Bruna Del Vechio Koike Avaliação comportamental e neuroquímica de ratos em dessincronização forçada: possíveis implicações para um modelo animal de oscilações no humor . Tese apresentada à Universidade Federal do Rio Grande do Norte para obtenção do título de Doutora em Psicobiologia Natal 2013 1 Bruna Del Vechio Koike Avaliação comportamental e neuroquímica de ratos em dessincronização forçada: possíveis implicações para um modelo animal de oscilações no humor Tese apresentada à Universidade Federal do Rio Grande do Norte para obtenção do título de Doutora em Psicobiologia Orientador: John Fontenele Araujo Co-orientador: Horacio de la Iglesia Natal 2013 3 Catalogação da Publicação na Fonte. UFRN / Biblioteca Setorial do Centro de Biociências Koike, Bruna Del Vechio. Avaliação comportamental e neuroquímica de ratos em dessincronização forçada: possíveis implicações para um modelo animal de oscilações do humor. / Bruna Del Vechio Koike. – Natal, RN, 2013. 125.: il. Orientador: Prof. Dr. John Fontenele Araújo. Coorientador: Prof. Dr. Horácio de La Iglesia. Tese (Doutorado) – Universidade Federal do Rio Grande do Norte. Centro de Biociências. Programa de PósGraduação em Psicobiologia. 1. Transtornos afetivos – Tese. 2. Modelo animal – Tese. 3. Dessincronização forçada – Tese. I. Araújo, John Fontenele. II. La Iglesia, Horácio de. III. Universidade Federal do Rio Grande do Norte. IV. Título. RN/UF/BSE-CB CDU 616.895.4 2 Título: Avaliação comportamental e neuroquímica de ratos sob o protocolo de dessincronização forçada: possíveis implicações para um modelo animal de oscilações no humor Autora: Bruna Del Vechio Koike Data da defesa: 05 de julho de 2013 Banca Examinadora: _________________________________________________ Prof. Dr. Horacio de la Iglesia University of Washington _________________________________________________ Prof. Dr. Mario Pedrazzoli Neto Universidade de São Paulo _________________________________________________ Profa. Dra. Tatiana Lima Ferreira Universidade Federal do ABC _________________________________________________ Prof. Dra. Elaine Gaviolli Departamento de Biofísica e Farmacologia – UFRN _________________________________________________ Prof. Dr. John Fontenele Araujo (orientador) Departamento de Fisiologia – UFRN 4 RESUMO Os indivíduos com Transtorno Bipolar apresentam alterações no sistema de temporização circadiano, mostrando deslocamento de fase em diversas variáveis fisiológicas. Muitos argumentos demonstram que alterações nos ritmos circadianos podem ser parte da fisiopatologia do transtorno bipolar. Dada a necessidade de maior elucidação sobre a fisiopatologia da doença, o objetivo deste trabalho foi a validação do protocolo de dessincronização forçada como modelo animal para o transtorno bipolar. Para isso, submetemos ratos Wistar ao protocolo de dessincronização forçada que consiste num ciclo de claro/escuro simétrico de 22h. Sob este protocolo, os ratos dissociam o ritmo da atividade locomotora em dois componentes rítmicos: um sincronizado ao ciclo claro/escuro imposto de 22h; e outro componente com período maior que 24h que segue o período endógeno do animal. Como esses ritmos possuem períodos diferentes acabam coincidindo em alguns momentos, o que nomeamos de CAP (do inglês coincidence active phase) e a fase oposta, de não coincidência, chamamos de NCAP (do inglês non-concidence active phase). A hipótese é que em CAP os animais apresentassem um comportamento semelhante aos indivíduos bipolares em estado de mania e os animais em NCAP, sintomas semelhantes aos indivíduos na fase depressiva. Encontramos algumas evidências que estão descritas detalhadamente ao longo desta tese. Em resumo dos dados comportamentais temos que os animais em dessincronização forçada mostram-se mais estressados, com a atividade exploratória reduzida e avaliação de risco prejudicada. Os animais no momento CAP são menos depressivos e apresentam maior atividade locomotora concentrada na fase escura. Enquanto os animais em NCAP apresentam maior ansiedade, mas não apresentam anedonia. Através dos testes farmacológicos vimos que a dessincronização foi abolida, mas não foi possível mensurar se a atividade dos animais volta aos níveis basais. Encontramos que os animais dissociados apresentam maior número de células marcadas para o receptor serotoninérgico 5HT1A na região da amígdala, supostamente indicando que há uma maior inibição da amígdala nestes animais. Tomando os dados em conjunto, conseguimos validar parcialmente o protocolo de dessincronização forçada como modelo animal para oscilações do humor. 5 ABSTRACT Bipolar disorder has been growing in several countries. It is a disease with high mortality and has been responsible by the social isolation of the patients. Bipolar patients have alterations in circadian timing system, showing a phase shift in various physiological variables. There are several arguments demonstrating alterations in circadian rhythms may be part of the bipolar disorder pathophysiology. Given the necessity for further elucidation, the goal of this study was to validate the forced desynchronization protocol as an animal model for bipolar disorder. To do this, Wistar rats were submitted to a forced desynchronization protocol which consists in a symmetrical light dark cycle with 22h. Under this protocol, rats dissociate the locomotor activity rhythm into two components: one synchronized to the light / dark cycle with 22h, and another component with period longer than 24 hours following the animal endogenous period. These rhythms with different periods sometimes there is coincidence, which we named CAP (Coincidence Active Phase) and the opposite phase, non-coincidence, called NCAP (Non-Concidence Active Phase). The hypothesis is that in CAP animals present a mania-like behavior and animals in NCAP depressive-like behavior. We found some evidence described in detail throughout this thesis. In sum, the animals under forced desynchronization protocol were more stressed, showed an increase in stereotypic behaviors such as grooming and reduction in other behaviors such as risk assessment and vertical exploration when compared to the control group. The CAP animals showed increased locomotor activity, especially during the dark phase when compared to controls (rats under T24) and less depressive behavior in the forced swim test. The animals in NCAP showed a higher anxiety in elevated plus maze, but they don’t have ahnedonia. The animals under dissociation have more labeled 5HT1A cells at the amygdala area, which appoint that they have more amygdala inhibition. Taking these data together, we could partially validated the forced desynchronization protocol as an animal model for mood oscillations. 6 SUMÁRIO 1.INTRODUÇÃO ................................................................................................... 1.1.Transtorno Bipolar do Humor........................................................................... 1.2. Alterações dos ritmos biológicos no transtorno bipolar .................................. 1.3. Sincronização do organismo com o meio externo ......................................... 1.4. Serotonina e neurotransmissão ..................................................................... 1.5. Lítio ................................................................................................................ 1.6. Modelos experimentais .................................................................................. 1.5.1. Dessincronização forçada ........................................................................... 2.OBJETIVO GERAL ............................................................................................ 2.1. Objetivos específicos ..................................................................................... 3. MATERIAIS E MÉTODOS ................................................................................ 3.1. Para a validação aparente ............................................................................. 3.1.1. Animais ....................................................................................................... 3.1.2.Testes comportamentais .............................................................................. 3.1.2.1. Labirinto em cruz elevado ........................................................................ 3.1.2.2. Campo aberto .......................................................................................... 3.1.2.3. Teste do nado forçado ............................................................................. 3.1.2.4. Preferência claro-escuro ......................................................................... 3.1.3. Bateria de testes ......................................................................................... 3.1.4. Atividade locomotora.................................................................................... 3.1.6. Teste de consumo de glicose ..................................................................... 3.2. Teste farmacológico para Validação Preditiva............................................... 3.3. Testes Neuroquímicos para a Validação do Contruto ................................... 3.3.1. Hibridização in situ do receptor de serotonina 5HT2A ............................... 3.3.2. Imunohistoquímica para o receptor 5HT1A ................................................ 3.4. Análise estatística .......................................................................................... 4. RESULTADOS................................................................................................... 4.1. Resultados dos testes comportamentais para a validade aparente ............. 4.1.1. Atividade locomotora ................................................................................... 4.1.2. Testes comportamentais ............................................................................. 4.1.2.1. Bateria de testes ....................................................................................... 4.1.2.2. Campo aberto ........................................................................................... 4.1.2.3. Labirinto em cruz elevado ........................................................................ 4.1.2.4. Nado forçado ............................................................................................ 4.1.3. Teste de consumo de glicose ..................................................................... 4.2. Resultados para a Validade Preditiva ............................................................ 4.2.1. Teste farmacológico – lítio .......................................................................... 4.3. Testes Neuroquímicos para a Validação do Construto .................................. 4.3.1. Hibridização in situ ...................................................................................... 4.3.2. Imunihistoquímica ....................................................................................... 5. DISCUSSÃO ..................................................................................................... 6. CONCLUSÕES ................................................................................................. 7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ................................................................. ANEXOS................................................................................................................. 11 13 16 17 19 22 23 24 30 30 31 32 32 32 33 34 35 36 37 38 39 39 41 41 42 43 44 44 44 46 46 48 51 52 53 54 54 57 57 60 62 80 81 93 7 AGRADECIMENTOS Agradeço primeiramente à minha mãe, que sempre me apoiou em tudo o que eu quis fazer, sempre acreditou em mim e me incentivou a seguir os meus objetivos. Sempre foi meu teto e meu chão, meu tudo! Te amo mais que o mundo! Em segundo lugar, agradeço ao meu querido orientador John. O John me abriu muitas portas. Em seu laboratório, pude aprender a mexer com animais desde a manipulação, bioterismo e a parte dos testes comportamentais; aprendi o quanto é importante fazer colaborações e principalmente aprendi a socializar! Aprendi como curtir ser pesquisador, como curtir os orientandos e também a não me intrometer em brigas de cachorro grande. Aprendi também o que é uma “vidinha marromeno” e estou colocando em prática os seus ensinamentos! Ganhei um grande e querido amigo. Agradeço à Mariana Dias Leite, que foi meu braço direito em grande parte deste trabalho. É uma excelente aluna, muito dedicada e responsável, além de ser uma grande amiga! Obrigada Mari, você sabe o quanto foi importante nesse trabalho. Agradeço muito a todos os meus companheiros do laboratório que, com toda certeza, atrapalhei muito nestes anos ao falar o tempo todo no laboratório, os conselhos tortos e até um pouco de “revolta/anarquia”: Miguelzinho, Kathiane, Breno, Bruno, Felipe, Cleanto, Sionaldo, Valciclênio, Rafael, Rafael Pink, Marconi (que sempre me salvou), Crhistiane, Nathalinha, Everly, Gabi, Manu, Julio. Agradeço também os companheiros de outros laboratórios que sempre tiveram a maior prontidão para me ajudar como a Andrea de Sá, o Wall Hatori, Ronaldo, André Pontes, Rovena, Alícia, Aline Belísio, Professora Miriam, Professor Rodrigo do Ice, Professora Vanessa e Professora Elaine da Farmaco. Duas que se tornaram minhas irmãs e confidentes por aqui: Carol e Laís, vocês moram no meu coração! Acolheram-me numa fase bem difícil de readaptação/frustração/desmotivação que não foi fácil de passar. Aqui também incluo Kathi, que ouviu muitos desabafos e me deu sábios conselhos. Sempre pude contar com essas amigas. Obrigada meninas =) Agradeço todos os professores e funcionários do departamento que sempre foram solícitos e atenciosos no trato e ajuda. Agradeço em especial às pessoas “out of lab” que fazem parte da minha vida, que fazem parte de mim e me fazem lembrar todos os dias o quanto sou humana e o quanto essa vida é boa! Aqui estão inclusos Clarisbela, Josy, Jana, Luisa prima, Bia e em especial o meu amor, Igor, que foi toda a parte boa dessa vida out of lab nesses últimos tempos <3. 8 Lista de Figuras Figura Descrição Página Figura 1 Actogramas sob diferentes regimes de luz 24 Figura 2 Actograma e periodograma de um animal dessincronizado 26 Figura 3 Expressão alternada das subdivisões dos núcleos supraquiasmáticos 27 Figura 4 Ilustração do Labirinto em cruz elevado 32 Figura 5 Ilustração do campo aberto 33 Figura 6 Ilustração do aparato do nado forçado 34 Figura 7 Ilustração da caixa de preferência claro/escuro 35 Figura 8 Foto das condições do teste de consumo de glicose 38 Figura 9 Perfil da atividade locomotora dos diferentes grupos 44 Figura 10 Histogramas da atividade locomotora separados por grupo e por condição de luz 44 Figura 11 Distância percorrida no CA durante a bateria de testes 46 Figura 12 Resultados do deslocamento no CA dos animais dissociados 48 Figura 13 Resultados da análise do tempo despendido no centro do CA 48 Figura 14 Grooming durante o CA 49 Figura 15 Rearing durante o CA 49 Figura 16 Head down durante o LCE 50 Figura 17 Latência para o comportamento de desespero no NF 51 Figura 18 Resultados do teste de consumo de glicose 52 Figura 19 Porcentagem do consumo de glicose 52 Figura 20 Actogramas e periodogramas representativos dos animais antes e depois do tratamento com o lítio 53 Figura 21 Atividade locomotora dos animais antes e durante o tratamento com lítio 54 Figura 22 Imagens da hibridização in situ 56 Figura 23 Expressão de RNAm do receptor 5HT2A 56 Figura 24 Foto representativa das células marcadas para o receptor 5HT1A. 58 9 Lista de Tabelas Tabela Descrição Página Tabela 1 Grupos experimentais da bateria de testes 36 Tabela 2 Resultados do LCE 50 Tabela 3 Atividade dos animais antes e durante o tratamento com lítio 54 Tabela 4 Resumo dos achados comportamentais dos animais dissociados em comparação ao grupo controle. 