign tumour transformation. Gut., 1992, 33(3):342-6. Hanahan D. et al. The halmarks of cancer. Cell, 2000, Vol. 100, 57-70. de la Chapelle A. et al. Genetic Predisposition to colorrectal cancer. Nature Reviews Cancer, 2004, 4(10):769-80. Croce CM. et al.Oncogenes and cancer. The new england journal of medicine, 2008, 358(5):502-11. Payne SR. et al. Tumor suppressor genetics. Carcinogenesis, 2005, 26(12):2031-45. Kumar et al. Patologia, Bases Patológicas das Doenças. Ed. Elsevier, 7ª edição, 2005. Landi D. et al. Polymorphisms within micro-RNA-binding sites and risk of sporadic colorrectal cancer. Carcinogenesis, 2008, 29(3):579-84. He L. et al. MicroRNAs: small RNAs with a big role in gene regulation. Nature Reviews Genetics. 2004 5:522-531. Kim VN. e cols. MicroRNA biogenesis: coordinated cropping and dicing. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2005 6:376-385. Buckingham S. et al. The major world of microRNAs. Understanding the RNAissance. Maio de 2003. Zhang BH. e cols.Evidence that miRNAs are different from other RNAs. Cell Mol Life Sci. 2006, 63(2):246-54. Dalmay T. et al.MicroRNAs and the hallmarks of cancer. Oncogene. 2006, 25(46):6170-5. Xi Y. et al. Formentini A. Prognostic Values of microRNAs in Colorectal Cancer. Biomark Insights. 2006 ; 2: 113–121. Goldstein D. e cols. Understanding human diversity.Nature. 2005;Vol. 437 :27. Erichsen HC et al. SNPs in cancer research and treatment. British Journal of Câncer. 2004, 90, 747 – 751. Kirk BW. et al.Single nucleotide polymorphism seeking long term association with complexe disease. Nucleic Acids Research, 2002, vol.30, 15, 3295-3311 Bessenyei B. et al.Single nucleotide polymorphisms: aging and diseases. Biogerontology 2004; 5(5):291-303. Tsang WP, Kwok TT. Let-7a microRNA suppresses therapeuticsinduced cancer cell death by targeting caspase-3. Apoptosis.2008;13(10):1215-22. Nie K. et al. MicroRNA-mediated down-regulation of PRDM1/Blimp-1 in Hodgkin/Reed-Sternberg cells: a potential pathogenetic lesion in Hodgkin lymphomas. Am J Pathol. 2008;173(1):242-52. Garzon R et al.MicroRNA gene expression during retinoic acidinduced differentiation of human acute promyelocytic leukemia. Oncogene. 2007; 14;26(28):4148-57. Shah YM. et al. Peroxisome proliferator-activated receptor alpha regulates a microRNA-mediated signaling cascade responsible for hepatocellular proliferation. Mol Cell Biol. 2007; 27(12):4238-47. Nakajima G. et al. Non-coding MicroRNAs hsa-let-7g and hsa-miR181b are Associated with Chemoresponse to S-1 in Colon Cancer. Cancer Genomics Proteomics. 2006; 3(5):317-324. Lu L. et al. Hypermethylation of let-7a-3 in epithelial ovarian cancer is associated with low insulin-like growth factor-II expression and favorable prognosis. Cancer Res. 2007; 67(21):10117-22. Ambs S et al.Genomic profiling of microRNA and messenger RNA reveals deregulated microRNA expression in prostate cancer. Cancer Res. 2008 ;68(15):6162-70. [27] Bandrés E. et al. Identification by Real-time PCR of 13 mature microRNAs differentially expressed in colorectal cancer and nontumoral tissues. Molecular Cancer. 2006; 5:29. [28] Xia L. et al. miR-15b and miR-16 modulate multidrug resistance by targeting BCL2 in human gastric cancer cells. Int J Cancer. 2008;123(2):372-9. [29] Monzo M et al.Overlapping expression of microRNAs in human embryonic colon and colorectal cancer. Cell Research. 2008 ;18(8):823-33. [30] Szafranska AE. et al. MicroRNA expression alterations are linked to tumorigenesis and non-neoplastic processes in pancreatic ductal adenocarcinoma. Oncogene. 