ca-0379.pdf 1 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm Óleo de peixe ômega-3 e câncer: diminuição da proliferação celular maligna, aumento da apoptose, indução da diferenciação celular e diminuição da neoangiogênese tumoral Escrito em 2006 e revisto em 2009 José de Felippe Junior “O câncer já foi derrotado em animais de experimentação e culturas de células, faltam colocar esses ensinamentos na Clínica para obtermos os mesmos resultados em seres humanos” Os ácidos graxos poliinsaturados possuem vários efeitos contra as células malignas e o seu emprego em seres humanos no combate ao câncer está muito perto, pois em modelos animais e em cultura de células eles diminuem a proliferação celular, aumentam a apoptose, induzem a diferenciação celular, diminuem a neoangiogênese tumoral e diminuem o aparecimento de metástases. Existem evidências que quanto menor o conteúdo de ácidos graxos intratumoral maior é o grau de malignidade do tumor (Hardman2002-2004, Shahidi-2004, Babcock-2005 , Rodriguez-Cruz-2005). Em animais o consumo de ácidos graxos ômega-3 diminui a proliferação maligna de células cancerosas humanas neles implantadas, aumenta a eficácia da quimioterapia, reduz os efeitos colaterais da quimioterapia e reduz os efeitos mórbidos do câncer. Esses ácidos graxos são importantes em vários aspectos da saúde incluindo a cardiovascular (Hardman-1999-2000-2001-2002, Barber-1999, La Guardia-2005, Moyad-2005). Estudos epidemiológicos indicam que populações que consomem grandes quantidades de ácidos graxos ômega-3 apresentam menor incidência de câncer de mama, de próstata e de colon quando comparadas com populações que consomem menores quantidades desses elementos (in Hardman-2002). Em estudo que envolveu 50.000 homens Giovannucci em “follow-up” de 10 anos observou que nos homens que consumiam peixe mais do que 3 vezes por semana, o câncer agressivo e metastático de próstata caiu para a metade. O consumo de peixe não diminuiu a incidência do câncer de próstata, mas, influenciou na agressividade e no potencial metastático do tumor (in-Aktas-2004). Bioquímica dos ácidos graxos: Devido ao fato dos seres humanos não conseguirem desaturar o ômega-3 ou o ômega-6, ambos ácidos graxos são considerados essenciais e devem ser obtidos da dieta. O ácido graxo ômega-6 é consumido na forma de ácido linoleico (LA), 18:2n-6, isto é, 18 carbonos com 2 insaturações a primeira delas 6 carbonos distante do terminal metila. É encontrado nos óleos vegetais (milho, amendoim, soja), nas carnes vermelhas e nos laticínios. Os ácidos graxos ômega-3 podem ser de origem vegetal ou animal. Os de origem vegetal se encontram no óleo de linhaça de regiões geladas e nos vegetais verdes sendo consumidos como ácido alfa-linolenico (LNA). São os 18:3n-3, isto é, 18 carbonos com 3 insaturações a primeira delas 3 carbonos distante do terminal metila. Os de origem animal se encontram nos peixes de água fria ou nos óleos de peixes de água fria e são de dois tipos: ácido eicosapentanoico (EPA) um 20:5n-3 (5 insaturações) e o ácido docosahexanoico (DHA) um 22:6n-3 (6 insaturações). Tanto os ômegas-3 como o ômega-6 são incorporados nos fosfolípides de membrana à medida que são consumidos na dieta, sendo que o equilíbrio é encontrado rapidamente ao redor de 15 dias do início da ingestão. Eles não podem ser diretamente desaturados, porém podem ser alongados e depois desaturados; e eles utilizam os mesmos tipos de enzimas. Importante saber que os 3 principais ácidos graxos ômega-3: LNA, EPA e DHA, suprimem a produção de Ácido Araquidônico (AA) a partir do LA por competição mais eficaz que o LA pelas enzimas delta-5 desaturase e delta-6 desaturase (Hague-1984). Os eicosanoides são moléculas de sinalização celular derivados de ácidos graxos com 20 carbonos, EPA e AA. Os ácidos graxos de 20 carbonos, EPA e AA são clivados dos fosfolípides da membrana celular pela fosfolipase A2 e produzem os eicosanoides. A atividade da ciclooxigenase (COX) sobre o EPA e o AA produz as prostaglandinas ou tromboxanes e a atividade da lipoxigenase (LOX) sobre o EPA e o AA produz os leucotrienos. A atividade da COX ou da LOX sobre o AA produz eicosanoides pró-inflamatórios e pró-proliferativos na maioria dos tecidos. A atividade da COX ou da LOX sobre o EPA produz uma série diferente de eicosanoides com menor atividade pró- inflamatória e pró-proliferativa na maioria dos tecidos. Existem duas isoenzimas da COX: a COX-1 e a COX-2. A COX-1 é produzida constitutivamente na maioria dos tecidos. A COX-2 é induzida em resposta à inflamação e não é detectada nos tecidos normais, não inflamados. Entretanto, a COX-2 está aumentada em grande variedade de cânceres humanos, incluindo