58 Tabela 5 Resultados da hibridização in situ para o receptor 5HT2A no grupo controle 59 Tabela 6 NODs da hibridização in situ para o receptor 5HT2A nos animais dissociados 60 Tabela 7 Contagem de células 5HT1A positivas 61 10 Lista de abreviações ACTH Hormônio adrenocorticotrófico CA Campo Aberto CAP Coincidence Activity Phase CE Ciclo claro/escuro CPF Córtex pré-frontal Dm Dorsomedial EEG Eletroencefalograma GSK3 Glycogen Synthase Kinase HPA Hipotálamo – Hipófise - Adrenal LCE Labirinto em Cruz Elevado NCAP Non-Coincidence Activity Phase NF Nado Forçado NOD Normalized Optical Density NSQs Núcleos supraquiasmáticos PCE Caixa de Preferência ao Claro ou Escuro REM Rapid Eye Movement T Período circadiano TB Transtorno Bipolar vl Ventrolateral 11 1. INTRODUÇÃO A agitada vida moderna, com mais recursos à disposição e mais responsabilidades a cumprir, tornam o dia de 24h curto para a realização de todas as tarefas. A duração do sono vem sendo gradativamente reduzida durante os dias da semana ao longo dos anos (Vetter e cols, 2012), aumentando a privação de sono entre os indivíduos, e isso certamente ocorre devido às facilidades tecnológicas e ao grande número de informações cotidianas no século XXI (Louzada e Menna-Barreto, 2003) aliadas a maior quantidade de compromissos sociais como o horário de trabalho, de estudos, cursos, prática de exercícios físicos ou mesmo o tempo dispensado para ficar com a família ou com os amigos. Essa privação de sono crônica tem consequências nos ritmos biológicos dos indivíduos, tema que abordaremos ao longo desta tese. Cada vez mais a exigência em torno do desempenho pessoal torna-se exaustiva. Como mecanismos de fuga, os indivíduos podem desenvolver diferentes patologias, causando alterações no humor, o que pode se traduzir no jeito de pensar, sentir e em outros comportamentos do indivíduo. Em grandes cidades, como a grande São Paulo, cerca de 30% dos habitantes apresentam transtornos mentais. Entre estes, a prevalência dos transtornos de ansiedade aparece em primeiro lugar com cerca de 20%, seguido dos transtornos de humor que afetam 11% dos indivíduos (Andrade e cols., 2012). Os transtornos do humor afastam os indivíduos do trabalho, alterando uma das funções humanas fundamentais para o bem estar social do indivíduo, pois o trabalho é uma reafirmação de nossa identidade e status social, uma vez que proporciona satisfação pessoal e estabelece nossa rotina social diária. Além disso, o trabalho está ligado à demanda financeira individual e reflete o status funcional do indivíduo. O grau em que a doença interfere com a atividade do mercado laboral e a produtividade individual constitui um componente importante da carga da doença (Frank e Koss, 2005). 12 Os transtornos do humor podem ser classificados como unipolares ou bipolares e afetam atualmente cerca de 340 milhões de pessoas em todo o mundo (ABRATA, 2009). A diferença básica entre eles é que transtornos unipolares apresentam predominantemente sintomas depressivos e os bipolares apresentam sintomas maníacos intercalados com os depressivos (Mitchell e cols., 1992). O transtorno unipolar, também denominado depressão, é a principal doença com efeitos sociais e na saúde. Impossibilita os indivíduos de prosseguirem naturalmente suas atividades laborais e pessoais (WHO, 2004). O transtorno bipolar (TB) corresponde a um dos mais prevalentes e potencialmente graves transtornos psiquiátricos. Estima-se que a prevalência mundial seja de aproximadamente 29,5 milhões de pessoas, cerca de 513 pessoas afetadas a cada 100.000. É considerada uma das doenças de maior mortalidade e morbidade (WHO, 2004). Indivíduos acometidos têm maiores taxas de desemprego e estão mais sujeitos a utilizarem serviços médicos e serem hospitalizados (Lima e cols., 2003). Por este motivo, os custos associados ao TB são substanciais. Os pacientes utilizam os serviços de saúde incluindo hospitalização e medicação, além de apresentarem comorbidade em 70% dos casos tanto com outras doenças mentais – como transtornos de ansiedade ou uso de substâncias de abuso – quanto com doenças físicas – como absentismo, desemprego, comportamento sexual de risco e, em casos extremos, o suicídio (Merikangas e cols., 2007). Somando-se os custos diretos e indiretos em consequência desta patologia foi estimado um valor de US$252.212,00 por pessoa (durante a vida) nos EUA, gerando um custo total para o país de aproximadamente 24 bilhões de dólares, sendo 44% somente para custos indiretos (Miret e cols., 2013). Na Inglaterra, uma estimativa recente do custo com pacientes bipolares foi de 1,6 bilhões de libras. Com a inclusão dos custos empregatícios, o total aumenta para 5,2 bilhões de libras! (McCrone e cols., 2010). 13 1.1. Transtorno Bipolar do Humor O transtorno bipolar ocupa o quinto lugar entre as principais causas de incapacidade em todo o mundo em indivíduos jovens, tanto por morte prematura quanto por inabilidade, e afeta cerca de 1-6% da população brasileira (ABRATA, 2009). Um indivíduo com transtorno bipolar do humor pode apresentar grandes oscilações no seu estado de humor o que é impactante na vida do paciente, de sua família e da sociedade, causando muitas vezes prejuízos irreparáveis em vários setores da vida do indivíduo, interferindo no trabalho, nas relações afetivas e familiares. O TB é uma doença que se caracteriza pela alternância de humor: ora ocorrem episódios de mania (euforia), ora de depressão, com períodos intercalados de normalidade (Moreno e Moreno, 2005). A fase de mania é caracterizada por euforia exacerbada, aumento do discurso e da velocidade da fala (tagarelice), pensamentos desconexos ou muito rápidos, atividade mental e física acentuada, aumento da energia, redução da necessidade de sono, irritabilidade, acuidade perceptiva, paranóia, redução do senso crítico, ideias de grandeza, aumento do interesse sexual e impulsividade. Pacientes nessa fase apresentam humor efervescente e exaltado, mas com irritabilidade subjacente (Goodwin e Jamison, 2007). Por sua vez, a fase de depressão possui características praticamente opostas à fase de mania, com o abrandamento e redução da maioria dos aspectos emocionais e comportamentais, como a fala, energia, sexualidade e a habilidade de experimentar prazeres (anedonia). Entretanto, a severidade dos sintomas pode variar bastante desde a simples redução da atividade física e mental, com leve distorção na cognição e na percepção, até estados profundos de depressão, desilusão, pensamentos suicidas, alucinação e obscurecimento da consciência. O humor na maioria dos pacientes nessa fase mostra-se pessimista, desolador e desesperado (Goodwin e Jamison, 2007). 14 1.2. Alterações dos Ritmos Biológicos no Transtorno Bipolar Muitos pesquisadores sugerem que os episódios de mania e/ou depressão emergem como consequências da ruptura dos ritmos circadianos nos indivíduos suscetíveis. Frequentemente são observadas nos pacientes alterações de comportamento relacionadas aos ritmos biológicos, especialmente a partir de eventos que perturbam os zeitgebers sociais, ou seja, fatos que marcam época, como a morte dos pais, separação, demissão ou início de trabalho em período integral (Ehlers e cols., 1988; Malkoff-Schwartz e cols., 2000; Grandin e cols., 2006). Geralmente os indivíduos apresentam os sintomas dos transtornos de humor mais acentuados durante as primeiras horas do dia, o que vai claramente melhorando ao entardecer, essa flutuação na qualidade do humor faz parte dos sintomas encontrados nos indivíduos depressivos. Além disso, essas flutuações são acompanhadas em paralelo por alterações na psicomotricidade, na capacidade de atenção e na ansiedade que também apresentam a mesma flutuação e ocorre uma melhora ao longo do dia (Poterfield e cols., 1997; Rusting e Larsen, 1998). Para a maioria dos pacientes ocorrem mudanças regulares e repetitivas na intensidade dos sintomas depressivos ao longo do dia, geralmente apresentando uma piora pela manhã (Wirz-Justice, 2006). Em um estudo realizado na Nova Zelândia, cerca de 30% dos pacientes de uma instituição apresenta padrões opostos na flutuação do humor. Uma observação relatada para estes pacientes foi a fraca resposta aos antidepressivos serotoninérgicos, altas taxas de triptofano comparados aos indivíduos saudáveis e inclusive uma evidência genética: maior frequência do alelo curto do polimorfismo de repetição em tandem da região promotora do transportador de serotonina. Com isso, os índices da razão triptofano/metabólitos de serotonina aumentam, apontando alterações no sistema sertoninérgico e sugerindo sua influência na variação diurna do humor (Joyce e cols., 2005). Além da flutuação do humor, alterações em diversos parâmetros rítmicos têm sido observadas nos pacientes com transtorno de humor. A desregulação de apenas um dos ritmos como o ciclo sono/vigília pode induzir episódios de mania ou de 15 depressão e, corroborando com este dado, a remissão das crises geralmente acompanham a regularização das anormalidades circadianas. A manipulação do ciclo sono/vigília tem sido usada com eficácia no tratamento da depressão há mais de 30 anos (Pflug e Tolle, 1971). Uma única noite de privação de sono pode restaurar a eutimia em aproximadamente 60% dos pacientes depressivos (WirzJustice e van der Hoofdakker, 1999). Mais de 80% dos pacientes depressivos têm queixas da má qualidade do sono, sejam elas na dificuldade de iniciar o sono, mantê-lo ou mesmo o despertar precoce (Maurizi, 2000). Alterações na arquitetura do sono também são observadas no TB, como a redução do sono de ondas lentas, redução da duração do sono REM, aumento de sua densidade e o encurtamento de sua latência (Reynolds e Kupler, 1987; Stefos e cols., 1998; Thase, 2000). Essas alterações no sono REM podem ser interpretadas como resultado do avanço de fase do sistema de temporização circadiano e gera uma relação de fase anormal entre vários outros componentes rítmicos (Gruber e cols., 2011; Wehr e cols., 1979). Em outras palavras, sabemos que deve haver sintonia entre os ritmos biológicos que devem ter um ângulo de fase constante, estável, ou seja, as fases dos ritmos devem apresentar uma distância temporal constante. Como um exemplo, o crepúsculo reduz a incidência de luz sobre os olhos e somente depois que a fase de escuro se inicia é que ocorre a fase de início da secreção de melatonina, há uma relação entre essas fases. Quando dizemos que houve um avanço de fase, significa que uma das fases se adiantou em relação à outra. Quanto mais estável essa relação de fase, melhor os organismos podem se adaptar, podendo antecipar atividades ou recursos antes mesmo que eles sejam necessário, poupando energia. Algumas variáveis metabólicas rítmicas apresentam mudança na relação de fase após o início da patologia. No caso do o eixo HPA (hipotálamo – hipófise – adrenal) se encontra hiperativo na depressão, pois a hipercortisolemia está fortemente associada à depressão e, em especial, aos indivíduos que apresentam os subtipos melancólicos e psicóticos. Na hipercortisolemia, a secreção do cortisol é irregular e perde a relação de fase com o ritmo de secreção do ACTH (hormônio 16 adrenocorticotrófico), é observado um desacoplamento entre a temporalidade de secreção desses hormônios. Essa hipercortisolemia pode ser devido à hipertrofia do córtex adrenal ou à secreção anormal de ACTH, ou à alta sensibilidade do córtex adrenal na resposta ao ACTH. No geral, há um aumento na secreção de ACTH nos pacientes independentemente do status de hipercortisolemia, onde sua meia-vida é reduzida (Carroll e cols., 2007). Os ritmos do ACTH e do cortisol tendem a ser mais lentos na depressão e com a acrofase atrasada nos adultos (Souêtre e cols., 1989). Outras variáveis fisiológicas que se apresentam em fase avançada nos indivíduos depressivos são a temperatura corporal, secreção de cortisol e de melatonina, alguns neurotransmissores (como a norepinefrina e seu metabólito 4hidroxifenilglicol), bem como a alteração de amplitude das curvas secretórias. Entretanto, o ritmo de outras variáveis permanece com a relação de fase estável como a secreção de prolactina e hormônio do crescimento (Koenigsberg e cols., 2004; Monteleone e Maj, 2008). Mesmo com o avanço de fase em grande parte dos ritmos, indivíduos bipolares eutímicos podem apresentar atraso de fase na curva de secreção de melatonina (Nunrberger e cols., 2000), talvez seja por este motivo que os indivíduos bipolares apresentam uma preferência diurna mais vespertina (Wood e cols., 2009). A pesquisa sobre alterações nos ritmos circadianos no transtorno de humor surgiu nos anos 60, com as primeiras evidências de alterações de ritmo na secreção de noradrenalina e metabólitos coletados em fluidos corporais de pacientes depressivos (Schildkraut, 1965). Outra evidência bastante marcante da relação entre os transtornos de humor e os ritmos biológicos é que a ação das drogas antidepressivas e estabilizadoras do humor afeta a ritmicidade do relógio biológico. Além de causar melhoria nos sintomas, restauram o ritmo circadiano em humanos e animais (Monteleone e Maj, 2008). O que ainda não se sabe é se as alterações observadas nos ritmos biológicos desses pacientes são resultantes do rompimento dos ritmos sociais (zeitgebers externos) ou se têm origem no componente interno dos indivíduos, como por exemplo, vulnerabilidade cognitiva, características da personalidade e anormalidades no marcapasso circadiano (Grandin e cols., 2006). 17 Diversos estudos genéticos tem sugerido que determinados genes relógio – genes que fazem parte da circuitaria molecular do marcapasso circadiano – são ajustados conforme a manifestação dos transtornos do humor. Temos alguns exemplos na literatura, como o polimorfismo T3111C do gene Clock cujo alelo C em homozigose está relacionado com a alta recorrência de episódios nos bipolares (Benedetti e cols., 2003); ao mesmo tempo em que camundongos mutantes para o gene Clock estão sendo considerados animais modelo para mania (Roybal e cols., 2007). Outros genes relógio como Bmal1, TIM e PER3 também foram associados com o transtorno bipolar (Kato, 2007). Uma grande dúvida que permanece é como o rompimento da ritmicidade circadiana está associado aos transtornos de humor. Sabe-se que os pacientes bipolares apresentam maior desorganização dos ritmos circadianos mesmo quando eutímicos, com ou sem relação com distúrbios de sono, assim demonstrando que esses pacientes têm ciclo circadiano diferente independentemente de distúrbios puros de sono (Jones e cols., 2005). Essa desorganização no sistema de temporização circadiano não está associada com o atual estado de humor, por outro lado, a terapia de regularização dos ritmos sociais faz melhorar o humor dos pacientes bipolares (Frank e cols., 2000). 1.3. Sincronização do organismo com o meio externo Para o sistema de temporização dos mamíferos, uma pista ambiental crucial para a sincronização com o ambiente é o ciclo claro/escuro (CE) que é capaz de sincronizar praticamente todos seus ritmos circadianos (Marques e Menna-Barreto, 2005). Sendo a retina a única estrutura sensível ao sinal luminoso em mamíferos, a informação do ciclo CE ambiental é captada pelas células ganglionares da retina. Essas informações sobre o nível de luminosidade do ambiente são transmitidas através do trato retino-hipotalâmico diretamente aos núcleos supraquiasmáticos do hipotálamo (NSQs). Considerados osciladores centrais, os NSQs são as principais estruturas envolvidas na sincronização dos ritmos biológicos dos mamíferos com o 18 ciclo claro/escuro (Schibler e cols., 2005). Atuam como osciladores centrais do organismo, que por sua vez sincronizam os osciladores periféricos. Portanto, alterações na ritmicidade circadiana podem ser consequências do mau funcionamento (ou não sincronização) dos NSQs, gerando o posicionamento anormal das fases em vários dos ritmos biológicos (Pandi-Perumal e cols. 2009). A dessincronização dos núcleos supraquiasmáticos pode explicar muitos dos aspectos clínicos do transtorno de humor recorrentes (incluindo sazonalidade e tipo de episódio), por meio de efeitos secundários sobre sistemas de neurotransmissores. A condição de ritmo em livre-curso e ritmos não sincronizados ao ciclo claro/escuro de 24h pode dessincronizar os outros ritmos circadianos, provocando uma desordem temporal interna e afetando de forma adversa o humor (Wehr e cols., 1983). Os NSQs apresentam diversas projeções diretas e indiretas. Uma das projeções indiretas dos NSQs acaba por estimular a glândula pineal que produz um importante hormônio do sistema de temporização circadiano que é a melatonina. A melatonina é um hormônio sinalizador da noite para o organismo, uma vez que é produzida somente nesta fase. Dessa forma, regula as atividades rítmicas circadianas nos mamíferos. A redução da amplitude de sua curva de secreção, bem como o avanço ou atraso em sua fase, pode ser parcialmente responsável pela má qualidade do sono observada nos pacientes com TB (Pandi-Perumal e cols., 2009). A melatonina é o neurormônio com maior influência na atividade elétrica nos neurônios do NSQ, pois é capaz de inibir o padrão de disparos desses neurônios, provavelmente através da ativação de mecanismos GABAérgicos (Golombek e cols., 1996) e da ativação de receptores MT1 e MT2 presentes em larga escala nos NSQs (Dubocovich e Markowska, 2005). Além da melatonina, a serotonina também tem influência nas alterações de sono. O sistema serotoninérgico inibe neurônios colinérgicos da ponte, diminuindo a latência do sono REM e modulando os neurônios do tálamo e do córtex pré-frontal, induzindo a fase de sono de ondas lentas (Thase, 2000). Além do seu papel no sono, há uma densa projeção serotoninérgica dos núcleos da rafe que inerva os 19 NSQs, bem como um grande número de receptores serotoninérgicos na região ventrolateral dos NSQs. A estimulação elétrica da rafe aumenta a liberação de serotonina no NSQ e provoca avanços e atrasos de fase, sugerindo que a serotonina deve ter algum papel na sincronização não fótica, além de modular a atividade no trato retino hipotalâmico já que agonistas serotoninérgicos podem atenuar ou aumentar a resposta a estímulos fóticos (Prosser, 2003). Amplamente distribuída pelo sistema nervoso central, a serotonina parece estar associada a muitos comportamentos como a inibição de comportamentos agressivos, a regulação de ritmos circadianos e do humor, ao sono, à atividade sexual, ao apetite, às funções neuroendócrinas, a regulação da temperatura corporal, sensibilidade à dor, atividade motora, funções cognitivas e à facilitação de comportamentos motores apetitivos (fome e sexo) (Thase, 2000; Ballone, 2005). 