2007; 26(30):4442-52. [31] Pichiorri F. et al. MicroRNAs regulate critical genes associated with multiple myeloma pathogenesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008; 105(35):12885-90. [32] Asangani IA, Rasheed SA, Nikolova DA, Leupold JH, Colburn NH, Post S, Allgayer H. MicroRNA-21 (miR-21) post-transcriptionally downregulates tumor suppressor Pdcd4 and stimulates invasion, intravasation and metastasis in colorectal cancer. Oncogene. 2008; 27(15):2128-36. [32] Asangani IA. et al. MicroRNA-21 (miR-21) post-transcriptionally downregulates tumor suppressor Pdcd4 and stimulates invasion, intravasation and metastasis in colorectal cancer. Oncogene. 2008; 27(15):2128-36. [33] Mishra PJ et al. A miR-24 microRNA binding-site polymorphism in dihydrofolate reductase gene leads to methotrexate resistance. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007; 104(33):13513-8. [34] Volinia S et al. A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006; 103(7):2257-61. [35] Mott JL et al. mir-29 regulates Mcl-1 protein expression and apoptosis. Oncogene. 2007; 26(42):6133-40. [36] Toyota M et al. Epigenetic silencing of microRNA-34b/c and B-cell translocation gene 4 is associated with CpG island methylation in colorectal cancer. Cancer Reseach. 2008; 68(11):4123-32. [37] Garzon R et al. MicroRNA fingerprints during human megakaryocytopoiesis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006; 103(13):507883. [38] Wong TS et al. Identification of pyruvate kinase type M2 as potential oncoprotein in squamous cell carcinoma of tongue through microRNA profiling. Int J Cancer. 2008 Jul 15;123(2):251-7. [39] Burk U et al. A reciprocal repression between ZEB1 and members of the miR-200 family promotes EMT and invasion in cancer cells. EMBO Rep. 2008; 9(6):582-9. [40] Akao Y et al. MicroRNAs 143 and 145 are possible common oncomicroRNAs in human cancers. Oncology Reports. 2006; 16(4):845-50. [41] Michael MZ, et al. Reduced accumulation of specific microRNAs in colorectal neoplasia. Molecular Cancer Research. 2003; 1(12):882-91. [42] Nakagawa Y. et al. Characterized mechanism of alpha-mangostininduced cell death: caspase-independent apoptosis with release of endonuclease-G from mitochondria and increased miR-143 expression in human colorectal cancer DLD-1 cells. Bioorg Med Chem. 2007; 15(16):5620-8. [43] Debernardi S et al. MicroRNA miR-181a correlates with morphological sub-class of acute myeloid leukaemia and the expression of its target genes in global genome-wide analysis. Leukemia. 2007; 21(5):912-6. [44] Kozaki K, et al. Exploration of tumor-suppressive microRNAs silenced by DNA hypermethylation in oral cancer. Cancer Research. 2008; 68(7):2094-105. [45] Grady WM et al. Epigenetic silencing of the intronic microRNA hsamiR-342 and its host gene EVL in colorectal cancer. Oncogene. 2008; 27(27):3880-8. [46] Jiang J et al. Real-time expression profiling of microRNA precursors in human cancer cell lines. Nucleic Acids Research. 2005; 33(17):5394403. [47] Akao Y et al. MicroRNA-143 and -145 in colon cancer. DNA Cell Biol. 2007; 26(5):311-20. [48] Slaby O et al. Altered expression of miR-21, miR-31, miR-143 and miR-145 is related to clinicopathologic features of colorectal cancer. Oncology. 2007;72(5-6):397-402. [49] Cummins JM et al. The colorectal microRNAome. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006;103(10):3687-92. [50] Rajewsky N. et al. MicroRNA target predictions in animals. Nature Genetics 2006; 38:S8-S13.