de epiderme (Higashi-2000), hepatocelular (Kondo-1999), cervical (Kulkarni-2001), pancreático (Okami-1999), carcinoma epidermoide de esôfago (Shamma-2000), carcinoma transicional de bexiga (Shirahama-2000), colon (Kargman-1995) e mama (Parret-1997 , Hwang-1998). Mecanismos de ação do óleo de peixe ômega-3 no câncer 1- Alterações do metabolismo dos eicosanoides Os ácidos graxos ômega-3 inibem a indução da COX-2. Os ômega-3 por esse mecanismo diminuem a proliferação celular maligna em células MDA-MB 231 do câncer de mama humano (Obata-1999, Hamid-1999) e do câncer de colon (Rao-1995, Reddy-1990) e eles funcionam tanto no tumor primário como nos tumores metastáticos. Existem evidências que os ômega-3 inibem o fator de transcrição nuclear NF-kappaB e assim suprimem a expressão da COX-2 (in-Hardman-2002). O NF-kappaB é um fator de transcrição que induz a expressão de citocinas inflamatórias, IL-1, IL-6, COX-2, TNF-alfa e fatores de crescimento como a IL-2 e o fator estimulante de colônias de granulócitos (Schwartz-1999). O NF-kappaB é um fator de sobrevivência da célula maligna e a sua inibição provoca diminuição da proliferação celular, aumento da apoptose e diminuição da angiogênese (Felippe-fev.2004). 2- Parada da mitose Descreve-se 6 mecanismos de diminuição da mitose com os ômega-3: a- Tanto o ácido linoleico como o ácido araquidônico ativam a proteína kinase C (PKC) indutora de mitose (Craven-1988). O EPA e o DHA revertem a atividade da PKC na carcinogênese do colon (Rose-1999 , McCarty-1996). b- O EPA e o DHA diminuem a atividade dos oncogenes Ras (Collett-2001) e AP-1 (Liu-2001) que freqüentemente estão 4/10/2011 10:56 ca-0379.pdf 2 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm ativos nos tumores malignos humanos e estimulam a mitose. c- Os produtos derivados do AA pelas COX e LOX aumentam a mitose. Os produtos derivados do DHA e do EPA diminuem a mitose e inibem a proliferação celular no câncer de mama e de colon (Rose-1993-1995, Buckman-1991, Abou-El-Ela-1988). d- O DHA induz a parada do ciclo celular e a apoptose ativando fosfatases protéicas que promovem a defosforilação da proteína retinoblastoma (Siddiqui-2004). e- Os ômega-3 suprimem a ativação do fator de transcrição nuclear NF-kappaB de um modo dose dependente, isto é, quanto maior a quantidade ingerida na dieta maior é a inibição (in-Hardman-2002). A inibição do NF-kappaB diminui a proliferação celular, aumenta a apoptose e diminui a angiogênese tumoral (Felippe-fev.2004). f- Os ômega-3 promovem a fosforilação da sub unidade IF2 com a subseqüente inibição do início da translação, o que leva à inibição da proliferação celular maligna (Aktas-2004). 3- Restauração da via apoptótica As vias de apoptose geralmente estão prejudicadas no câncer. O aumento da expressão da COX-2 provoca bloqueio da apoptose (Tsujii-1995). No câncer o NF-kappaB freqüentemente está ativado e um dos seus efeitos é bloquear a apoptose (Schwartz-1999, Felippe-fev.2004). Desta forma o bloqueio da COX-2 e do NF-kappaB pelos ácidos graxos ômega-3 contribui para a restauração das vias normais de apoptose (Narayuan-2001). O DHA inativa a família Bcl-2 de genes anti apoptóticos e aumenta a transcrição de genes e fatores de transcrição que induzem a apoptose (Chiu-1999). O DHA ativa fosfatases protéicas envolvidas na inativação do Bcl-2 e na ativação da caspase-3, fatores que de forma independente promovem o aumento da apoptose (Siddiqui-2004) . 4- Indução da diferenciação celular Os ômega-3 induzem a diferenciação de células do câncer de mama (Wang-2000) e células diferenciadas não se multiplicam elas seguem as vias normais de apoptose. 5- Supressão da angiogênese Sabe-se que o alto consumo de gorduras ricas em ácidos graxos ômega-6 se associa com o pobre prognóstico das mulheres com câncer de mama (Rose-2000). Os produtos derivados da atividade da COX e LOX sobre o ácido linoleico são angiogênicos in vitro e estimulam a neoangiogênese tumoral in vivo, enquanto que os produtos dessas duas enzimas sobre os ômega-3 não somente impedem a estimulação da neoangiogênese tumoral como provocam a sua diminuição (McCarty-1996 , Form-1983 , Connolly-1998 , Rose-2000, Wen-2003). 6- Modificação do metabolismo estrogênico É bem conhecido o papel promotor do estrógeno na carcinogênese da mama, entretanto, é importante recordar que também existem receptores de estrógeno na próstata e no colon os quais podem promover a proliferação neoplásica destes orgãos (Weihua-2001, Foley-2000). A prostaglandina E2 (PGE2) produto do AA, ativa a aromatase P450, o que aumenta a produção de estrógenos (Noble-1997). A prostaglandina E3 (PGE3) produto do EPA não ativa a aromatase P450. Desta forma, a diminuição da PGE2 e o aumento da PGE3 diminuem a produção de estrógenos e conseqüentemente diminui a proliferação celular. Os ácidos graxos ômega-3 provocam diminuição da proliferação mitótica neoplásica tanto em cultura de células (Telang-1988) como em mulheres com câncer de mama (Osborne-1988). 