1.4. Serotonina e neurotransmissão No transtorno bipolar, a serotonina parece ter um papel fundamental na fisiopatologia da doença, uma vez que os níveis deste neurotransmissor, bem como seus metabólitos (5-HIAA ou ácido 5-hidroxindolacético), aparecem alterados no cérebro (estudos pós-morte) e no líquor dos pacientes com TB, principalmente na fase depressiva, onde a concentração está reduzida. Na mania, os resultados são menos consistentes, pois há divergência entre os estudos (para revisão, ver Mahmood e Silverstone, 2001). Como a serotonina é liberada difusamente em quase todo o encéfalo, o conhecimento dos tipos de receptores e sua exata localização são fundamentais para o entendimento da neurotransmissão serotoninérgica. Como exemplo, podemos citar o receptor 5HT1A que, frente a uma grande quantidade de serotonina na fenda sináptica, pode ter diferentes consequências: quando localizado na pré-sinapse de neurônios serotoninérgicos ocorre redução na liberação de serotonina como um sinal de feedback negativo; quando na pós-sinapse de neurônios corticais ocorre supra regulação (up regulation) dos receptores 20 serotoninérgicos (Akimova e cols., 2009), além de promover ação inibitória visto que este receptor é ligado à proteína Gi. Estudos que avaliaram a influência do sistema serotoninérgico na função neuroendócrina, principalmente em relação ao hormônio do crescimento, observaram uma tendência a menor atividade pré-sináptica e maior atividade póssinápica serotoninérgica nos pacientes em mania, sugerindo uma hipoatividade serotoninérgica no hipotálamo (Newman e cols., 1998; Shiah e Yatham, 2000). A hipoatividade serotoninérgica foi relatada por Mahmood e Silverstone (2001) também para pacientes com depressão bipolar e eutímicos. Além disso, os medicamentos estabilizadores de humor possuem a capacidade de aumentar a atividade serotoninérgica na mania (Shiah e Yatham, 2000). Outras evidências são os tratamentos farmacológicos da fase depressiva que, geralmente, envolvem drogas que aumentam significativamente a quantidade de serotonina na fenda sináptica (os inibidores seletivos de recaptação de serotonina), bem como os antipsicóticos atípicos, que possuem a capacidade de inibir a recaptação de serotonina e de bloquear receptores 5HT2 A e C, enquanto ativam receptor 5HT1A (Goodwin e Jamison, 2007). Esse fato corrobora com a teoria monoaminérgica da depressão, que foi a primeira teoria de importância sobre a etiologia da doença, a qual postulou que esta era devida à deficiência de neurotransmissores monoaminérgicos, principalmente noradrenalina (NA) e serotonina (5-HT). As evidências baseiam-se na ação das drogas que depletam esses neurotransmissores e podem induzir depressão, além da sugestão de supra regulação (up regulation) anormal dos receptores serotoninérgicos pós-sinápticos. Por outro lado, os antidepressivos com ações farmacológicas que potencializam esses neurotransmissores, aumentam sua disponibilidade na fenda sináptica, seja por infra regulação (down regulation) nos receptores pós-sinápticos ou pelo bloqueio das bombas de recaptação, ou até pela inibição da enzima degradadora de monoaminas (MAO – monoamina oxidase) e, como consequência, o tratamento resulta na melhoria geral dos sintomas (Stahl, 2006). Porém, essa teoria sofreu diversas críticas, pois não explicava vários fatos, como a ausência de resposta aos 21 antidepressivos em alguns pacientes ou a ação de drogas que também aumentam a atividade monoaminérgica (como anfetamina e cocaína) não serem clinicamente efetivas, além da demora na resposta terapêutica com a administração dos antidepressivos, já que a mudança nos níveis de monoaminas na sinapse ocorre em algumas horas e a resposta terapêutica requer a administração contínua por semanas (Baldessarini, 1989). Uma outra hipótese relevante à ciclicidade da doença é o paradigma de kindling. Postulada por Post e cols. (1992), essa teoria desenvolve-se sobre o achado fisiológico de que estímulos elétricos ou químicos intermitentes, subliminares, produzem despolarização cada vez mais forte no sistema límbico, a qual pode levar a um foco convulsivo permanente independente. Embora uma ligação direta entre fenômeno de kindling e a recorrência clínica não possa ser estabelecida com facilidade, a hipótese possui a vantagem de explicar inúmeros achados clínicos em uma teoria como: os episódios iniciais de TB tendem a ser precipitados por estressores ambientais, enquanto episódios posteriores tendem a ser desencadeados, com menos frequência, por fatores psicossociais; a gravidade dos episódios não tratados tende a piorar com o tempo; o intervalo entre os episódios de alteração do humor diminuem com o tempo; e eventos estressantes na infância podem predispor o indivíduo a transtornos do humor na idade adulta (Kendler e cols., 2000). Para o transtorno bipolar, o tratamento com lítio é o preferido e o mais frequente entre os pacientes bipolares. O lítio não exerce ação direta sobre a neurotransmissão serotoninérgica, nem aumenta sua concentração, mas é capaz de aumentar a captação de serotonina (Carli e cols., 1997). Quando o tratamento é interrompido, os sintomas da doença retornam rapidamente, podendo sugerir o importante papel da alteração na captação de serotonina na fisiopatologia e sua normalização no tratamento do transtorno bipolar (Carli e cols., 1997). 22 1.5. Lítio O lítio sabidamente age na GSK3 (Glycogen Synthase Kinase-3), que é uma proteína quinase altamente conservada e possui duas formas de apresentação GSK3α e GSK3β. Além de inibir diretamente a ação da GSK3, o lítio aumenta a fosforilação inibitória da serina da GSK3 (De Sarno e cols, 2002), assim como outros neuromoduladores como antidepressivos, antipsicóticos e estabilizadores de humor que também aumentam fosforilação da GSK3 e a inibem. A GSK3 encontra-se reduzida tanto durante a hiperatividade quanto no estado semelhante à depressão em camundongos, bem como em indivíduos bipolares sintomáticos. Ou seja, em roedores a fosforilação insuficiente da serina da GSK3 pode desempenhar um papel crítico em distúrbios comportamentais, como ocorre no transtorno bipolar (Polter e cols, 2010). A GSK3 no sistema nervoso central é regulada pela serotonina, via receptores 5HT1 e 5HT2, e age como um modulador intermediário no sistema da neurotransmissão serotoninérgica. A presença da serotonina no cérebro resulta na rápida fosforilação da serina N-terminal da GSK3 e a inativação da sua atividade constitutiva (Polter e Li, 2011). Em somatória, podemos acrescentar que o período endógeno de humanos (Johnsson e cols., 1983) e ratos (Kripke e Wyborney, 1980) mostram-se alongados quando estão em tratamento com o lítio, o que corrobora com os achados encontrados no ritmo de seus neurotransmissores que apresentam atraso de fase na secreção (Kafka e cols., 1982; McEachron e cols., 1982). Alterações rítmicas também são observadas quanto à fase, amplitude e a responsividade à luz (para revisão ver Klemfuss, 1992). Essas alterações podem ser devido a ação da GSK3 na regulação e/ou estabilização das proteínas do relógio molecular circadiano como PER2, CRY2, CLOCK, REV-ERBα e BMAL1 (Harada e cols, 2005; Yin e cols, 2006; Sahar e cols, 2010; Spengler e cols, 2009). 23 1.6. Modelos Experimentais A neurociência se depara com uma grande dificuldade em estudar o cérebro humano in vivo. Mesmo com o expoente avanço das técnicas não invasivas, ainda restam inúmeras questões em aberto quanto à fisiologia e à biologia molecular do cérebro humano. Um meio útil pelo qual a ciência vem se desenvolvendo é através de modelos animais. Atualmente há muitos modelos e protocolos que tentam mimetizar os transtornos mentais em animais de experimentação. Entretanto, apresentam certas limitações. A começar pela forma através da qual é feita o diagnóstico. O diagnóstico é fenomenológico, ou seja, baseado em sinais, sintomas e no curso da doença descritos no manual DSM-V (Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders – fifth edition (APA, 2013)). Muitos dos sintomas utilizados para o diagnóstico da doença em humanos não são capazes de serem avaliados em modelos animais (como culpa, tristeza, alucinações, ilusões), enquanto outros podem ser somente inferidos. Apesar da existência de controvérsia entre os dados, alguns modelos foram bem sucedidos em descobrir um pouco mais sobre a doença, como os modelos de depressão (estresse moderado crônico, modelo de desespero aprendido, modelos de separação parental) e os modelos que tentam mimetizar o estado de mania (hiperatividade induzida por psicoestimulantes, privação de sono, alteração do ritmo circadiano, kindling). Entretanto, esses modelos apresentam apenas um dos estados de humor. A característica de alternar períodos de depressão, mania e eutimia de forma recorrente e cíclica, torna bastante difícil o desenvolvimento de um modelo ideal (Gavioli e cols., 2009). Para a validação de um modelo animal usado para estudar patologias humanas é necessário que sejam cumpridos ao menos três critérios: validade aparente, validade do construto e validade preditiva. A validade aparente, ou de face, baseia-se nas semelhanças entre os sinais e sintomas observados em humanos que sofrem da patologia em questão com o fenótipo apresentado pelos 24 animais submetidos ao modelo sugerido. A validade do construto é baseada na etiologia, nas bases biológicas e fatores desencadeadores da doença. Por fim, a validade preditiva, ou farmacológica, é contemplada quando os fármacos utilizados em humanos são capazes de reverter os sinais e sintomas da doença observados nos animais experimentais (Gavioli e cols., 2009). No presente trabalho pretendemos contemplar os três critérios de validação. 1.6.1. Dessincronização forçada O período circadiano (T) tanto dos humanos (Czeisler e cols.,1999), quanto dos ratos é em média pouco maior de 24h e todos os dias seus ritmos biológicos são arrastados através de pistas ambientais (zeitgebers). Nos mamíferos, a principal pista ambiental é o ciclo CE. O sistema responsável pela geração da ritmicidade circadiana (sistema de temporização circadiano) consiste numa gama de osciladores com diferentes frequências que devem estar em sintonia para um funcionamento ótimo. O grau de acoplamento estre os osciladores pode induzir diferentes padrões rítmicos: quando o grau de acoplamento é alto, os osciladores apresentam um ângulo de fase estável e geram um único ritmo; se os osciladores estiverem desacoplados, outros padrões podem ser gerados (Vilaplana e cols., 1997). O acoplamento dos osciladores pode ser um processo gradual, como foi demonstrado por Campuzano e colaboradores (1998): quando o ritmo do CE é próximo ao período endógeno (por exemplo, de 23,5h), o sistema já é capaz de sincronizar completamente com o ciclo externo e apresenta um único ritmo de atividade locomotora. Isso significa que a região ventrolateral (vl) do NSQ, que recebe o estímulo luminoso, é capaz de arrastar o ritmo da região dorsomedial (dm) do NSQ e ajustá-lo ao CE externo. Entretanto, há o limite mínimo de sincronização à luz, onde os animais não conseguem mais sincronizar-se completamente ao ciclo de claro/escuro imposto. A região vl segue o ritmo imposto pelo CE ambiental, já que recebe projeções diretas da retina, enquanto a região dm dos NSQs não consegue 25 sincronizar-se a ciclos menores do que 23,5h e como consequência, os osciladores ficam parcialmente desacoplados, o que significa que cada região do oscilador apresenta-se em uma fase diferente, mandando sinais diferentes para o resto do organismo no lugar de sinalizar uma única fase. Com isso, a atividade locomotora dos animais acaba seguindo tanto a sinalização proveniente da região vl do NSQ como também responde a sinalização proveniente da região dm do NSQ. O comportamento final é a dissociação do ritmo de atividade locomotora, na qual um único animal apresenta dois componentes rítmicos: um deles sinalizado pela região vl e sincronizado ao ciclo CE externo; e outro componente sinalizado pela região dm, não sincronizado ao CE, com período maior que 24h semelhante ao livre curso (Figura 1). Figura 1. Actogramas mostrando o ritmo de atividade dos animais sobre diferentes regimes de luz com períodos simétricos de 21h; 21,5h; 22h; 23h e 23,5h (Campuzano e cols., 1998). Cambras e colaboradores (2004) realizaram um trabalho no qual os animais foram expostos a diferentes fotofases variando o período entre 22 ou 23h. Sob estes protocolos, os ratos apresentaram uma gama de padrões de atividade locomotora, desde o arrastamento total do ritmo (ajustado ao ciclo claro/escuro) até o ritmo em livre curso (expressão do componente endógeno). Os animais submetidos ao 26 período de 23h e longas fotofases ficaram sincronizados ao ciclo claro/escuro externo, enquanto os animais submetidos ao período de 22h e fotofases curtas apresentaram o ritmo da atividade locomotora em livre curso (maior que 24h). Os autores sugeriram que o processo de sincronização do sistema de temporização circadiano pode ser gradualmente distribuído entre o componente circadiano dependente de luz e o componente não sincronizado à luz que apresenta o período semelhante ao ritmo endógeno do animal, indicando que populações distintas de osciladores podem estar em diferentes níveis de (des)acoplamento. A fim de investigar o desacoplamento dos osciladores centrais (NSQs) o mesmo grupo (de la Iglesia e cols., 2004) buscou um marcador evidente da ritmicidade circadiana e investigou a expressão de RNAm dos genes relógio Per1 e Bmal1 que se expressam alternadamente de dia e de noite, respectivamente. Como dito anteriormente, sob o protocolo de dessincronização forçada (T22, 11h claro e 11h escuro) dois componentes do ritmo de atividade locomotora são expressos simultaneamente no animal (T22 e T>24). Entretanto, como possuem períodos diferentes, esses ritmos acabam coincidindo em certos momentos e com isso podemos separar o comportamento de um mesmo animal em quatro momentos distintos (Figura 2): A – quando há coincidência da fase de baixa atividade locomotora dos dois componentes rítmicos; ambos se encontram na fase dia, coincidindo o dia subjetivo com o dia objetivo (claro); B – quando há coincidência da fase de alta atividade locomotora em ambos os componentes rítmicos, coincidindo então a noite subjetiva com a noite objetiva (escuro). Neste trabalho chamaremos esta fase de CAP (do inglês: coincidence active phase); C – representa a fase em que os dois componentes rítmicos estão em não coincidência, o animal apresenta atividade locomotora correspondente à noite subjetiva, mas encontra-se na fase clara, ou seja, no dia objetivo; 27 C A B D Figura 2. Actograma de um rato mantido em um ciclo claro/escuro de 22h (11h claro, 11h escuro) e plotado duplamente, onde cada linha representa dois dias: o dia n seguido do dia n+1 horizontalmente, na segunda linha estão representados os dias n+1 e n+2, e assim sucessivamente. Dois componentes rítmicos da atividade locomotora estão sendo expressos simultaneamente com diferentes períodos: um deles está sincronizado com o ciclo claro/escuro (T22, em cinza abaixo da barra preta) e outro em livre curso, não sincronizado com o ciclo CE, que apresenta um período maior que 24h (T>24) apontado pela linha em vermelho. A, B, C e D indicam as diferentes fases as quais os animais estavam no momento (ver texto). 