7- Aumento do potencial redox da célula maligna Os ácidos graxos poliinsaturados aumentam a geração do radical superóxido ( O2*) e de peróxido de hidrogênio (H2O2) nas células tumorais provocando a sua morte por apoptose ou necrose, dependendo da potencia oxidante. Os radicais livres e os peróxidos lipídicos suprimem a expressão do Bcl-2, ativam as caspases e encurtam os telomeros e assim induzem apoptose das células neoplásicas (Bougnoux-1999, Felippe- 2005). As células cancerosas são mais resistentes à peroxidação lipídica quando comparada com as células normais. As possíveis razões são: 1- baixo conteúdo de ácidos graxos poliinsaturados na membrana celular dos tumores, 2- baixa concentração do citocromo P-450, elemento que gera radical superóxido, 3- alto conteúdo de NADPH, agente redutor, produzido no ciclo das pentoses pela enzima glicose-6-fosfatodehidrogenase e 4-elevada atividade antioxidante (Begin-1986). Esses fatos levaram Begin e colaboradores a verificar quais eram as concentrações de ácidos graxos poliinsaturados que adicionadas ao meio de cultura eram citotóxicas para as células malignas, mas não afetavam as células normais. Foram testados em cultura de tecido, ácidos graxos contendo: 1. 2. 3. 4. 5. duas ligações insaturadas (ácido linoleico - LA), três ligações insaturadas (ácido alfa linoleico- ALA, ácido gama linoleico- GLA e ácido dihomogamalinoleico- DGLA), quatro ligações insaturadas (ácido araquidônico - AA), cinco ligações insaturadas ( ácido eicosapentanoico- EPA ) e seis ligações insaturadas (ácido docosahexanoico- DHA) Colocou-se os ácidos graxos diretamente sobre as células tumorais e diretamente sobre sua correspondente célula não tumoral e observou-se a proliferação celular nas culturas. Os experimentos revelaram que doses de 10 a 30 microgramas/ml (0,000 001 a 0,000 003g) desses ácidos graxos eram letais para as células tumorais e totalmente inócuas para as células não tumorais. A dose letal por célula foi de 1 nanograma (0,000 000 001g). O efeito letal demorou 3 a 4 dias para se tornar aparente e de 7 a 10 dias para ser completo. Diferentes tipos de ácidos graxos mostraram diferentes potências de citotoxicidade. Os mais eficazes para matar as células tumorais em cultura foram o ácido gamalinolenico (GLA) e o ácido araquidônico (AA) seguido de perto pelo EPA, ácido linoleico (LA) e ácido alfa linolenico (LNA). O DHA não foi letal (Begin 1986). O DHA sensibiliza as células MDA-MB-231 e MCF-7 dox, mas, não a MCF-7 do câncer de mama humano à citotoxicidade do quimioterápico doxorubicina, via aumento do potencial redox intracelular, com aumento da lipoperoxidação (Mah-2005). 8- Aumento do potencial transmembrana Os ácidos graxos ômega-3 provocam aumento da excreção renal de sódio, diminuição do cálcio intracelular e aumento do potássio intracelular (Knapp-1991) e desta forma interferem no potencial de ação das células malignas. Todos esses fatores levam ao aumento do potencial de ação, isto é, polarização da membrana celular com o conseqüente aumento da produção de ATP. Sabe-se que o aumento do potencial de membrana acima de -15mv faz cessar a proliferação mitótica e que o aumento da produção de ATP via fosforilação oxidativa mitocondrial faz cessar a glicólise anaeróbia, motor da mitose (Felippe-jan 2004). 9- Modulação da enzima glicose-6-fosfatodehidrogenase (G6PD) A G6PD é a responsável pela produção de NADPH potente agente redutor que aumenta a proliferação celular e uma das responsáveis pela produção de ribose, coluna dorsal do RNA e do DNA das células malignas (Felippe-nov.2006). Células C6 do glioma humano foram incubadas com EPA (20:5n-3) e DHA (22:6n-3). O EPA foi prontamente metabolizado em 22:5n-3 e o DHA simplesmente aumentou sua concentração dentro da célula. Após 72 horas de incubação observou-se citotoxicidade com ambos ácidos graxos. Os níveis de espécies reativas tóxicas de oxigênio aumentaram mais nas células tratadas com DHA do que nas células com EPA. Junto com a oxidação houve queda dos níveis da glutationa reduzida (GSH) e como esperado houve aumento da 4/10/2011 10:56 ca-0379.pdf 3 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm atividade da G6PD como mecanismo de defesa contra o estresse oxidativo (Leonard-2005). Trabalho brasileiro também mostrou o papel protetor do aumento da G6PD no gliomaC6, após estresse oxidativo (Ramos- 2003). Estes trabalhos mostram claramente a necessidade de inibirmos a G6PD se quisermos aumentar a eficácia dos ômega -3 nos pacientes com câncer. Entendemos também o porquê dos resultados negativos em alguns estudos. A compreensão da bioquímica celular “maligna” é primordial para conseguirmos êxito no tratamento do câncer. Não adianta aumentarmos a oxidação intracelular se não inibirmos as enzimas de defesa das vias metabólicas do ciclo das pentoses, G6PD e transcetolase. No fígado os ácidos graxos poliinsaturados inibem a expressão da G6PD agindo no pré RNA mensageiro do núcleo. O consumo de dietas ricas em ácidos graxos poliinsaturados pelo camundongo diminui o acúmulo do pré RNAm da G6PD (Tao-2002). A insulina e a glicose estimulam em 5-7 vezes o aumento da G6PD no hepatócito de rato. A adição de ácidos graxos poliinsaturados à cultura diminui a expressão gênica da G6PD por um mecanismo nuclear pós transcripcional (Stabile-1998). Em camundongos ingerindo dieta rica em carboidratos os níveis de G6PD estão elevados. A adição de ácidos graxos poliinsaturados a esta dieta diminui em 70% os níveis de G6PD por diminuição da expressão pós transcripcional da enzima (Hodge1997). A re-alimentação de camundongos em jejum com carboidratos aumenta 13 vezes os níveis de G6PD. 10- Inibe a translação do RNA mensageiro (RNAm) O EPA depleta o cálcio iônico intracelular levando à fosforilação da sub unidade elF2 com a subseqüente inibição da translação do RNAm o que provoca diminuição da proliferação celular e apoptose das células neoplásicas em vários tipos de câncer. Para revisão sobre a regulação translacional da expressão gênica pelos ômega-3, vide o trabalho de Atkas e Halperin de 2004. 11- Efeitos sobre o sistema imunológico Alguns trabalhos mostram que os ômega-3 podem aumentar a imunidade celular e a citotoxicidade das células “Natural Killer” (Field-2004). Redução do Risco de Câncer com o consumo de ácidos graxos ômega-3 A incidência de câncer de mama em mulheres Japonesas aumenta na primeira geração quando elas migram para os Estados Unidos (Ziegler-1993). A incidência de câncer de mama, próstata e colon estão aumentando assustadoramente no Japão (Wynder-1991) e no Alasca (Ziegler-1993), à medida que essas culturas adotam a dieta americana, isto é, diminuem a ingestão de peixes e aumentam a ingestão de ácidos graxos ômega-6. Estudos epidemiológicos e em animais indicam que não é o valor absoluto da ingestão dos ômega-3 o importante para reduzir o risco de câncer, o que possui valor é a relação ômega-6/ômega-3 (n6/n3). Em animais a relação n6/n3 de 1,2/1,0 reduz a incidência de câncer (Somonsem-1998). Não entendemos porque organizações internacionais como FAO/WHO recomendam que a ingestão ótima de n6/n3 seja de 5-10 / 1 (Rodriguez-Cruz-2005). Em 2006 uma revisão sistemática de 38 artigos não conseguiu mostrar que o consumo de ômega-3 diminui a incidência de câncer, entretanto lamentavelmente os autores “digamos” se esqueceram de verificar a relação ômega-6/ômega-3 (MacLean-2006). Tratamento do câncer humano com ômega-3 Em 1995, Gogos usou 18 g / dia de óleo de peixe em 20 pacientes com tumores sólidos. No final de 40 dias detectou significante aumento da razão T-Helper / T-Supressor, principalmente devido a diminuição dos linfócitos T-Supressores. Em 1998, Gogos em estudo prospectivo, randomizado e controlado com placebo, usou 18g /dia de óleo de peixe em 60 pacientes. No grupo suplementado houve aumento da relação CD4/CD8, diminuição do fator de necrose tumoral no grupo subnutrido e um aumento da sobrevida no grupo bem nutrido e subnutrido. Burns, em 1999, mostrou que a dose tolerada de ácidos graxos ômega-3 como óleo de peixe é de 0,3 g/kg por dia ou 21 g/dia em pessoa com 70 kilos. Em pacientes com câncer de pâncreas i ingerindo 12 g/dia de óleo de peixe (18%EPA e 12%DHA) verificou-se diminuição da perda de peso. Alguns pacientes realmente começaram a ganhar peso (Wigmore-1996). O EPA, 2,18 g ao dia, aumentou o apetite de pacientes com câncer que estavam em caquexia e observou-se um real aumento do peso. O uso de megestrol provocou os mesmos efeitos (Jatoi-2004). A melhor dose para caquexia está entre 2 a 4 g/dia de EPA. Bougnoux, em 1999, mostrou que os pacientes com câncer de mama e que apresentavam maiores concentrações tissulares de DHA a longo tempo responderam melhor à quimioterapia, com maior número de remissões completas ou respostas parciais. Outro autor mostrou que se consegue este tipo de resultado em apenas 3 meses de suplementação (Bagga-1997). Resumo dos Mecanismos de Ação do óleo de peixe ômega-3 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. Inibe o fator de transcrição nuclear NF-kappaB Inibe a