28 D – o inverso de C, o animal apresenta atividade locomotora correspondente ao dia subjetivo (repouso), mas está na noite objetiva, ou seja, na fase escura. Neste trabalho chamaremos esta fase de NCAP (do inglês: non-coincidence active phase). Ao avaliar a expressão dos genes da circuitaria molecular circadiana nos NSQs nessas diferentes fases, os autores observaram que as regiões dm e vl dos NSQs realmente se desacoplam, expressando-se alternadamente. O RNAm do gene Per1, que é encontrado em altas concentrações durante a fase clara (dia objetivo), quando sincronizado com a pista externa, é expresso em todo o corpo dos NSQs (Figura 3A) e, quando a fase escura (noite objetiva) está sincronizada com a atividade do animal (noite subjetiva), não há expressão de RNAm nos NSQs (Figura 3B). Portanto, em momentos de coincidência (Figura 2, momentos A e B), os NSQs comportam-se igualmente aos dos animais em T24: as duas regiões dos NSQs estão na mesma fase e expressam Per1 durante o dia e não o expressam durante a noite. Todavia, quando não há coincidência entre os dois componentes (Figura 2, momentos C e D), a expressão de RNAm do gene Per1 na região vl segue conforme a sinalização do ciclo CE, ou seja, quando o animal apresenta atividade correspondente a noite subjetiva, o que é contraditório, uma vez que o animal está no claro, no dia objetivo (Figura 3C) e mais expresso na região dorsomedial quando expressa o dia subjetivo na noite objetiva (Figura 3D). O contrário foi observado para RNAm do gene Bmal1, que é expresso em antifase ao gene Per1. Assim, sugere-se que as regiões dos NSQs se desacoplam quando não há coincidência das fases de dia subjetivo e objetivo, deixando claro que a região ventrolateral segue o padrão rítmico sincronizada às pistas ambientais e a expressão dos clock genes na região dorsomedial reflete o ritmo endógeno do animal (de la Iglesia e cols., 2004). Esse fato sugere que o desacoplamento de subpopulações anatomicamente identificáveis de neurônios oscilantes nos NSQs por si só podem levar a dessincronização de diferentes processos fisiológicos e circadianos, semelhante ao observado em humanos. Portanto, os ritmos circadianos podem ser desacoplados de maneira previsível e estável nesse modelo de dessincronização forçada em ratos. Nessas circunstâncias, a regulação da temperatura corporal circadiana e do sono 29 REM demonstra as mesmas propriedades em humanos em dessincronização forçada (Cambras e cols., 2007). Figura 3. Secção coronal de cérebro mostrando a expressão dos genes Per1 e Bmal1 nos NSQs de ratos sacrificados nos momentos A, B, C e D descritos na figura 1 (de la Iglesia e cols., 2004). Estudos do nosso laboratório (Neto, 2006) mostraram que ratos submetidos à dessincronização forçada apresentam um comportamento semelhante à mania quando testados durante a fase de coincidência da noite subjetiva com a noite objetiva. Uma avaliação comportamental durante a fase de não coincidência sugeriu um padrão comportamental semelhante à depressão (Araujo, dados não publicados, Gonzalez e de la Iglesia 2008). Adicionalmente, uma análise do EEG mostrou que ratos na fase de mania/coincidência apresentam um padrão de hipossonia em oposição à fase de depressão/não coincidência onde é observado um padrão de hipersonia (Gonzalez e de la Iglesia 2008). Dessa forma, listo a seguir os objetivos do meu doutorado. 30 2. OBJETIVO GERAL Avaliar se o protocolo de dessincronização forçada atende os critérios de validação para um modelo animal do transtorno bipolar. 2.1. Objetivos específicos Validação aparente (ou de face) através dos testes comportamentais: campo aberto; labirinto em cruz elevado; nado forçado e teste de consumo de glicose dos animais dessincronizados durante a fase de coincidência e não coincidência; Validação preditiva (ou farmacológica) com administração de lítio a fim de verificar se os parâmetros comportamentais alterados são revertidos; Validação do construto (ou etiológica) com a avaliação da transmissão serotoninérgica em áreas límbicas, como amígdala e córtex pré-frontal, através das técnicas de imunohistoquímica e hibridização in situ para os receptores 5HT1A e 5HT2A. 31 3. MATERIAIS E MÉTODOS Conforme os objetivos deste trabalho foi necessário submeter os animais ao protocolo de dessincronização forçada descrito por Cambras e cols. (2004). Com esta finalidade, os ratos foram submetidos a um ciclo claro/escuro com período de 22h, sendo 11h claro e 11h escuro. Ao fim de um mês a maioria dos animais apresentava claramente os dois componentes rítmicos da atividade locomotora dissociados (Figura 2). Como cada animal passa por momentos de CAP e NCAP alternadamente, os grupos foram separados conforme o momento no qual o animal estava no primeiro dia de teste comportamental. Por exemplo, se um animal estava no momento de CAP no dia do teste do campo aberto (CA) – que foi o primeiro aplicado – então, este animal ficou incluso no grupo CAP e todos os testes seguintes foram aplicados quando o animal estava no momento CAP. A mesma lógica foi utilizada para montar o grupo NCAP. Cabe salientar que todos os animais experimentais foram submetidos ao mesmo protocolo e posteriormente separados nos grupos CAP e NCAP conforme o momento no qual estavam durante o primeiro teste. Os dias para a realização dos testes comportamentais foram selecionados com o auxílio de uma rotina no MatLab (descrita no Anexo I). A rotina foi desenvolvida para acompanharmos a transição entre as fases individualmente com a finalidade de visualizar qual a melhor data para a execução dos testes. Além disso, a confirmação do melhor momento e dia para a realização dos testes foi confirmada através das análises dos actogramas por dois pesquisadores. Todos os experimentos comportamentais com os animais dissociados foram executados no meio da fase escura (ZT16-17) e comparados com os resultados dos testes dos animais controles que também foram realizados no meio da fase escura (ZT18). Os animais controle e os animais da bateria de testes foram expostos ao ciclo claro/escuro com período de 24h: 12h claro e 12h escuro durante todo o experimento. 32 Este projeto foi aprovado pelo Comitê de ética para o uso de animais da UFRN sob protocolo nº 021/2010. 3. 1. Para a Validação Aparente 3.1.1. Animais Foram utilizados ratos machos Wistar, provenientes do biotério do Laboratório de Neurobiologia e Ritmicidade Biológica do Departamento de Fisiologia da UFRN, com aproximadamente 60 dias de vida no início do experimento. Antes dos experimentos, os animais estavam submetidos às condições de CE do biotério que é de 12:12 (as luzes acendem às 6h e apagam às 18h). Durante todo o experimento, os animais tiveram livre acesso a alimentação e água, e foram mantidos em gaiolas individuais, em ambiente com ciclo claro/escuro controlados conforme o grupo em que estavam (controles 12:12 ou dissociados 11:11), temperatura entre 21 e 22°C e som atenuado. 3.1.2. Testes comportamentais Os horários e dia dos testes comportamentais foram selecionados conforme cada grupo: - Grupo CAP (T22): no meio da fase escura (entre ZT 16 e 17) quando ocorre coincidência da noite objetiva com a noite subjetiva do animal, ou seja, fase escura coincidindo com a fase de maior atividade do animal; - Grupo NCAP (T22): no meio da fase escura (entre ZT 16 e 17) quando o animal apresenta atividade reduzida na noite objetiva. O número de animais utilizados para os testes comportamentais foi: n=13 para os animais na condição de CAP; n=14 para os animais na condição de NCAP e n=8 para os animais do grupo controle. 33 Para a bateria de testes foram utilizados 5 ratos para cada grupo (n=5) que permaneceram sob o regime de luz T24: 12/12, como os controles. Foram selecionados quatro dos testes comportamentais mais utilizados na literatura para testar ansiedade, depressão e anedonia. Segue a descrição de cada um deles. 3.1.2.1. Labirinto em cruz elevado O labirinto em cruz elevado (LCE) é uma ferramenta utilizada para avaliar principalmente a ansiedade e a avaliação de risco a qual o animal é exposto (Carobez e Bertoglio, 2005). O aparato é composto por quatro braços de madeira medindo, cada um, 50 cm de comprimento por 12 cm de largura. Dois dos braços são circundados lateralmente por paredes opacas de 40 cm e são dispostos perpendicularmente aos outros dois braços, que permanecem abertos, sem paredes laterais. Todo o conjunto permanece elevado a 50 cm do solo (Figura 4). Os animais foram colocados no centro do aparato, com a face voltada para o braço aberto, e permaneceram por 5 minutos no teste. Ao ser colocado no aparato, é comum o animal preferir os braços fechados, pois ratos apresentam tigmotaxia – preferem estar em contato com paredes verticais – e neste local sentem-se mais seguros. O tempo que o animal passa nos braços abertos e a porcentagem do número de entradas nesses braços são as medidas utilizadas para a determinação do índice de ansiedade. Conjuntamente, o número de entradas nos braços fechados é utilizado para avaliar a atividade locomotora do animal (Carobez e Bertoglio, 2005). A avaliação de risco também foi mensurada neste teste através da observação do comportamento de stretching, movimento no qual o animal localizado no centro do aparato se alonga próximo à entrada do braço aberto para avaliar o quão seguro é o local antes de entrar. 34 Figura 4. Ilustração do aparato para o teste do labirinto em cruz elevado (LCE). 3.1.2.2. Campo aberto (Insight® modelo EP 154) O teste de campo aberto (CA) foi realizado numa arena circular com 60 cm de diâmetro dividida em quadrantes centrais e periféricos, cercada de paredes acrílicas de 50 cm (altura), base em acrílico de 100 cm x 80 cm (Figura 5). Os animais foram inicialmente colocados no centro do aparato e observados por 5 minutos. Foram aferidos: o deslocamento total, o deslocamento no centro e na periferia do aparato, o tempo gasto em cada uma das áreas e a taxa de defecação. Também avaliamos o comportamento de grooming e rearing. O grooming é caracterizado por movimentos repetitivos de autolimpeza que, quando em grande quantidade, são indicativos de stress (Kalueff e Tuohimaa, 2005). Já o rearing é quando o animal fica sobre as duas patas traseiras realizando a exploração vertical do aparato. O teste do campo aberto é um clássico para avaliar comportamento locomotor e emocionalidade. Os animais que exploram mais o centro do campo aberto são considerados menos ansiosos do que os animais que evitam cruzar ou permanecem menos tempo nos quadrantes centrais (Prut e Belzung, 2003). 35 Figura 5. Ilustração do aparato campo aberto utilizado. 3.1.2.3. Teste do nado forçado (Insight® modelo EP 180) O teste do nado forçado (NF) foi realizado num aparato cilíndrico de acrílico de 50cm de altura com diâmetro de 30cm (Insight® – Figura 6), cheio de água até 15cm antes da borda, abaixo dos sensores, para que o animal não consiga fugir nem tocar o fundo do aparato. Este teste tem duração de 5 minutos. Neste teste o animal é exposto ao estímulo aversivo e estressante – é colocado dentro da água sem possibilidades de fuga – e então é mensurado o “comportamento de desespero”. Chamamos de comportamento de desespero movimentos intensos e vigorosos das quatro patas, numa tentativa de escapar do cilindro. É mensurada a latência para cessação deste comportamento, o que implica que quanto maior for a latência, mais o animal lutou pela vida; e o contrário, latência reduzida, significa que o animal apresenta comportamentos tipo depressivos, já que desiste mais facilmente (Castagné e cols, 2009). 36 Figura 6. Ilustração do aparato utilizado para o teste do nado forçado (Insight® modelo EP 180). 3.1.2.4. Preferência Claro - Escuro (Insight® modelo EP 157) O equipamento é composto por dois compartimentos separados por uma divisória com uma pequena passagem entre o lado claro (revestido com chapa de acrílico branco - A x L x P (cm) 21 x 45 x 41) e o lado escuro (revestido com chapa de acrílico preto - A x L x P (cm) 21 x 35 x 41), com tampa de acrílico transparente (Figura 7). Os animais iniciam o teste no lado claro do aparato e foram observados por 5 minutos. Para avaliar o nível de ansiedade e o comportamento exploratório foram aferidos: o tempo de permanência e o deslocamento em cada um dos lados, bem como o número de episódios de comportamentos de rearing e grooming, tanto no lado claro quanto no lado escuro. 37 Figura 7. Foto ilustrativa do aparato de preferência ao claro ou escuro. Todos os testes descritos até aqui foram inteiramente filmados, para qualquer possível reavaliação posterior. 3.1.3. Bateria de testes Consideramos prudente avaliar previamente a melhor sequência para a realização dos testes comportamentais de modo que a execução de um teste não interfira nos resultados do seguinte. Como a literatura sobre este assunto está mais voltada para experimentos comportamentais em camundongos (caracterização de cepas e animais geneticamente modificados) (van Galeen e Steckler, 2000; McIlwain e cols., 2001; Lad e cols., 2010) e, além disso, não abrangem alguns dos testes que foram por nós utilizados, elaboramos um experimento piloto no qual os animais realizaram baterias de testes de avaliação comportamental em diferentes sequências, como mostra a Tabela 1. Tabela 1. Grupos experimentais e respectiva sequência de testes. Grupos 1º Teste 2º Teste 3º Teste 4º Teste G1 CA LCE NF PCE G2 LCE CA NF PCE G3 NF CA LCE PCE G4 NF LCE CA PCE CA – teste de Campo Aberto; CE – teste de preferência Claro – Escuro; NF – teste de Nado Forçado; LCE – teste de Labirinto em Cruz Elevado 38 Foram utilizados 20 ratos Wistar machos com 3 meses de idade no início do experimento, divididos em 4 grupos com 5 animais cada. Os testes tiveram inicio às 18:30h (ZT12,5), correspondente às primeiras horas da fase escura, momento no qual os ratos tem maior atividade exploratória. Cada grupo experimental realizou um único teste por dia, durante quatro dias consecutivos. O intervalo entre os testes foi de 24h. Todos os testes foram realizados no escuro total. Os resultados deste experimento foram válidos para estabelecer em qual sequência ocorre o menor efeito de ordem. 3.1.4. Atividade locomotora Os animais permaneceram alojados em gaiolas individuais com sensores infravermelhos 5cm acima de cada uma, a fim de registrar a atividade locomotora individualmente. Os dados de registro da atividade locomotora e os ciclos de luz foram controlados continuamente pelo sistema SAP – Sistema de Aquisição Periódica (desenvolvido pelo LNRB, Dr. Marconi Câmara) durante todo o experimento. Periodicamente foram construídos gráficos para visualização do ritmo de atividade locomotora – actogramas e periodogramas – no programa El Temps (Dr. Antony Dièz-Nogueira, Universidade de Barcelona, 1999), a fim de acompanhar a dissociação dos componentes rítmicos, tanto do componente sincronizado ao ciclo CE imposto (T22) quanto do componente não sincronizado ao CE (T>24). O acompanhamento e a análise da atividade locomotora durante o experimento farmacológico também foi realizada dessa forma. 39 3.1.6. Teste de Consumo de Glicose O teste de consumo de glicose consiste num paradigma de escolha entre duas garrafas: uma delas contendo água e a outra contendo uma solução de 0,5% de glicose diluída em água. As duas garrafas são igualmente oferecidas para os animais, como mostra a figura 8, por um período 24h. Ao fim do teste, é aferido o consumo individual de cada uma das garrafas. Este teste tem sido utilizado extensivamente há mais de 20 anos em modelos animais de depressão para mensurar a anedonia (Willner e cols., 1987), um sinal crucial da depressão e indicador comportamental do estado depressivo em roedores. O animal anedônico, depressivo, perde a habilidade de sentir prazeres, portanto teoricamente não terá preferência pelo sabor doce. Figura 8. Foto ilustrativa das condições do teste de consumo de glicose. 3.2. Teste farmacológico para a Validação Preditiva Como o lítio é o tratamento mais comum para o transtorno bipolar, o elegemos para ser utilizado neste experimento a fim de verificar se essa condição de 40 ciclicidade era capaz de ser revertida. O lítio foi administrado na forma de carbonato de lítio (Li2CO3), através do medicamento Carbolitium® (Eurofarma). A primeira tentativa de administração do lítio foi feita através da diluição do medicamento na água. Para tanto, mensuramos a quantidade de água ingerida pelos animais (~20ml/dia) e fizemos uma média do consumo para a correta diluição do medicamento. Baseando-se na média do consumo de água, diluímos inicialmente 1mg de lítio/4ml água para que fosse administrada a dose diária correta do medicamento. Entretanto, os animais passaram a consumir menos líquido. Por esse motivo, reajustamos a concentração do lítio na água para 6mg/4ml. Dessa forma, os animais passaram a consumir ainda menos água, alguns chegaram a ficar completamente privados por dias. Com isso, a única alternativa foi modificar a via de administração. Como o protocolo de dessincronização forçada é baseado na ritmicidade circadiana, a administração do fármaco não poderia interferir na ritmicidade dos animais. Então, a via de administração eleita foi através da ração. Quebramos os pellets de ração até que virassem pó e umedecemos a massa para ser misturada ao medicamento macerado na concentração de 3,6g/kg de ração. Após estarem bem misturados, refizemos os pellets, assamos no forno para secar e esperamos esfriar antes de disponibilizá-las ad libitum por 21 dias para os ratos. Essa dose foi determinada através de estimativas do consumo de ração. Iniciamos com 2mg de lítio/kg de ração e, mensurando a litemia dos animais duas vezes na semana, conseguimos atingir a litemia desejada de >1,0 mEq/ml na maioria dos animais com a dose de 3,6mg/kg. A litemia foi aferida no Centro de Patologia Clínica de Natal, através do aparelho AVL 9180 (Roche) que utiliza a metodologia de eletrodo íon seletivo. Neste experimento foi avaliada a atividade locomotora dos animais tratados em suas homecages, bem como o ritmo desta, a fim de avaliar o efeito do lítio nos animais em dissociação forçada. 