indução da COX-2 Diminui a produção de PGE2 (proliferativo) e aumenta a de PGE3 (não proliferativo) Inibe a aromatase P450 diminuindo a produção de estrógenos Inibe a proteína kinase C (PKC) Diminui a expressão dos oncogenes: Ras e AP-1 Inativa a família Bcl-2 de genes anti apoptóticos Aumenta a transcrição de genes pró apoptóticos Ativa a caspase-3 Induz a diferenciação celular Inibe a neoangiogênese Aumenta o potencial redox intracelular Aumenta a atividade da G6PD secundária ao aumento do potencial redox: efeito indireto Diminui a expressão da G6PD no fígado: efeito direto Aumenta o potencial transmembrana da membrana celular Defosforila a proteína retinoblastoma Inibe a translação do RNA mensageiro Fosforila a sub unidade IF2 inibindo translação Ativa o sistema imune Aumenta o efeito da quimioterapia Conclusão: Os ácidos graxos ômega-3 interferem tanto no tumor primário como nos metastáticos ou residuais pós cirúrgico alterando o metabolismo dos eicosanoides, diminuindo a proliferação mitótica maligna, aumentando a apoptose, induzindo a diferenciação celular, modificando o metabolismo estrogênico, produzindo aumento do potencial redox na célula maligna e provocando aumento da polarização da membrana. São necessários trabalhos clínicos mais extensos e controlados, que sabemos não virão, porque a indústria farmacêutica não 4/10/2011 10:56 ca-0379.pdf 4 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm possui verbas para despender com medicamentos não passíveis de patente. A célula colocada durante anos em regime de sofrimento chega um momento de “estado de quase morte”. Neste momento para não morrer ela desencadeia e utiliza todos os mecanismos bioquímicos adquiridos nos milhões de anos de evolução, para sobreviver. Ela é carne da nossa própria carne e esta desesperada para se manter viva. As células mais indiferenciadas, as mais malignas, dificilmente serão controladas e o que nos resta é a aniquilação, porém as menos malignas podem se diferenciar e fazer parte novamente da sociedade normal das células do organismo. Os ácidos graxos ômega-3 do óleo de peixe faz parte integrante do nosso tratamento que dirige sua atenção para as diversas estruturas celulares, visando promover a diferenciação da célula neoplásica e assim diplomaticamente aceitar estas células agora recuperadas para continuarem a sua missão no organismo. Não vamos desistir desta luta. No mundo não há fracassados e sim desistentes Confucio Referências Bibliográficas 1. Abou-El-Ela S H; Prasse K W; Carroll R; Wade A E; Dharwadkar S & Bunce O R. Eicosanoid synthesis in 7,12-dimethylbenz(a)anthracene-induced mammary carcinomas in Sprague Dawley rats fed primrose oil, menhaden oil or com oil. Lipids; 23: 948-954, 1988. 2. Aktas H; Halperin J A. Translational Regulation of gene expression by omega-3 fatty acids. J Nutr; 134(9): 2487S-2491S, 2004. 3. Babcock T A; Dekoj T; espat N J. Experimental studies defining omega-3 fatty acid anti-inflammatory mechanisms and abrogation of tumor-related syndromes. Nutr Clin Pract; 20(1): 62-74, 2005. 4. Bagga D; Capone S; Wang H –L; Heber D; Lill M; Chap L & Glaspy J A. Dietary modulation of omega-3/omega-6 polyunsaturated fatty acid ratios in patients with breast cancer. J Natl Cancer Inst; 89: 1123-1131, 1997. 5. Barber M D; Ross J A; Voss A C; Tisdale M J &Fearon K C H. The effect of an oral nutritional supplement enriched with fish oil on weight-loss in patients with pancreatic cancer. Br J Cancer; 81: 80-86, 1999. 6. Begin M. E., G. Ells, U. N. Das, and D. F. Horrobin, Differential killing of human carcinoma cells supplemented with n-3 and 6-polyunsaturated fatty acids, J Natl Cancer Inst. 77: 1053 ,1986. 7. Bougnoux P. n-3 polyunsaturated fatty acids and cancer. Curr Opin Clin Nutr metab Care; 2(2): 121-6, 1999. 8. Bougnoux P; Chajés V; Germain E; Hubert B; Lhuillery C; Le Floch O; Body G & Calais G. Cytotoxic drug efficacy correlates with adipose tissue docosahexaenoic acid level in locally advanced breast carcinoma. Lipids; 34: S109 (abs.), 1999. 9. Buckman D K; Hubbard N E & Erickson K J. Eicosanoids and linoleate-enhanced growth of mouse mammary tumor cells. Prostaglandins Leuko Essent Fatty Acids; 44: 177-184, 1991. 10. Bums C P; Halabi S; Clamon G H; Hars V; Wagner B A; Hohi R J; Lester E; Kirshner J J; Vinciguerra V & Paskett E. Phase I clinical study of fish oil fatty acid capsules for patients with cancer cachexia: cancer and leukemia group B Study 9473. Clin Cancer Res; 5: 3842-3947, 1999. 11. Chiu L C M and Wan J M F. Induction of apoptosis in HL-60 cells by eicosapentaenoic acid (EPA) is associated with downregulation of bcl-2 expression. Cancer Lett; 145: 17-27, 1999. 12. Collett E D; Davidson L A; Fan Y –Y; Lupton J R & Chapkin R S. n-6 and n-3 polyunsaturated fatty acids differentially modulate oncogenic Ras activation in colonocytes. Am J Physiol Cell Physiol; 280: C1066-C1075, 2001. 13. Connolly J M and Rose D P. Enhanced angiogenesis and growth of 12-lipoxygenase gene-transfected MCF-7 human breast cancer cells in athymic nude mice. Cancer Lett; 132: 107-112, 1998. 14. Cravwn P A and DeRubertis F R. Role of activation of protein kinase C in the stimulation of colonic epithelial proliferation by unsaturated fatty acids. Gastroenterology; 95: 676-685, 1988. 15. Felippe JJ. O controle do câncer com um método muito simples e não dispendioso : provocar a hiperpolarização celular com dieta pobre em sódio e rica em potássio. Evidências clínicas e experimentais Revista Eletrônica da Associação Brasileira de Medicina Complementar.www.medicinacomplementar.com.br. Janeiro de 2004 16. Felippe JJ. Tratamento do câncer com medidas e drogas que inibem o fator de transcrição nuclear NF-kappaB. Revista Eletrônica da Associação Brasileira de Medicina Complementar. www.medicinacomplementar.com.br. Fevereiro de 2004 17. Felippe JJ. Efeito dos Ácidos Graxos Poli Insaturados no câncer: indução de apoptose, inibição da proliferação celular e antiangiogênese. Revista Eletrônica da Associação Brasileira de Medicina Complementar. www.medicinacomplementar.com.br, 2005. 18. Felippe JJ. G6PD e câncer . Revista Eletrônica da Associação Brasileira de Medicina Complementar. www.medicinacomplementar.com.br. Novembro de 2006. 19. Field C J; Schley P D. Evidence for potential mechanisms for the effect of conjugated linoleic acid on tumor metabolism and immune function: lessons from n-3 fatty acids.Am J Clin Nutr; 79(6 Suppl): 1190S-1198S, 2004. 20. Foley E F; Jazaeri A A; Shupnik M A; Jazaeri O & Hice L W. Selective loss of estrogen receptor beta in malignant human colon. Cancer Res; 60: 245-248, 2000. 21. Form D M and Auerbach R. PGE2 and angiogenesis. Proc Soc Exp Biol Med; 172: 214-218, 1983. 22. Gogos C A; Ginopoulos P; Zoumbos N C; Apostolidou E; Kalfarentzos F. The effect of dietary omega-3 polyunsaturated fatty acids on T-lymphocyte subsets of patients with solid tumors. Cancer Detect Prev; 19(5): 415-7, 1995. 23. Gogos C A; Ginopoulos P; Salsa B; Apostolidou E; Zoumbos N C; Kalfarentzos F. Dietary Omega-3 polyunsaturated fatty acids plus vitamin E restore immunodeficiency and prolong survival for severely ill patients with generalized malignancy: a randomized control trial. Cancer; 82(2): 395-402, 1998. 24. Hague T A and Christoffersen B O. Effect of dietary fats on arachidonic acid and eicosapentaenoic acid biosynthesis and conversion of C22 fatty acids in isolated liver cells. Biocheim Biophys Acta; 796: 205-217, 1984. 25. Hamid R; Singh J; Reddy B S & Cohen L A. Inhibition by dietary menhaden oil of cyclooxygenase-1 and-2 in N-nitrosomethylurea-induced rat mammary tumors. Int J Oncol; 14: 523-528, 1999. 26. Hardman W E; Moyer M P & Cameron I L. Fish oil supplementation enhanced CPT-11 (Irinotecan) efficacy against MCF7 breast carcinoma xenografts and ameliorated intestinal side effects. Br J Cancer; 81: 440-448, 1999. 27. Hardman W E; Moyer M P & Cameron I L. Dietary fish oil sensitizes A549 lung xenografts to doxorubicin chemotherapy. Cancer Lett; 151: 154-151, 2000. 28. Hardman W E; Avula C P R; Fernandes G & Cameron I L. Three percent dietary fish oil concentrate increased efficacy of doxorubicin against MDA-MB 231 human breast cancer xenografts. Clin Cancer Res; 7: 2041-2049, 2001. 29. Hardman W E; Moyer M P & Cameron I L. Small amounts of a concentrated omega-3 fatty acid product, INCELL AAFA, in the diet reduces the side-effects of the cancer chemotherapy drug, CPT-11 (irinotecan). Br J Cancer; 86: 983-988, 2002. 30. Hardman W E. Omega-3 fatty acids to augment cancer therapy. J Nutr; 132(11 Suppl): 3508S-3512S, 2002. 31. Hardman W E. (n-3) fatty acids and cancer therapy. J Nutr; 134(12 Suppl): 3427S-3430S, 2004. 32. Higashi Y; Kanekura T & Kanzaki T. Enhanced expression of cyclooxygenase (COX)-2 in human skin epidermal cancer cells: evidence for growth suppression by inhibiting COX-2 expression. Int J Cancer; 86:667-671, 2000. 33. Hodge D L; Salati L M. Nutritional regulation of the glucose-6-phosphate dehydrogenase gene is mediated by a nuclear posttranscriptional mechanism. Arch Biochem Biophys; 348(2): 303-12, 1997. 34. Hwang D; Scollard D; Byme J & Levine E. Expression of cyclooxygenase-1 and cyclooxygenase-2 in human breast cancer. J 4/10/2011 10:56 ca-0379.pdf 5 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm Natl Cancer Inst; 90: 455-460, 1998. 