41 3.3. Testes neuroquímicos para a Validação do Construto 3.3.1. Hibridização in situ do receptor de serotonina 5HT2A Este procedimento foi realizado no LabCrono do Professor Horacio de la Iglesia na Universidade de Washington durante o doutorado sanduíche. Submetemos 30 ratos Wistar machos com 2 meses no início do experimento ao protocolo de dessincronização forçada. Após 45 dias, 24 deles apresentavam claramente os dois componentes rítmicos da atividade locomotora bem dissociados. Esses animais foram sacrificados por decaptação em momentos diferentes compondo 4 grupos, com n=6 cada: 1 – CAP fase escura (ZT16); 2 – CAP fase clara (ZT5); 3 – NCAP fase escura (ZT16); 4 – NCAP fase clara (ZT5). O grupo controle deste experimento foi composto por 10 animais submetidos ao ciclo claro/escuro T24h. Metade (n=5) foi sacrificada na fase clara (ZT6) e metade na fase escura (ZT18). Os encéfalos foram retirados e imediatamente imersos em metilbutano a -30ºC para congelamento. Para este experimento foi utilizado somente o hemisfério direito dos animais, pois o outro hemisfério foi destinado a outro experimento do laboratório. Os cérebros congelados foram mantidos a -80ºC até serem fatiados em slices de 16µm no criostato e dispostos em lâminas de vidro para o processamento. O mesmo material foi utilizado para a imunohistoquímica descrita no item a seguir. Foi utilizado o protocolo de hibridização in situ descrito em de la Iglesia (2007) com algumas modificações. O protocolo do procedimento completo para a obtenção das imagens encontra-se no Anexo II. 42 As probes foram gentilmente cedidas pelo professor Juli Hsiao-Huei Wu da Keck School of Medicine da University of Southern California e correspondem às sequências descritas no Anexo III. Os filmes autorradiográficos (Kodak®) foram expostos por 5 dias em escuro total. Cada densidade atribuída é o resultado da média de dois slices de cada animal. Os filmes foram escaneados e analisados através do programa ImageJ para a obtenção da densidade óptica das áreas selecionadas: amígdala e córtex préfrontal nas regiões pré-límbica e pré-motora. 3.3.2. Imunohistoquímica para o receptor 5HT1A Como a intenção era fazer as duas técnicas (hibridização in situ e imunohistoquímica), foi realizado o mesmo tratamento descrito no item anterior. Portanto, os animais não foram perfundidos para a realização das imunohistoquímicas. É sabido que sem a perfusão os tecidos ficariam um pouco prejudicados para a imunohistoquímica, mas optamos por realizar esta técnica assim mesmo para aproveitarmos o tecido oriundo deste experimento, a fim de investigar a quantidade de receptores expressos e não só a expressão de RNAm dos mesmos. Para a detecção do receptor 5HT1A, o anticorpo utilizado foi SR-1A (H-119) da Santa Cruz Biotechnologies (SC-10801) na concentração de 2ug/ml. O anticorpo é uma IgG policlonal feita em coelho, cujo epitopo corresponde aos aminoácidos 218 – 336 do receptor de serotonina 1A de seres humanos recomendado para identificação deste mesmo receptor em camundongos, ratos e humanos. Para a detecção do receptor 5HT2A, o anticorpo utilizado foi o SR-2A (A-15) da Santa Cruz Biotechnologies (SC-15073) que é uma IgG policlonal feita em cabra, cujo epitopo correspondente localiza-se próximo a região N-terminal do receptor 5HT2A de humanos. Entretanto, não consegui realizar a padronização desta reação enquanto estive no laboratório do professor Horácio de la Iglesia, ficando este experimento a ser realizado a posteriori. 43 Para revelação foi utilizado o kit ABC da Vector Laboratories® e DAB (3, 3'diaminobenzidine). O protocolo completo desta técnica está descrito no anexo IV. As fotos foram tiradas no LabNeuro da UFRN, através do microscópio óptico Olympus BX41 de campo claro. As imagens foram digitalizadas pela câmera Nikon DXM1200 acoplada ao microscópio. A contagem de células foi feita através do programa ImageJ, onde todas as estruturas circulares ou ovoides que superavam a densidade óptica média somada a três vezes o desvio padrão (M+(3xSD)) do background em 16 bits. As regiões escolhidas para a análise foram amígdala basolateral e córtex pré-frontal região prélímbica. Foi tirada uma única foto em aumento de 40x da área desejada e contadas todas as células marcadas presentes no campo. Ficaram alocadas 6 a 9 slices do hemisfério direito de um animal em cada lâmina. Destas, foram eleitas as duas melhores e feita a soma da contagem de células para que cada animal tivesse um único número para as análises estatísticas. Optamos pela soma, pois como os cortes possuem mais de 100µm de distância entre eles (devido a confecção de 6 séries), o mesmo neurônio não seria contado mais de uma vez. 3.4. Análise estatística Inicialmente foram realizadas estatísticas descritivas para a análise visual dos dados determinando os valores de média, erro padrão e os gráficos. Para avaliar os parâmetros da atividade locomotora, comportamentais e o consumo de glicose, primeiramente foi aplicado o teste de Kolmogorov-Smirnov para avaliar a distribuição dos dados. Nos casos em que a distribuição obedece a uma curva normal foi aplicado o teste ANOVA de uma via, seguido do teste pós-hoc de Tukey. Para a análise molecular foi aplicada a ANOVA de duas vias, dadas as diferentes condições de iluminação dos grupos, com posterior teste de pós-hoc de Tukey. O nível de significância adotado foi de p<0,05. 44 4. RESULTADOS 4.1. Resultados dos testes comportamentais para Validade Aparente 4.1.1. Atividade locomotora Entre os animais dissociados, não há diferença entre as médias do total de atividade por hora quando analisadas as fases de claro e escuro conjuntamente, ou seja, a quantidade de atividade locomotora diária dos animais em CAP não difere dos animais em NCAP num período de 22h (610,7±66,2ua/h x 517,4±39,1ua/h; p=0,08). Entretanto, os animais em CAP apresentam atividade aumentada em suas gaiolas comparada a dos animais controle (610,7±66,2ua/h x 458,84±57,8ua/h; p=0,001), mostrando que os animais dissociados em fase de coincidência (CAP) apresentam hiperlocomoção, diferentemente dos animais em NCAP que apresentam a média diária de atividade locomotora semelhante a média diária dos animais controle (517,4±39,1ua/h x 458,84±57,8ua/h; p=0,34). Todavia, quando analisamos separadamente cada uma das fases do ciclo de iluminação podemos observar claramente a diferença no perfil diário de atividade locomotora entre os grupos CAP e NCAP. Os animais, quando estão no momento de CAP, apresentam mais atividade na fase escura e menos atividade na fase clara, característica de animais noturnos (ratos), assim como os controles. Porém, quando estão no momento de NCAP esse quadro se modifica. Os animais apresentam atividade semelhante no claro e no escuro (Figura 9). Como o perfil de atividade entre os animais em CAP e os controles é semelhante (ver Figura 10), durante a fase clara não foi observada diferença na quantidade de atividade (320,0±24,6ua/h x 211,8±34,9ua/h; p=0,45). Entretanto, há um grande aumento da atividade nos animais em CAP durante a fase escura quando comparados ao grupo controle (901,4±30,3ua/h x 705,9±40,5ua/h; p=0,02). Isso mostra que o aumento de atividade diária dos animais em CAP está concentrado na fase escura, mostrando que a hiperlocomoção do grupo CAP ocorre nesta fase. Entre os grupos NCAP e controle as diferenças também foram marcantes (claro: 576,8±43,7ua/h x 234,7±42,0ua/h; p=0,0001; escuro: 45 446,1±47,9ua/h x 723,7±45,7ua/h; p=0,001), devido a diferente distribuição da atividade nessas duas fases (Figura 9). Figura 9. Perfil da atividade locomotora em média por hora nos grupos CAP (vermelho), NCAP (azul) e Controle (preto). O eixo Y traz o tempo em segundos/ h da movimentação do animal, No eixo x a escala temporal em horas em zeitgeber time. * * * Figura 10. Atividade locomotora expressa em segundos/h. À esquerda estão apresentadas as médias do período completo (22 ou 24h) dos grupos, onde podemos observar a diferença entre o grupo controle e o grupo CAP. No centro, a atividade locomotora na fase clara é maior no grupo NCAP quando comparada aos grupos CAP e controle. À direita, na fase escura, a atividade locomotora é diferente quando comparamos os grupos aos pares (Ctl ≠ CAP; Ctl ≠ NCAP; CAP ≠ NCAP). *p<0,05. 46 Quando realizamos a análise intragrupo, comparando a atividade da fase clara com a da fase escura entre os grupos, o esperado seria encontrarmos diferenças em todos os grupos já que ratos possuem atividade noturna e a fase de repouso alocada na fase clara. Esse fato ocorre com os animais do grupo CAP (claro 320,0±24,6ua/h x escuro 901,4±30,3ua/h; p=0,0001) e com os animais do grupo controle (claro 211,8±34,9ua/h x escuro 705,9±40,5ua/h; p=0,0001), porém não ocorre nos animais do grupo NCAP (claro 546,3±42,9ua/h x escuro 488,6±66,4ua/h; p=0,92) que possuem quantidade semelhante de atividade locomotora na fase clara e na fase escura, mostrando um deslocamento da fase ativa do animal. As análises da atividade locomotora foram realizadas através de ANOVA de uma via para a comparação entre a atividade diária e ANOVA de duas vias para a comparação entre a atividade no claro e no escuro. Através da rotina de MATLAB descrita por Gonçalves e colaboradores (2010) pudemos verificar a variabilidade intradiária (IV), ou seja, a fragmentação da atividade locomotora dentro de um dia. A IV é semelhante para os indivíduos NCAP e controle (1,08±0,03 x 1,07±0,03; p=0,97). Entretanto, os animais em CAP mostram fragmentação da atividade bastante reduzida comparada com os outros grupos (0,88±0,03 x NCAP p=0,0008; CAP x Ctl p=0,0007). 4.1.2. Testes comportamentais 4.1.2.1. Bateria de testes Os animais foram testados conforme a sequência especificada na Tabela 1. Ao final do experimento, o que observamos foi um aumento da ansiedade nos animais que iniciam a bateria pelo LCE (G2) quando comparados aos animais que iniciam o teste pelo CA (G1). Os animais que iniciam a bateria de testes pelo LCE, quando o segundo teste é o CA, apresentam menor exploração no centro do CA, mostrando que depois de realizarem o teste do LCE os animais ficam mais ansiosos do que os animais cujo primeiro teste é o CA (G1: 24,2±3,2 quadrantes x 47 G2:13,2±2,2; p=0,027) (Figura 11). Entretanto, o deslocamento na periferia do CA, bem como o deslocamento total durante o teste, foi semelhante entre esses grupos. Esse aumento da ansiedade no G2 também pode ser observado pela análise do teste de PCE, onde estes permaneceram menos tempo no compartimento claro do que os animais do G1 (G1: 158,6±10,6s x G2:145,2±11,8s, p=0,008) mesmo que ambos tenham realizado o teste do NF 24h antes, mostrando que o LCE não é sugestivo para iniciar a bateria de testes. * Figura 11. Distância percorrida no teste do campo aberto. O gráfico mostra a distância em número de quadrantes percorridos em média por grupo em separado: à esquerda, no centro e à direita na periferia do aparato no experimento bateria de testes (*p<0,05). * Os outros parâmetros avaliados nos testes LCE e NF não apresentaram diferença entre os grupos na sequência, revelando que não sofrem interferência significativa do teste antecedente. As análises entre os grupos foram feitas através de ANOVA de uma via. 48 Com base nestes resultados, concluímos que a ordem mais adequada para serem realizados os experimentos é do teste menos ansiogênico, nesse caso o CA, para os mais ansiogênicos, o LCE seguido do NF. O teste de preferência ao claro ou escuro não foi utilizado na bateria de testes para os animais dissociados, pois realizamos um experimento piloto para verificar se havia alguma predileção pelo lado no qual o animal iniciava o teste, o que foi devidamente comprovado: os animais que iniciam o teste no compartimento claro exploram mais esse lado do aparato quando comparados aos animais que iniciam o teste no compartimento escuro (28,0±6,9 x 9,2±3,9 ; p=0,04). Optamos por não incluir este teste na bateria comportamental dos dissociados. Os resultados deste experimento geraram o artigo que compõe o Anexo V. 4.1.2.2. Campo aberto Os dados obtidos no campo aberto com os animais dissociados e controle estão exibidos nos gráficos a seguir (Figuras 12 e 13). O deslocamento foi aferido contando-se o número de quadrantes percorridos pelo animal. Vale lembrar que os testes foram realizados no meio da fase escura, tanto para os animais dissociados (no ZT 16-17) quanto para os animais controle (no ZT 18). Os animais dissociados, tanto em momentos de CAP quanto em momentos de NCAP, apresentam menor deslocamento do que os ratos do grupo controle nos 5 minutos de teste no CA (F(2,30)=11,741; p<0,001; Posthoc Tukey CAP: p=0,008; NCAP: p<0,0001). Quando analisamos o deslocamento dos animais na periferia do aparato, podemos perceber que essa redução no deslocamento dos animais dissociados ocorre principalmente na exploração dessa região quando comparados ao grupo controle (F(2,30)=10,216; p<0,0001; Posthoc Tukey CAP: p=0,025; NCAP: p<0,0001). No centro do CA, os animais dissociados também deslocam-se menos do que os animais do grupo controle (F(2,30)=3,913, p=0,031; Posthoc Tukey CAP: p=0,049, NCAP: p=0,045) e consequentemente ficam menos tempo no centro do aparato (F(2,30)=5,065, p=0,013; Posthoc Tukey CAP: p=0,025, NCAP: p=0,018). 49 * * * Figura 12. Médias do deslocamento total, no centro e na periferia do aparato. As barras em preto representam os animais controle T24, em branco CAP e as barras em cinza os animais em NCAP. p<0,05 entre o controle e os grupos dissociados em todos os parâmetros avaliados. * Figura 13. Porcentagem do tempo despendido no centro no aparato do CA pelos grupos Controle, CAP e NCAP. p<0,05 entre o grupo controle e os animais dissociados, ambos CAP e NCAP. Realizamos a análise de outros comportamentos como grooming e rearing. O que observamos foi que os animais em dissociação, tanto CAP como NCAP, 50 apresentaram comportamentos estereotipados. Aumento na quantidade de grooming foi observado nos animais dissociados quando comparados ao grupo controle (F(2,33)=6,673, p=0,004; CAP: p=0,003 e NCAP: p=0,009) e redução na exploração vertical, chamado de rearing (F(2,33)=8,236, p=0,001; CAP: p=0,001 e NCAP: p=0,016) (Figuras 14 e 15). Figura 14. Quantidade média de grooming realizado durante o teste do campo aberto pelos grupos controle, CAP e NCAP respectivamente. Os animais dissociados, tanto em CAP quanto em NCAP, apresentam mais grooming do que os animais do grupo controle. *p<0,05. Figura 15. Quantidade média de rearing realizado durante o teste do campo aberto pelos grupos controle, CAP e NCAP respectivamente. Os animais dissociados, tanto em CAP quanto em NCAP, apresentam menos rearing do que os animis do grupo controle, *p<0,05. 51 4.1.2.3. Labirinto em Cruz Elevado Foi avaliado o tempo de permanência dos animais separadamente em cada uma das partes do aparato, bem como o número de entradas em cada local. Os animais de todos os grupos apresentaram a atividade exploratória semelhante neste teste. Entretanto, os animais do grupo NCAP permanecem menos tempo nos braços abertos do labirinto quando comparado ao grupo controle (Posthoc Tukey p=0,003), indicando maior ansiedade, como mostra a Tabela 2. Tabela 2. Parâmetros avaliados no teste do labirinto em cruz elevado dos animais em dessincronização forçada.* p<0,05 entre o grupo NCAP e controle. Controle CAP NCAP (Média±EP) (Média±EP) (Média±EP) Tempo no braço aberto 90,2±13,4 61,2±11,6 Tempo no braço fechado 135,2±5,2 Tempo no centro Parâmetro ANOVA Significância 40,3±7,0 F(2,30)= 4,35 p=0,01* 180,3±15,2 201,6±9,6 F(2,30)= 4,85 p=0,01* 74,6±7,8 58,5±4,8 58,1±4,6 F(2,30)= 1,83 p=0,17 Nº entradas no braço aberto 6,7±1,3 5,5±0,8 3,8±0,8 F(2,30)= 2,05 p=0,14 Nº entradas no braço fechado 8,7±1,4 9,4±0,9 8,7±0,8 F(2,30)= 0,18 p=0,83 Nº entradas no centro 14,8±2,5 15,1±1,5 12,9±1,5 F(2,30)= 0,58 P=0,56 Os comportamentos estereotipados também foram avaliados durante este teste. Não houve diferença entre os grupos quanto a quantidade de grooming (F(2,39)=1,432, p=0,252) ou rearing (F(2,29)=2,250, p=0,12). Entretanto pudemos observar que os animais dissociados apresentaram menor avaliação do risco quando estavam nos braços abertos do que os animais do grupo controle, um comportamento chamado head down (F(2,39)=3,011, p=0,034), como mostra a figura 16. 52 * Figura 16. Quantidade média do comportamento chamado head down, para a avaliação de risco, realizado durante o teste do labirinto em cruz elevado. O grupo controle realiza mais vezes este comportamento do que os grupos CAP e NCAP, *p<0,05. 4.1.2.4. Nado forçado No teste do nado forçado foi avaliada a latência em segundos para o comportamento de desespero. Os animais do grupo CAP apresentaram a latência significativamente aumentada quando comparada a latência dos outros grupos (F(2,31)=6,339, p=0,005; Potshoc Tukey CAP x NCAP: p=0,014; CAP x Ctl: p=0,011), mostrando que os animais em CAP apresentam um comportamento do tipo antidepressivo, já que lutam mais pela vida (Figura 17). Figura 17. Latência em segundos para o comportamento de desespero no teste do nado forçado. A curta latência para esse comportamento reflete o estado depressivo no rato. Os animais em CAP apresentaram latência aumentada quando comparado aos grupos controle e NCAP. *p<0,05. 53 4.1.3. Teste de consumo de glicose Os dados provenientes do teste de consumo de glicose estão apresentados na figura 18 e 19. Todos os animais consumiram volume semelhante de glicose diluída em água (F(2,36)=0,890, p=0,420). Os animais em CAP consumiram mais água durante o teste do que os animais em NCAP (F(2,36)=5,195, p=0,011; Posthoc Tukey p=0,009). * Figura 18. Consumo de consumo de água e glicose em ml. As barras em preto representam o consumo médio dos animais do grupo controle, em branco os animais do grupo CAP e as barras em cinza apontam o consumo dos animais do grupo NCAP. À esquerda o consumo de água e à direita o consumo de glicose a 0,5%. Quando comparamos o consumo intragrupo pela porcentagem de glicose no consumo total, percebemos que os animais em NCAP têm uma tendência a um maior consumo da glicose como mostra a figura 19, mas não é estatisticamente significante (F(2,36)=2,597, p=0,089). 54 Figura 19. Gráfico ilustrando a porcentagem de consumo da solução contendo 0,5% de glicose em relação ao consumo total. Não há diferença entre os grupos. 4.2. Resultados para a Validade Preditiva 4.2.1. Teste farmacológico - Lítio Todos os animais atingiram a litemia na dosagem terapêutica descrita na literatura (entre 1,0 e 2,0 mEq/ml) (Gould e cols., 2003; Treiser e cols., 1980; Yin e cols., 2006). Os animais receberam a ração com lítio por 21 dias. O lítio foi capaz de alterar a ritmicidade circadiana dos animais como podemos observar na figura 20. Os animais previamente dissociados tiveram o ritmo T22 completamente abolido e o ritmo >24h teve seu período prolongado de 1474±20 min para 1605±97 min em média (de 24,56h para 26,75h). 55 A B C Figura 20. (A) Actogramas representativos de cinco diferentes animais sob o protocolo de dessincronização forçada. Após 35 dias de dessincronização, iniciamos a administração do lítio na ração 3,6g/kg. Nota-se que a administração do lítio modificou o ritmo dos animais. (B e C) Periodogramas representativos de dois animais antes (B) e depois (C) da administração do lítio. Tabela 3. Quantidade de atividade expressa pelos animais experimentais em suas homecages, antes e durante o tratamento com lítio na dosagem de 3,6mg/kg ração. Atividade em ua/h Dias do tratamento (média ± erro) Antes 219,7±16,2 5 – 10 210,1±18,9 11 – 15 205,4±19,4 16 – 20 188,8±20,1 56 Realizamos a análise da atividade locomotora a cada 5 dias de tratamento, o que encontramos foi que paulatinamente a atividade dos animais foi reduzida, como mostra a tabela a seguir (Tabela 3). Nos últimos 5 dias de tratamento a atividade locomotora encontrava-se reduzida em 15% quando comparada à atividade antes do tratamento, durante a dissociação destes mesmos animais (Figura 21). * Figura 21. Os pontos representam a média ±erro padrão do registro da atividade locomotora dos animais em suas homecages antes e durante o tratamento com o lítio. A análise foi realizada separadamente a cada 5 dias de tratamento. Nos últimos 5 dias de tratamento (de 16 a 20) a atividade foi bruscamente reduzida quando comparada ao ritmo antes do início do tratamento (*p=0,02). Essa redução na atividade locomotora é significante (F(3,44)=5,060, p=0,004); os resultados dos testes de posthoc de Tukey vão sendo gradativamente significantes comparados ao controle (5 dias p=0,054; 10 dias p=0,050; 15 dias p=0,037) e torna-se mais evidente nos últimos 5 dias do tratamento Entretanto, nos últimos dias de administração do lítio os animais apresentavam-se bastante debilitados, mesmo com a administração concomitante de cloreto de sódio 0,9% para correção do equilíbrio eletrolítico. Alguns animais 57 foram a óbito antes do final do experimento. No 21º dia de administração do fármaco, o experimento foi interrompido para evitar o sofrimento dos animais. Com a finalidade de facilitar o entendimento a respeito dos testes comportamentais, a tabela 4 traz um resumo dos resultados comportamentais. Tabela 4. Resumo dos achados comportamentais dos animais dissociados em comparação ao grupo controle. 4.3. Testes neuroquímicos para a Validação do Construto 4.3.1. Hibridização in situ Avaliando os resultados da hibridização in situ para o receptor 5HT2A, verificamos que nenhuma das áreas analisadas apresenta variação circadiana na expressão de RNAm no grupo controle, como mostra a tabela abaixo (Tabela 4). 58 Tabela 5. Expressão de RNAm do receptor 5HT2A nas fases clara e escura do grupo controle (T24) no córtex pré-frontal pré-límbico, córtex pré-frontal pré-motor e na amígdala. Na coluna da direita a significância do teste t. Região Claro Escuro Significância (p) (Densidade óptica normalizada) CPF pré-límbico 1,60±0,13 1,44±0,02 0,255 CPF pré-motor 1,70±0,06 1,60±0,05 0,276 Amígdala 1,20±0,04 1,29±0,07 0,344 As imagens da hibridização in situ estão representadas na figura a seguir (Figura 22). 1mm 1mm Figura 22. Hibridização in situ do córtex pré-frontal e da amígdala nos ratos dissociados, marcando a expressão de RNAm do receptor 5HT2A. As linhas em preto representam as áreas que foram utilizadas para a leitura da densidade óptica das áreas do córtex pré-frontal (áreas pré-límbica e pré-motora, respectivamente) e da amígdala. Não encontramos diferença na expressão de RNAm dos receptores 5HT2A entre os grupos. As áreas avaliadas foram a amígdala e o córtex pré-frontal, tanto a porção pré-motora quanto a porção pré-límbica como podemos ver nos gráficos a seguir. 59 Figura 23. Expressão de RNAm de receptores serotoninérgicos do tipo 5HT2A na amígdala, córtex pré-frontal pré-límbico e córtex pré-frontal pré-motor, respectivamente. As três barras a esquerda de cada gráfico mostram a expressão durante o claro e as três barras da direita a expressão durante o escuro. Não houve diferença estatística nos níveis de expressão de RNAm entre os grupos. A quantificação da densidade de receptor 5HT2A presente nas áreas desejadas foi feita através da mensuração e posterior normalização das densidades ópticas. Foi escolhida uma área de referência, onde a densidade óptica era mínima aparentemente e este valor serviu como denominador para o valor mensurado da área desejada. A fórmula a seguir resume como foi calculada a NOD (Normalized Optical Density): As NODs dos animais dissociados podem ser encontradas na tabela 6. 60 Tabela 6. Resultados da análise das densidades ópticas normalizadas resultantes da hibridização in situ para o receptor 5HT2A no córtex pré-frontal pré-límbico, córtex préfrontal pré-motor e na amígdala. Região CAP NCAP Claro Escuro Claro Escuro CPF pré-límbico 1,17±0,03 1,24±0,02 1,49±0,04 1,45±0,06 CPF pré-motor 1,66±0,03 1,59±0,06 1,69±0,05 1,53±0,07 Amígdala 1,24±0,02 1,17±0,03 1,21±0,01 1,26±0,04 4.3.2. Imunohistoquímica Primeiramente verificamos se havia variação circadiana do receptor 5HT1A no grupo controle. Vimos que tanto na região pré-límbica do córtex pré-frontal (F(2,31)= 0,359; p=0,702) quanto na região da amígdala (claro: 178,8± 17,3 x escuro: 151,0±13,9; p=0,2) não há diferença entre a fase clara e a escura, quanto ao número de células que expressam o receptor 5HT1A. Em outras palavras, não há variação circadiana no número de células que expressam este receptor nas áreas analisadas no grupo controle. Ao comparar a marcação entre os grupos encontramos maior número de células marcadas nos animais dissociados do que nos animais controle quando considerada a região da amígdala (F(2,33)=8,481; p=0,001; Posthoc Tukey CAP: p=0,006; NCAP: p=0,002). Quando analisamos nas diferentes condições de luz em separado, os animais sacrificados em NCAP na fase escura apresentaram maior número de receptores 5HT1A na região da amígdala quando comparados aos animais controle (F(5,33)=4,379; p=0,005; Posthoc Tukey p=0,02), como mostrado na tabela 7. Os animais em CAP não apresentaram diferença estatística dos animais controle quando analisados nas diferentes condições de luz. 61 Tabela 7. Contagem de células 5HT1A positivas no córtex pré-frontal e na amígdala. Córtex pré-frontal Amígdala Escuro Claro Escuro Claro Controle 177,4±21,8 186,8±12,9 151,0±13,9 178,8±17,3 CAP 204,5±26,6 188,5±9,5 195,6±11,9 218,0±9,3 NCAP 185,5±14,0 193,2±12,1 210,3±5,9 216,6±13,7 A contagem de células marcadas para o receptor 5HT1A na região do córtex pré-frontal não foi estatisticamente significante nas diferentes condições experimentais e de luz. A figura 24 representa a marcação do receptor 5HT1A respectivamente em cortes do córtex pré-frontal e amígdala. 50µm 50µm Figura 24. Foto representativa das células marcadas para o receptor 5HT1A em um corte do córtex pré-frontal à esquerda e um corte da amígdala à direita. 62 5. DISCUSSÃO No presente estudo tivemos por objetivo promover alterações na ritmicidade circadiana em animais saudáveis a fim de verificar se estas poderiam causar alterações comportamentais semelhantes às apresentadas no transtorno bipolar. O método eleito foi o protocolo de dessincronização forçada o qual promove a dissociação do ritmo de atividade locomotora em ratos através de alterações no período do ciclo de CE. Conseguimos observar a dissociação em cerca de 90% dos animais submetidos ao protocolo. A hipótese do trabalho foi de que os animais submetidos a este protocolo apresentassem alterações cíclicas de comportamento alternando as fases de coincidência (CAP) – a qual supostamente os animais estariam num estado semelhante à mania – com as fases de não coincidência (NCAP), fase na qual o animal supostamente estaria num estado semelhante à depressão, pois mesmo estando na fase escura não apresenta a atividade locomotora correspondente. Alternando estes diferentes momentos, um mesmo animal poderia mimetizar a ciclagem que é espontânea entre a mania e depressão observada nos indivíduos com transtorno bipolar. Em trabalhos realizados anteriormente com o protocolo de dessincronização forçada, é facilmente observável que na fase de CAP os animais apresentam a atividade locomotora aumentada e mais concentrada (Campuzano e cols., 1998; Cambras e cols., 2004; de la Iglesia e cols., 2004; Cambras e cols., 2007). Somado aos achados encontrados por Neto e cols. (2006), vimos que os animais se comportam de modo diferente dependendo da fase em que se encontram neste protocolo. Estas alterações se repetem a cada 7 dias aproximadamente (dependendo do período endógeno do animal). As fases de CAP e NCAP se revezam alternadamente no mesmo animal (por isso é considerado um fenômeno cíclico) e podem representar oscilações no humor, levando-nos a sugerir este como modelo animal para o transtorno bipolar. No entanto, para a validação de uma doença humana em um modelo animal devem ser contemplados três critérios: a validação de face, validação preditiva e validação do construto, como explicado anteriormente na introdução desta tese. 63 Começando pela validação de face (ou aparente), esta consiste na semelhança entre os sintomas observados em humanos e o fenótipo dos animais tidos como modelo. No nosso caso, um modelo animal ideal para estudo do transtorno bipolar incluiria comportamentos espontâneos e progressivos que oscilariam entre a manifestação de aumento e redução de um determinado comportamento, que poderiam similar o comportamento humano apresentado nas fases de mania ou depressão, contemplando então a validade aparente (Gavioli e cols., 2009). A primeira evidência comportamental que encontramos no modelo foi na análise da atividade locomotora dos animais, a qual revelou que os animais dissociados apresentam padrões de atividade locomotora diferente dos ratos mantidos em ciclos de claro/escuro simétricos de 24h (aqui chamados de grupo controle) e esses padrões se repetem de forma cíclica. Além disso, os animais em CAP apresentaram atividade locomotora muito mais elevada do que os animais controle com o mesmo perfil de distribuição ao longo do período (Figuras 9 e 10). Esse dado mostra a hiperlocomoção dos animais em CAP. Essa é uma das características mais observadas nos modelos de mania: a hiperatividade locomotora, tanto nos modelos induzidos por psicoestimulantes (Jornada e cols., 2009; Herman e cols., 2007; Morris e cols., 2006; Frey e cols., 2006; Scotti e cols., 2011) quanto nos modelos genéticos (Young e cols., 2010; Roybal e cols., 2007). Nos protocolos de dessincronização forçada em humanos (Czeisler e cols., 1999; Waterhouse e cols., 2004), não há nada referente à quantificação da atividade locomotora, há somente a caracterização dos ritmos e aferição do período endógeno. O mesmo ocorre com os estudos de dessincronização forçada em ratos, há a caracterização dos ritmos, em diferentes situações, mas nenhum quantifica a atividade para podermos comparar (Campuzano e cols., 1998; Cambras e cols., 2004; Cambras e cols., 2007; Schwartz e cols., 2009). Quando analisamos a atividade locomotora das diferentes fases do ciclo claro/escuro em separado, encontramos semelhança entre os animais durante os dias em CAP e os controles na fase clara: baixa atividade, como era de se esperar 64 destes animais noturnos. Contudo, podemos observar que o aumento da atividade observada em CAP está toda concentrada na fase escura, a fase ativa do animal. Ou seja, há hiperatividade locomotora quando os animais estão na fase de CAP. Na fase escura, os animais em CAP ficam mais ativos do que os animais controle. Alternadamente, quando os ratos estão em NCAP apresentam um valor intermediário de locomoção considerando a média diária dos grupos. Todavia, a atividade dos animais em NCAP é igualmente distribuída ao longo das 22h e quando deveria apresentar alta atividade (na fase escura) a atividade mostra-se reduzida e bastante fragmentada, revelando que a fase ativa não está mais tão bem definida e uma aparente mudança de fase deste ritmo. É importante ressaltar que os testes comportamentais foram realizados durante a fase escura. Com isso, comparamos o desempenho dos animais nas tarefas durante a sua fase mais ativa. Tanto os controles quanto os animais em CAP, certamente estavam no meio de sua noite subjetiva durante os testes. Entretanto, os animais em NCAP no meio da fase escura estão no meio da noite objetiva, mas seu relógio endógeno provavelmente não aponta para a mesma fase, não estão necessariamente na noite subjetiva, e é por esse motivo que este modelo serve para demonstrar nos animais o que pode acontecer com os humanos que acabam por dessincronizar seus ritmos biológicos e apresentar maior propensão para desenvolver transtornos. A avaliação da atividade motora e o comportamento exploratório nos roedores é um dos métodos mais largamente utilizados para determinar os efeitos comportamentais das manipulações genéticas, farmacológicas e fisiológicas. Entre os estudos sobre as características do transtorno do humor, muitos autores concordam com a hiperlocomoção nos pacientes em fase de mania (Angst e cols., 2003; Benazzi e cols., 2007; Teicher, 1995; Young e cols., 2010). A hiperatividade locomotora dos animais em CAP foi observada apenas nos dados de registro da atividade em suas homecages, pois quando testados no campo aberto estes animais apresentaram atividade exploratória reduzida em relação aos animais controle. Assim como os animais em NCAP que também apresentaram redução na atividade exploratória durante o teste do campo aberto. Essa redução é referente tanto à exploração no centro do aparato quanto na periferia do mesmo. Não podemos 65 afirmar que os animais dissociados, tanto em CAP quanto em NCAP, apresentaram aumento da ansiedade neste teste, por mais que tenham explorado menos o centro do CA, pois a atividade exploratória total é reduzida. Alguns estudos em camundongos relatam que é bastante frequente os animais apresentarem pouca atividade ou até pequenos momentos de freezing imediatamente quando expostos a um novo ambiente, como numa situação de teste (Tang e Sanford, 2005). Nem sempre a atividade exploratória ou espontânea apresentada no campo aberto reflete a atividade locomotora observada na homecage, talvez pela novidade ou talvez pela manipulação prévia dos animais. Tang e colaboradores (2002) verificaram que camundongos comportam-se diferentemente quando testados pela primeira vez no campo aberto ou num ambiente onde o animal já fora previamente habituado. No final, sugerem aos pesquisadores cautela em analisar a atividade locomotora em testes comportamentais, pois os resultados destes nem sempre correspondem à atividade do animal e sim ao desempenho no teste. Ao manipular os animais dissociados, pude perceber que eles ficam bastante ariscos e assustados, muitos responsivos ao toque. Resultados prévios do nosso laboratório (Neto, 2006) com os animais dissociados mostraram que estes exploram mais o campo aberto do que os animais controle, dado este oposto ao encontrado neste estudo, porém além de serem animais de outra procedência (vindos do Biotério do Centro de Ciências Biológicas da Universidade Federal de Pernambuco – Recife), estes possuíam idade mais