35. Jatoi A; Rowland K; Loprinzi C L; Sloan J A; Dakhil S R; MacDonald N; Gagnon B; Novotny PJ; Mailliard J A, et al. An eicosapentaenoic acid supplement verses megestrol verses both for patients with cancer-associated wasting: a North Central Cancer Treatment Group and National Cancer Institute of Canada collaborative effort. J Clin Oncol; 22: 2469-2476, 2004. 36. Kargman S L; O’Neill G P; Vickers P J; Evans J F; Mancini J A; & Jotny S. Expression of prostaglandin G/H synthase-1 and-2 protein in human colon cancer. Cancer Res; 55: 2556-2559, 1995. 37. Knapp HR, Miller AJ, Lawson JÁ: Urinary excretion of diols derived from eicosapentaenoic acid during n-3 fatty acid ingestion by man. Prostaglandins,42:47-54,1991. 38. Kondo M; Yamamoto H; Nagano H; Okami J; Ito Y; Shimizu J; Eguchi H; Miyamoto A; Dono K; Umeshita K; Matsuura N; Wakasa K; Nakamori S; Sakon M & Monden M. Increased expression of COX-2 in nontumor liver tissue is associated with shorter disease-free survival in patients with hepatocellular carcinoma. Clin Cancer Res; 5: 4005-4012, 1999. 39. Kulkarni S; Rader J S; Zhang F; Liapis H; Koki A T; Masferrer J L; Subbaramaiah K & Dannenberg A J. Cyclooxygenase-2 is overexpressed in human cervical cancer. Clin Cancer Res; 7: 429-434, 2001. 40. La Guardia M; Giammanco S; Di Majo D; Tabacchi G; Tripoli E; Giammanco M. Omega 3 fatty acids: biological activity and effects on human health. Panminerva Med; 47(4): 245-57, 2005. 41. Leonard F; Attorri L; Di Benedetto R; Di Biase A; Sanchez M; Nardini M; Salvati S. Effect of arachidonic, eicosapentaenoic and docosahexaenoic acids on the oxidative status of C6 glioma cells. Free Radic Res; 39(8): 865-74, 2005. 42. Liu G; Bibus D M; Bode A M; Ma W –Y; Holman R T & Dong Z. Omega 3 but not omega 6 fatty acids inhibit AP-1 activity and cell transformation in JB6 cells. Proc Natl Acad Sci U.S.A; 98: 7510-7515, 2001. 43. Mah K; Vibet S; Steghens J P; Dartigeas C; Lehman M; Bougnoux P; Gor P. Differential sensitization of cancer cells to doxorubicin by DHA: a role for lipoperoxidation. Free Radic Biol Med; 39(6): 742-51, 2005. 44. MasLean C H; Newberry S J ; Mojica W A; Kahanna P; Issa A M; Suttorp M J; Lim Y W; Traina S B; Hilton L; Garland R; Morton S C. Effects of omega-3 fatty acids on cancer risk: a systematic review. JAMA; 295(4): 403-15, 2006. 45. McCarty M F. Fish oil may impede tumor angiogenesis and invasiveness by down-regulating protein kinase C and modulating eicosanoid production. Med Hypotheses; 46: 107-115, 1996. 46. Moyad M A. An introduction to dietary/supplemental omega-3 fatty acids for general health and prevention: part II. Urol Oncol; 23(1): 36-48, 2005. 47. Narayanan B A; Narayanan N K & Reddy B S. Docosahexaenoic acid regulated genes and transcription factors inducing apoptosis in human colon cancer cells. Internatl J Oncol; 19: 1255-1262, 2001. 48. Noble L S; Takayama K; Zeitoun K M; Putman J M; Johns D A; Hinshelwood M M; Agarwal V R; Zhao Y; Carr B R & Bulun S E. Prostaglandin E2 stimulates aromatase expression in endometriosis-derived stromal cells. J Clin Endocrinol Metab; 82: 600-602, 1997. 49. Obata T; Nagakura T; Masaki T; Maekawa K & Yamashita K. Eicosapentaenoic acid inhibits prostaglandin D2 generation by inhibiting cyclo-oxygenase-2 in cultured human mast cells. Clin Exp Allergy; 29: 1129-1135, 1999. 50. Okami J; Yamamoto H; Fujiwara Y; Tsujie M; Kondo M; Noura S; Oshima S; Nagano H; Dono K; Umeshita K; Ishikawa O; Sakon M; Matsuura N; Nakamori S & Monden M. Overexpression of cyclooxygenase-2 in carcinoma of the pancreas. Clin Cancer Res; 5: 2018-2024, 1999. 51. Osborne M P; Karmali R A; Herschcopt R J; Bradlow H L; Kourides I A; Williams W R; Rosen P P & Fishman J. Omega-3 fatty acids: modulation of estrogen metabolism and potential for breast cancer prevention. Cancer Invest; 6: 629-632, 1988. 52. Parrett M L; Harris R L; Joarder F S; Ross M S; Clausen K P & Robertson F M. Cyclooxygenase-2 gene expression in human breast cancer. Int J Oncol; 10: 503-508, 1997. 53. Ramos K L; Colquhoun A. Protective role of glucose-6-phosphate dehydrogenase activity in the metabolic response of C6 rat glioma cells to polyunsaturated fatty acid exposure. Glia; 43(2): 149-66, 2003. 54. Rao C V; Rivenson A; Simi B; Zang E; Kelloff G; Steele V & Reddy BS . Chemoprevention of colon carcinogenesis by Sulindac, a nonsteroidal anti-inflammatory agent. Cancer Res; 55: 1464-1472, 1995. 55. Reddy B S; Nayini J; Tokumo K; Rigotty J; Zang E & Kelloff G. Chemoprevention of colon carcinogenesis by concurrent administration of piroxicam, a nonsteroidal anti-inflammatory drug with D,L,- -difluoromethylornithine, an omithyne decarboxylase inhibitor, in diet. Cancer Res; 50: 2562-2568, 1990. 