avançada do que os utilizados neste estudo (4-7 meses x 2-3 meses, respectivamente). A atividade exploratória dos animais controle no nosso experimento teve em média 77 quadrantes de deslocamento num campo aberto circular, enquanto o deslocamento médio dos animais controle do estudo anterior foi de 28±21 quadrantes num aparato quadrado. Portanto, fica difícil a comparação dos resultados. Já no teste do LCE, como todos os grupos exploraram igualmente o labirinto, podemos afirmar que no momento de NCAP os animais apresentam ansiedade 66 aumentada, mensurada pelo tempo reduzido em que permaneceram no braço aversivo do aparato (braço aberto). Ratos possuem uma propriedade chamada tigmotaxia, a qual faz com que estes animais prefiram estar em cantos ou ambientes fechados e escuros, pois nestes ambientes o animal sente-se mais seguro devido ao menor risco de ser predado. Essa propriedade nos permite inferir que quanto maior a exposição em ambientes aversivos, menor a ansiedade do animal, e por outro lado, quanto menor exposição em situações aversivas, maior a ansiedade do animal. Neste caso o menor tempo de exposição do grupo NCAP no braço aversivo nos permite afirmar que estes animais apresentam aumento na ansiedade. Observando o comportamento dos animais durante os testes, também observamos que os animais submetidos ao protocolo de dessincronização forçada apresentam comportamentos estereotipados. Os animais em dissociação apresentaram maior quantidade de grooming, em ambos os momentos CAP e NCAP, sugerindo certo grau de ansiedade durante o teste do CA para ambos (Figura 15). O aumento do grooming também foi observado em outro modelo de mania, os animais knockout para o gene GluR6 (Shatiel e cols., 2008). Os animais dissociados também apresentaram menor quantidade de rearing durante este mesmo teste (Figura 16), o que revela menor exploração vertical do aparato pelos animais dissociados. No teste do LCE, os ratos dissociados (tanto em CAP quanto em NCAP) apresentam menor avaliação de risco. Este dado foi aferido pelo comportamento de head down, o qual o animal permanece no centro do labirinto e estica o corpo a fim de avaliar se o braço a ser explorado é seguro. Os indivíduos bipolares, principalmente em fase de mania, apresentam avaliação do risco reduzida, realizam ações impulsivas, sem julgamento prévio, pois nesta fase o julgamento mostra-se prejudicado (para revisão, ver Einat, 2007). Os indivíduos depressivos apresentam uma característica chamada anedonia, que reflete a perda da capacidade de sentir prazer. Os testes comportamentais mais utilizados para avaliar essa característica em animais são: o nado forçado e o teste de consumo de glicose. Não conseguimos caracterizar anedonia nos ratos na 67 condição de NCAP, nem no nado forçado nem no teste de consumo de glicose. Entretanto, a partir do teste do nado obtivemos a informação de que os animais em CAP apresentam um perfil do tipo antidepressivo menos depressivos, pois apresentam a latência para o comportamento desesperado bastante aumentada, o que reflete a luta deles pela sobrevivência, característica oposta à encontrada nos indivíduos depressivos. Quanto ao teste de consumo de glicose, o resultado encontrado nos animais em NCAP pode ser explicado pelo fenômeno de binge, no qual indivíduos com transtornos ou privados de sono aumentam significativamente o consumo alimentar em certo período de tempo, principalmente alimentos ricos em gordura ou altamente palatáveis (Avena e Bocarsly, 2012). Visto que os animais em NCAP possuem o padrão do ciclo de atividade/repouso bastante conturbado, o binge poderia ser uma explicação plausível para o aumento no consumo de glicose. Outra explicação poderia advir do sistema de recompensa. Há um aumento no uso de substâncias ilícitas nos pacientes com transtorno bipolar, principalmente quando o diagnóstico é tardio, numa tentativa de aliviar os sintomas (Kolodziej e cols, 2005; Levander e cols, 2007; Mitchell e cols, 2007; Gao e cols, 2010). Cerca de 70% dos indivíduos bipolares tiveram uso/abuso de drogas no histórico (Gao e cols, 2008), sendo álcool e maconha os mais frequentes, seguidos de cocaína e opióides (Cerullo e cols, 2007). A história pregressa recente ou distante do uso de substâncias nos pacientes com TB de ciclagem rápida aumenta significantemente o risco para o desenvolvimento de outras comorbidades, como transtornos de ansiedade e pânico (Gao e cols, 2008). Os efeitos ansiolíticos do álcool em curto prazo (possivelmente mediados por mecanismos GABAérgicos) podem agir conjuntamente com os efeitos ansiogênicos do álcool no sentido de gerar um ciclo vicioso oscilando entre o uso do álcool e os sintomas de ansiedade. Esse ciclo vicioso aumenta o risco de desenvolver comorbidades, já que é um processo interativo, independente de qual foi a comorbidade que se iniciou primeiro (Kushner e cols, 1999). 68 O teste de consumo de glicose deste trabalho foi baseado no protocolo descrito por Martynhak e colaboradores (2011). Talvez não tenha sido a melhor metodologia escolhida, pois em outros protocolos, por exemplo, no descrito por Dzirasa e colaboradores (2010), os animais primeiramente aprendem a consumir a solução com sacarose (e não glicose), ficam privados de água por 18 horas antes do teste e então é disponibilizado para o animal somente a solução de sacarose – sem a garrafa contendo água – para não causar competição pelo consumo. Por outro lado, disponibilizando em conjunto a garrafa contendo água damos opção de escolha para o animal e conseguimos avaliar a preferência e não somente a quantidade de consumo. Em resumo dos dados comportamentais temos que os animais em dessincronização forçada mostram-se mais estressados, dados pelas observações do grooming, além da atividade exploratória reduzida e avaliação de risco prejudicada. Os animais no momento CAP apresentam perfil do tipo antidepressivo pelo teste NF e apresentam maior atividade locomotora concentrada na fase escura. Enquanto os animais em NCAP apresentam maior ansiedade, avaliado no LCE. Tomando em conjunto os dados descritos até agora, não podemos afirmar que estes ratos apresentam comportamento semelhante aos animais controle não dessincronizados. Parecem estar numa condição de estado afetivo alterado, sugerindo que o humor destes animais oscila quando comparado nestas diferentes fases ao grupo controle. Como conseguimos caracterizar somente a mania de forma cíclica, há a possibilidade de estarmos fazendo terapia de avanço de fase, já que avançamos a luz todos os dias em duas horas. Em outras palavras, é possível que não demos chance da depressão se estabelecer, já que avançando o ritmo da luz, arrastamos a fase dos animais e impedimos que eles expressem o comportamento depressivo. Além do que a privação de sono aguda tem efeito antidepressivo (WirzJustice e van der Hoofdakker, 1999), o que corrobora com nossos achados. E ainda, talvez não tenhamos utilizado um teste sensível o suficiente para a detecção do comportamento depressivo. Dessa forma, contemplamos a validação aparente de 69 forma parcial já que caracterizamos o comportamento semelhante à mania, mas não o comportamento depressivo nestes animais. Um modelo de mania que vem sendo bastante discutido na literatura é o camundongo mutante ou knockdown ClockΔ19 que apresenta os três critérios de validação requeridos. Sabe-se que o gene Clock é um dos principais genes envolvidos na circuitaria molecular circadiana e está envolvido no sistema de recompensa do sistema límbico. Os animais mutantes ClockΔ19 apresentam o comportamento menos depressivo, redução na ansiedade, aumento no comportamento de risco, hiperatividade, aumento da preferência por sacarose e cocaína e aumento na taxa de autoestimulação intracraniana. Com isso, contempla a validação de face para tornar-se um modelo de mania (McClung e cols., 2005; Roybal e cols., 2007). A vantagem do nosso modelo sobre o knockout ClockΔ19 é que o modelo de dessincronização forçada produz uma ciclagem previsível no comportamento dos animais diferentemente do knockout ClockΔ19, cujo modelo não apresenta nenhuma evidência de que estes ciclem entre a mania e a depressão ou mesmo haja oscilação no humor (Roybal e cols., 2007). Por outro lado, os animais mutantes ClockΔ19 contemplam os outros critérios de validação, como a validação preditiva, a qual estabelece que os fármacos utilizados para reverter os sintomas em humanos devem ter o mesmo efeito sobre os modelos animais. Tem sido demonstrado que o lítio – principal fármaco adotado para o tratamento dos pacientes com o transtorno – aumenta o período circadiano em diversas espécies, incluindo cultura celular, plantas, invertebrados e vertebrados (para revisão ver Li e cols., 2012). O lítio tem ação inibitória conhecida sobre a enzima GSK3β (Gould e cols., 2004), cuja estabilidade da proteína é dependente de outras moléculas do relógio molecular circadiano. Para dar maior detalhamento, a estabilidade da GSK3β depende da molécula rev-erb que por sua vez mantêm a proteína BMAL1 (que dimeriza com o Clock) num estado reprimido. A inabilidade de degradação da rev-erb é suficiente para prevenir o início da oscilação dos genes relógio. Um (ou mais componente) do soro que mimetiza um zeitgeber induz a 70 fosforilação e inativação da GSK3β, resultando na degradação da rev-erb e iniciando o ciclo de expressão gênica dos genes relógio (Yin e cols, 2006). Além disso, o tratamento com lítio aumenta a expressão de neurotrofinas, como BDNF (brain derived neurotrophic fator) e o fator de crescimento neural entre outros, além de ser parte da via de ativação da enzima AKT, que exerce um importante papel nos comportamentos relacionados ao humor e à recompensa (Krishnan e cols., 2008). O tratamento com lítio é capaz de reverter quase todas as anormalidades observadas nos animais ClockΔ19, incluindo os comportamentos relacionados à ansiedade e depressão (Coque e cols., 2011). Ocorreram alguns contratempos no experimento do tratamento com o lítio deste trabalho. Os animais ficaram muito debilitados ao final do experimento, portanto temos que levar em consideração as alterações comportamentais observadas. Em conversa informal com alguns pesquisadores que utilizaram o lítio, foi observada a mesma reação em ratos e camundongos. Alguns deles modificaram o fármaco e passaram a administrar valproato, outros reduziram a concentração de dose terapêutica para uma dose subterapêutica, na qual a litemia gira em torno de 0,1-0,5 mEq/ml e os animais permanecem saudáveis até o final do tratamento crônico de 21 a 28 dias (Coque e cols., 2011; relatos pessoais). Diferentes resultados podem ser encontrados variando a concentração do lítio. Tratamentos que produzem níveis séricos por volta de 1,3 -1,4 mmol/L reduzem o tempo de imobilidade de animais no nado forçado (Bersudsky e cols., 2007) diferentemente de quando a concentração sérica é menor: à concentração de 0,8mmol/L não há efeito no nado forçado. Com níveis séricos de 0,4 mmol/L os animais apresentam redução na atividade locomotora, mas nenhuma alteração nos testes comportamentais foi relatada nos testes com os animais ClockΔ19 (Roybal e cols., 2007). Nestes animais, o tratamento crônico com lítio por 10 dias fez com que os animais apresentassem novamente os níveis basais de ansiedade, além de apresentarem o mesmo tempo de imobilidade no nado forçado. Entretanto a mesma redução na atividade locomotora foi observada tanto para os animais mutantes quanto para os animais controle, sugerindo que o lítio reduz a atividade locomotora dos animais mesmo em doses subterapêuticas (Roybal e cols., 2007). 71 No nosso experimento, pudemos observar o efeito do lítio na ritmicidade dos animais logo nos primeiros dias de tratamento. Os animais perdem o componente rítmico sincronizado ao ciclo claro/escuro externo de 22h e passam a apresentar somente um componente rítmico de atividade locomotora com o período alongado. Portanto, sabemos que o lítio muda o período do ritmo da atividade locomotora dos animais mesmo sob o ciclo claro/escuro do protocolo de dessincronização forçada (T22) continuamente, mas através do nosso experimento não foi possível afirmar se a atividade locomotora volta aos níveis basais do controle pelo estado de saúde dos animais. Talvez se tentássemos utilizar uma dose subterapêutica ou outro medicamento, a quantidade de atividade dos animais experimentais não ficaria tão reduzida e fosse mais fiel à comparação. Por fim, não conseguimos contemplar a validação preditiva de forma satisfatória. Seriam necessários novos experimentos. O que podemos afirmar deste experimento farmacológico é que o lítio efetivamente alterou a ritmicidade circadiana dos animais dissociados, fazendo com que eles realmente abolissem a dissociação e alongassem o período de atividade locomotora. Seguindo para o próximo critério de validação, discutiremos a seguir sobre a validação do construto, a qual busca semelhanças nas bases biológicas desencadeadoras da doença, ou seja, na etiologia do transtorno. A fim de avaliar como a neurotransmissão poderia estar alterada nestes animais, buscamos alterações no sistema serotoninérgico. Um dos mecanismos pelos quais a luz pode influenciar o humor é através da habilidade de induzir rapidamente o aumento da liberação de serotonina. A taxa de produção da serotonina é maior nos dias longos do que nos dias curtos e aumenta conforme a intensidade luminosa (Lambert e cols, 2002). Isso pode explicar a depressão sazonal. Além disso, a serotonina parece estar envolvida em mudanças de fase fóticas e não fóticas (Mitlsberger e cols, 2000), pois os NSQs têm projeções diretas para os núcleos da rafe (Kawano e cols, 1996) e, ao mesmo tempo, estimulações elétricas na rafe acabam aumentando a liberação de serotonina nos NSQs, causando avanço de fase nos ritmos circadianos (Yamaka e cols, 2010). 72 Em modelos animais de ansiedade e depressão, a serotonina é um neurotransmissor chave que contribui nas alterações de comportamento relacionadas ao estresse (Graeff e cols., 1996; Lucki, 1998; Maier and Watkins, 2005). Em adição, o sistema sertoninérgico é um importante alvo farmacológico no tratamento de doenças afetivas (Blier and de Montigny, 1999). Entretanto, a relação entre este sistema e o comportamento ansioso e estressado ainda não é clara (Cooper e cols, 2008). A investigação dos receptores serotoninérgicos presentes neste trabalho fora realizada em doutorado sanduíche no laboratório de ritmos circadianos do professor Horacio de la Iglesia na Universidade de Washington. Foram realizados os procedimentos de imunohistoquímica para o receptor 5HT1A e a hibridização in situ para o receptor 5HT2A. As análises da hibridização in situ para o receptor 5HT2A não são animadoras, uma vez que não foi possível identificar nenhuma diferença entre os grupos na expressão de RNAm dos receptores nas áreas escolhidas. Talvez possamos ter perdido informação pela marcação ter ficado fraca e alguma diferença sutil entre a densidade desses receptores infelizmente não tenha sido detectada. Todavia, obtivemos resultados bastante interessantes para o receptor serotoninérgico 5HT1A. Através da técnica de imunohistoquímica para marcação desse receptor verificamos que não há variação circadiana, ou seja, há o mesmo número de células marcadas para este receptor tanto na fase clara quanto na fase escura nos animais controle. Ao comparar os animais dissociados com os animais controle, verificamos que os animais dissociados apresentam maior marcação na região da amígdala. Sabemos que há uma maior ativação do metabolismo da amígdala nos indivíduos bipolares (Drevets e cols, 2002). Uma das vias para ativação da amígdala é pelo córtex pré-frontal (CPF), pois é sabido que pacientes com alterações na interação CPF-amígdala geralmente apresentam uma inabilidade de regular respostas afetivas 73 (Rozenkranz e cols, 2003). Entretanto, não encontramos diferença no CPF entre os grupos, sugerindo que não há alterações nessa via. Por outro lado, a condição imposta pelo protocolo de dessincronização forçada pode estar servindo de estímulo aversivo por causar o rompimento da ritmicidade circadiana, e, dessa forma, estar ativando os núcleos dorsais da rafe que, através de suas projeções para a amígdala, causam uma exacerbação serotoninérgica favorecendo a liberação de serotonina na amígdala (Deakin e Graeff, 1991). Esse aumento de serotonina na amígdala pode estar causando o aumento da ansiedade encontrada nos animais em NCAP. O maior número de células marcadas com receptores 5HT1A na amígdala dos animais em NCAP pode ser resultante de uma tentativa de restaurar a inibição da amígdala e reduzir esse potencial efeito ansiogênico, pois a ativação dos receptores 5HT1A na amígdala tem sabidamente um efeito ansiolítico (de Andrade Strauss e cols, 2013). Nessa situação de hiperativação serotoninérgica temos a hiperativação dos receptores 5HT1A, que são inibitórios (pois estão acoplados a proteína Gi) e causam redução na ativação da amígdala (Drevets e cols, 2007). Ao mesmo