56. Rodriguez-Cruz M; Tovar A R; del Prado M; Torres N. Mecanismos moleculares de accid de los ácidos grasos poliinsaturados y sus benefícios em lá salud. [Molecular mechanisms of action and health bebefits of polyunsaturated fatty acids]. Rev Invest Clin; 57(3): 457-72, 2005. 57. Rose D P and Connolly J M. Effects of dietary omega-3 fatty acids on human breast cancer growth and metastasis in mude mice. J Natl Cancer Inst; 85: 1743-1747, 1993. 58. Rose D P; Connolly J M; Rayburn J & Coleman M. Influence of diets containing eicosapentaenoic or docosahexaenoic acid on growth and metastasis of breast cancer in mude mice. J Natl Cancer Inst; 87: 587-592, 1995. 59. Rose D P and Connolly J M. Omega-3 fatty acids as cancer chemopreventive agents. Pharmacol Therap; 83: 217-244, 1999. 60. Rose D P; Connolly J M. Regulation of tumor angiogenesis by dietary fatty acids and eicosanoids. Nutr Cancer; 37(2): 119-27, 2000. 61. Schwartz S A; Hernandez A & Evers B M. The role of NF-KappaB proteins in cancer; implications for novel treatment strategies. Surg Oncol; 8: 143-153, 1999. 62. Shahidi F; Miraliakbari H. Omega-3 (n-3) fatty acids in health and disease: Part 1-cardiovascular disease and cancer. J Med Food; 7(4): 387-401, 2004. 63. Shamma A; Yamamoto H; Doki Y; Okami J; Kondo M; Fujiwara Y; Yano M; Inoue M; Matsuura N; Shiozaki H & Monden M. Up-regulation of cyclooxygenase-2 in squamous carcinogenesis of the esophagus. Clin Cancer Res; 6: 1229-1238, 2000. 64. Shirahama T. Cyclooxygenase-2 expression is up-regulated in transitional cell carcinoma and its preneoplastic lesions in the human urinary bladder. Clin Cancer Res; 6: 2424-2430, 2000. 65. Siddiqui R A; Shaikh S R; Sech L A; Yount H R; Stillwell W; Zaloga G P. Omega-3 fatty acids: health benefits and cellular mechanisms of action. Mini Rev med Chem; 4(8): 859-71, 2004. 66. Simonsen N; van’t Veer P; Strain J J; Martin-Moreno J M; Huttunen J K; Navajas J F; Martin B C; Thamm M; Kardinaal A F; Kok F J & Kohlmeier L. Adipose tissue omega-3 and omega-6 fatty acid content and breast cancer in the EURAMIC study. European Community Multicenter Study on Antioxidants, Myocardial infarction, and Breast Cancer. Am J Epidemiol; 147: 342-352, 1998. 67. Stabile L P; Klautkyb S A; Minor S M; Salati L M. Polyunsaturated fatty acids inhibit the expression of the glucose-6-phosphate dehydrogenase gene in primary rat hepatocytes by a nuclear posttranscriptional mechanism. J Lipid Res; 39(10): 1951-63, 1998. 68. Tao H; Szeszel-Fedorowicz W; Amir-Ahmady B; Gibson M A; Stabile L P; Salati L M. Inhibition of the splicing of glucose6-phosohate dehydrogenase precursor mRNA by polyunsaturated fatty acids. J Biol Chem; 277: (34): 31270-8, 2002. 69. Telang N T; Basu A; Kurihara H; Osborne M P & Modak M J. Modulation in the expression of murine mammary tumor vírus ras proto-oncogene, and of alveolar hyperplasia by fatty acids in mouse mammary explaut cultures. Anticancer Res; 8: 971-976, 1988. 70. Tsujii M and Dubois R N. Alterations in cellular adhesion and apoptosis in epithelial cells overexpression prostaglandin endoperoxide synthase 2. Cell; 83: 493-501, 1995. 71. Wang M; Liu Y E; Ni J; Aygun B; Goldberg I D & Shi Y E. Induction of mammary differentiation by mammary-derived growth inhibitor-related gene that interacts with an ω-3 fatty acid on growth inhibition of breast cancer cells. Cancer Res; 60: 4/10/2011 10:56 ca-0379.pdf 6 de 6 http://www.medicinacomplementar.com.br/convertido/ca-0379.htm 72. 73. 74. 75. 76. 6482-6487, 2000. Weihua Z; Mäkelä S; Andersson L C; Salmi S; Saji S; Webster J I; Jensen E V; Nilsson S; Warner M & Gustafsson J –Ä. A role for estrogen receptor β in the regulation of growth of the ventral prostate. Proc Natl Acad Sci U.S.A.; 98: 6330-6335, 2001. Wen B; Deutsch E; Opolon P; Auperin A; Frascogna V; Connault E; Bourhis J. n-3 polyunsaturated fatty acids decrease mucosal/epidermal reactions and enhance antitumour effect of ionizing radiation with of tumour angiogenesis. Br J Cancer; 89(6): 1102-7, 2003. Wigmore S J; Ross J A; Falconer J S; Plester C E; Tisdale M J; Carter D C & Fearon K C H. The effect of polyunsaturated fatty acids on the progress of cachexia in patients with pancreatic cancer. Nutrition; 12: S27-S30, 1996. Wynder E L; Fujita Y; Harris R E; Hirayama T & Hirayama T. Comparative epidemiology of cancer between the United States and Japan: a second look. Cancer; 67: 746-763, 1991. Ziegler R G; Hoover R L; Pike M C; Hildesheim A; Nomura A M Y; West D W; Wu-Williams A H; Kolonel L N; Horn-Ross P I; Rosenthal J F & Hyer M B. Migration patterns and breast cancer risk in Asian-American women. J Natl Cancer Inst; 85: 1819-1827, 1993. 4/10/2011 10:56