tempo, projeções da rafe para outras áreas como a substância cinzenta periarquedutal causa inibição de comportamentos relacionados ao pânico. Em situações de perigo potencial, onde não se tem um perigo real como na ansiedade, teria a ativação dessas duas vias e o animal apresentaria o comportamento de esquiva e não de fuga. O que teria até uma relevância evolutiva, pois numa situação de estresse seria mais vantajoso para o animal se esconder do que ter um “ataque de pânico” e optar pela fuga, opção na qual se tornaria uma presa mais fácil. A serotonina teria um papel modulatório na amígdala, promovendo esse efeito ansiogênico (Paul e cols, 2013). No modelo de depressão induzida através da separação materna também foi encontrado aumento da expressão de 5HT1A na amígdala, assim como do transportador de serotonina, o que corrobora com nossos dados (Vicentic e cols, 2006). Essas alterações na neurotransmissão serotoninérgica permanecem na vida 74 adulta destes animais, o que pode implicar numa maior suscetibilidade a transtornos afetivos no futuro (Vicentic e cols, 2006). Em humanos com transtorno bipolar há redução de cerca de 41% do receptor 5HT1A na rafe (Drevets e cols, 1997). Essa redução pode refletir numa menor inibição da rafe em produzir serotonina, fazendo com que estes indivíduos tenham uma maior transmissão serotoninérgica influenciando tanto na quantidade quanto na temporalidade da secreção de serotonina em outras áreas do cérebro, o que pode justificar o nosso achado de maior ativação do receptor 5HT1A na amígdala numa tentativa de reduzir a ativação na amígdala nos animais dissociados. Infelizmente não foi possível realizar a contagem das células nos núcleos da rafe, pois como tínhamos somente um hemisfério cerebral quando chegávamos na altura da rafe já não tínhamos mais estruturas neuroanatômicas o suficiente para verificarmos a correta posição da rafe e realizarmos os cortes do mesmo núcleo consistentemente. Por este motivo os cortes ficaram em alturas diferentes e não foi possível a identificação dos núcleos da rafe, muito menos a contagem das células neste local, apesar de as imunohistoquímicas terem sido feitas nesses cortes. Os resultados da transmissão serotoninérgica também podem estar relacionados com a dissociação pelo fato de que alterações nesse sistema podem causar não somente mudanças no período circadiano, mas também na alocação da atividade locomotora ao longo do dia. Dessa forma, disfunções nesse sistema podem resultar em mudanças no padrão de atividade comportamental (Paulus e col, 2012). Neste caso, as alterações rítmicas causadas pelo protocolo de dessincronização que estariam gerando essas alterações serotoninérgicas nos animais. Os receptores serotoninérgicos 5HT1A, 5HT2A e 5HT2C parecem ter um papel proeminente na modulação dopaminérgica no córtex pré-frontal, com o 5HT1A e 5HT2A estimulando a liberação de dopamina, enquanto o 5HT2C a inibe, talvez por ações na VTA ou interneurônios GABAérgicos (Alex e cols, 2007). A ativação dos receptores 5HT1A densamente encontrados nos neurônios do córtex pré-frontal 75 aumenta a atividade dos neurônios dopaminérgicos da VTA e, consequentemente, a liberação mesocortical de dopamina (Diaz-Mataix e cols, 2005). Os estudos a partir do mutante ClockΔ19 mostram que a regulação do sistema dopaminérgico da área tegmental ventral (VTA) pela CLOCK pode ser devido a essa proteína funcionar como um fator de transcrição. Nos animais mutantes muitos dos genes que são expressos na VTA para o controle da atividade dopaminérgica estão com a expressão alterada, incluindo a expressão da enzima tirosina hidroxilase – passo limitante para a síntese da dopamina – que tem expressão circadiana na VTA e pode estar sob controle dos genes relógio (Weber e cols., 2004). Essa atividade dopaminérgica alterada pode ser vista nos trabalhos de Dzirasa e cols. (2011), onde foi realizado o registro eletrofisiológico de áreas límbicas como o núcleo accumbens, a VTA e amígdala. O animal ClockΔ19 apresenta um déficit na sincronização dos disparos neuronais com a atividade oscilatória do núcleo accumbens. Essa “disfunção” no núcleo accumbens pode estar contribuindo para os animais apresentarem sintomas semelhantes à mania como resultado dos mecanismos neurofisiológicos gerados pelo funcionamento anormal do mecanismo molecular circadiano (Dzirasa e cols., 2010; Dzirasa e cols, 2011), reforçando a hipótese apresentada nesta discussão. Em conjunto, não é somente o aumento ou decréscimo da taxa de disparos neuronais entre as estruturas, mas os padrões de disparo, de oscilações e a coerência entre as estruturas que ditam os comportamentos e o humor resultantes (Coque e cols., 2011). Esses resultados fazem o link entre os comportamentos de ansiedade dos animais mutantes com a disfunção oscilatória do núcleo accumbens, e sugerem que essas alterações oscilatórias induzidas pelo polimorfismo do gene Clock podem contribuir com as manifestações relacionadas à ansiedade observadas na mania. Conjuntamente, esses achados corroboram com a hipótese de que o sistema dopaminérgico e o sistema de temporização circadiano estão intrinsicamente interligados (McClung e cols, 2005). O funcionamento normal do cérebro depende crucialmente do ajuste e coordenação temporal apropriado. Essa fina regulação parece envolver as 76 frequências oscilatórias assim como o delicado balanço entre a sincronização e a dessincronização da interação dos grupamentos neuronais (Uhlhaas e Singer, 2006). Olhando por este ponto de vista, podemos considerar que no nosso modelo ocorre o desacoplamento entre as regiões ventrolateral e dorsomedial dos núcleos supraquiasmáticos (de la Iglesia e cols., 2004). Causado pela dessincronização forçada, esse desacoplamento gera diferentes outputs: a região ventrolateral recebe projeções diretas da retina e dita o ritmo conforme o ciclo claro/escuro ambiental imposto de 22h; ao mesmo tempo, a região dorsomedial, que está sob coordenação relativa em relação a região ventrolateral, gera o ritmo semelhante ao livre curso (de la Iglesia e cols., 2004). Esse fenômeno é possível devido a anatomia dos NSQs, uma vez que as gap junctions desse núcleo parecem acoplar os neurônios somente dentro de cada subdivisão, mas não entre elas (Colwell, 2000). Aparentemente o funcionamento ótimo do sistema circadiano é resultante da integração da informação entre os diferentes osciladores do sistema. A integração entre ritmos com diferentes períodos deve acontecer pela interação entre os osciladores, ou seja, deve haver acoplamento entre os osciladores para que seja gerado um ritmo. Chamamos de acoplamento a capacidade de um oscilador com período e fase próprios de ajustar-se aos outros osciladores com os quais interage. O sucesso e/ou estabilidade desse acoplamento depende do período característico de cada um dos osciladores e da força do acoplamento. Quando a força de acoplamento é relativamente fraca, os deslocamentos na relação de fase entre ambos os osciladores manifestam-se como mudanças no período do sistema acoplado, o qual é conhecido como coordenação relativa (Golombek e AguilarRoblero, 2003). A diferença entre acoplamento e sincronização consiste em que no último caso um ciclo ambiental age de forma unidirecional com um oscilador biológico, enquanto no acoplamento, um oscilador biológico age de forma recíproca com outro oscilador do mesmo organismo. Apesar de uma possível semelhança entre os mecanismos, os substratos morfológicos podem ser completamente diferentes nos dois processos. 77 É válido considerar o fenômeno de batimento descrito por Granada e cols. (2011), o qual sugere que um único oscilador pode gerar mais de um ritmo, ou seja, um oscilador pode ter diferentes outputs. O fenômeno do batimento se dá pelo aparecimento de uma modulação mais lenta na amplitude da saída do oscilador. Os autores realizaram uma simulação computacional em conjunto com a análise de dados experimentais sobre a dessincronização forçada em T22 e sugeriram uma superposição linear de mais de um sinal de saída de um único oscilador, que não possuem uma relação de fase e sim um padrão, um período determinado, que acabam por se sobrepor e gerar os componentes rítmicos observados na dessincronização forçada. Na simulação feita por Granada e cols. (2011), além dos dois componentes encontrados por nós, foi descrito um componente extra com período próximo de 28h. Refinetti (2006) em seu livro “Circadian Phisiology” critica a existência de mais de um oscilador central. Segundo o autor, os mamíferos apresentam um único oscilador central, pois há vários anos tentam explicar a dessincronização interna dos ritmos circadianos e só conseguem mostrar ou a dessincronização do ritmo do ciclo sono/vigília ou a dessincronização de outras variáveis fisiológicas (como o ritmo da temperatura corporal), mas nunca todos os fenômenos em conjunto. Além de dizer que estes estudos nunca são replicáveis. Realizamos um experimento em paralelo avaliando a temperatura central dos animais em dessincronização forçada, o qual gerou um artigo ainda não publicado, mas coloquei nesta tese como anexo V para quem tiver curiosidade em lê-lo. Neste trabalho fizemos a simulação computacional do modelo levando em conta a variável temperatura central. Nosso modelo reproduziu a mesma variação aumentada da amplitude de saída da região dorsomedial dos NSQs, levando-nos a supor que esta alta variabilidade da amplitude na saída deve gerar instabilidade na fase dos ritmos circadianos. Como diz McClung (2011) “it’s all about timing”! Enquanto o sistema de temporização circadiano é internamente controlado, ele é fortemente influenciado pelo ambiente (ou por pistas ambientais). Portanto, alterações no ciclo claro/escuro, 78 disponibilidade de nutrientes e exposição ao estresse certamente vão ter impacto na ritmicidade biológica. Os circuitos de recompensa e do humor no cérebro tem seu próprio ritmo e são sincronizados pelo NSQ, mas podem ser dessincronizados do NSQ em certas condições. Clock genes têm um importante papel no circuito relacionado ao humor, não somente em regular a atividade circadiana, mas também na sincronização ultradiana dos disparos neuronais dentro e entre estruturas cerebrais. Essa sincronização entre várias estruturas cerebrais, peptídeos e hormônios no organismo, juntamente com o ambiente são cruciais para manutenção do humor saudável. Adicionalmente às explicações fisiológicas, sob um olhar mais antroposófico essa “dessincronização” nos humanos muitas vezes é causada porque a atividade humana tende ao futuro, planejamos o futuro esperando que ele se torne o presente perdendo a orientação de futuro normal (“vou fazer isso depois de: me formar, de ganhar dinheiro, de casar..."), e criando uma “tensão apetitiva”, uma perspectiva iminente. A temporalidade é um reino vazio que precisa ser constantemente preenchido, o que é ignorado na medida em que nossas necessidades não vão sendo atendidas, porque nunca está satisfeita com o momento seguinte como cada momento por sua vez gera a potencialidade do outro, ainda por vir. Pacientes com depressão severa tem pensamentos e desejos, mas esses pensamentos produzem uma reação reversa e se sentem totalmente desencorajados de seguir adiante, produzindo uma sensação de desilusão. O futuro é caracterizado fenomenologicamente como abertura à mudança e movimento, sem essa abertura, o futuro parece estático e determinístico, e o resultado pode muito bem ser a desesperança, o desespero e até um sofrimento eterno por estar vivo. Por outro lado, em fase de mania, os indivíduos tem a percepção da “eternidade” do momento completamente inversa como achar que esse momento de grandiosidade sentida durante a mania durará para sempre (Willie, 2005). Para finalizar, um pensamento filosófico que resume o nosso modelo: “a melancolia envolve um sofrimento derivado da incompatibilidade entre o tempo 79 subjetivo e o tempo objetivo, o qual é estranho a temporalidade do seu “eu”, e é visto como um passo para trás, ou uma paralisação da temporalidade subjetiva, causando uma dessincronização entre a percepção do tempo interno e externo originando grande estresse psicológico e, quando em excesso, até transtornos psiquiátricos” (Kupke, 2000). 80 6. CONCLUSÕES O objetivo desta tese foi parcialmente cumprido, pois embora não haja uma relação causal direta entre o modelo aqui apresentado e o transtorno bipolar, encontramos um número considerável de evidências de oscilações previsíveis no humor. Os animais em dessincronização forçada apresentam características como estresse, avaliação de risco prejudicada e redução na exploração vertical independentemente da fase em que estão. Encontramos alternância de comportamentos dos animais em CAP e NCAP, mostrando que a ansiedade apresentada pelos animais em NCAP se alterna ciclicamente com a alta atividade locomotora e comportamento antidepressivo encontradas nos animais em CAP. Portanto, a validade aparente foi contemplada para o comportamento semelhante à mania e não contemplada para o comportamento depressivo Constatamos o efeito do lítio no alongamento do período apresentado pelos animais dissociados, contudo não foi possível constatar se a atividade locomotora dos animais pós-tratamento volta aos níveis basais. Não sendo possível contemplar a validade preditiva. A neuroquímica dos animais dissociados mostra-se alterada, apresentando um maior número de receptores 5HT1A na região da amígdala, mostrando uma possível redução na ativação da amígdala nestes animais. Dessa forma, podemos afirmar que contemplamos uma parte da validade do construto. Em suma, podemos concluir que o modelo de dessincronização forçada contempla parcialmente os critérios de validação para um modelo de oscilações no humor e traz novas informações para o estudo dos modelos animais deste transtorno. Estudos mais aprofundados deste modelo podem levar a uma direção de transtorno bipolar de ciclagem rápida. 81 7. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ABRATA – Associação Brasileira de Familiares, Amigos e Portadores de Transtornos Afetivos. Acessível por www.abrata.org.br link: transtornos afetivos. Acessado em setembro de 2009. Akimova E, Lanzenberger R, Kasper S. The Serotonin-1A Receptor in Anxiety Disorders. Biol Psychiatry. 2009; 66:627–635. Alex KD e Pehek EA. Pharmacologic mechanisms of serotonergic regulation of dopamine neurotransmission. Pharmacol Ther. 2007 February ; 113(2): 296–320. Andrade LH, Wang Y-P, Andreoni S, Silveira CM, Alexandrino-Silva C, et al. (2012) Mental Disorders in Megacities: Findings from the São Paulo Megacity. 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The mania-like exploratory profile in genetic dopamine transporter mouse models is diminished in a familiar environment and reinstated by subthreshold psychostimulant administration. Pharmacology, Biochemistry and Behavior 96 (2010) 7–15. 93 ANEXOS ANEXO I – Rotina do MatLab para auxiliar a determinação das fases clear all dado=xlsread('T22Bruna.xls'); dado=dado-300; dado=-dado; %% tam=fix(length(dado)/264); dado=dado(1:tam*264,:); act=reshape(dado,264,tam,26); %% clear a for j=1:26 for i=1:tam a(i,j)=sum(act(1:132,i,j))-sum(act(133:end,i,j)); end end %% close all for x=1:26 plot(a(:,x+2)) hold on plot(a(:,x+2),'o') figure hold off end 94 ANEXO II – Hibridização in situ In Situ Hybridization with Radioactive Probes Wear clean gloves throughout the procedure to protect yourself and to prevent RNAse contamination. Day 1 - Prehybridization Buffers 0.1M Phosphate buffered paraformaldehyde (Prepare fresh or a day before): 700 ml of DEPC-treated water 40g of PARA (EMS 19210) 10.931g dibasic sodium phosphate (Na2HPO4, MW 142, Sigma S-3264) 3 beads of NaOH (Sigma S-0889) Heat on a stirring plate to no more than 55oC. Once clear add: 2.76g Monobasic sodium phosphate (Na2H2PO4, MW 120g, Sigma S-3139) Cool, adjust pH to 7.3 at 4ºC and bring volume to 1 liter with DEPC-treated water Filter using sterilizing filters with vacuum or Wattman paper and keep at 4ºC until used 20X SSC: 175.3g NaCl 88.2g sodium citrate (tribasic dihydrate, MW 294.1) 800ml DEPC-treated water Adjust to pH7.0 and volume to1 liter with DEPC-treated water Make dilutions to desired strength TEA HCl/Acetic Anhydride (this solution, without the acetic anhidride, can be stored for up to 2 weeks at room temperature) 18.56g TEA HCl 9g NaCl 20 pellets of NaOH 95 800ml DEPC-treated water pH to 8.0 and adjust volume to 1 liter with DEPC-treated water Add 125 µl of acetic anhydride per 50 ml TEA HCl (just before use) Procedure 1. Remove slides from –80 freezer and lay them out on slide racks or Copeland jars 2. Fix by dipping in 0.1M Phosphate buffered 4% paraformaldehyde. 5 min. 3. Rinse in 2XSSC. 2 min. 4. Acetylate in 0.25% Triethanolamine HCl/Acetic Anhydride with 125µl acetic anhydride per 50 ml TEA HCl added just before using. 10 min. 5. Quick rinse in 2X SSC. 6. Dehydrate/delipidate as follows: 1 min 70% EtOH (prepared in DEPC-treated water) 1 min 80% " " 2 min 95% " 1 min 100% 5 min CHCl3 1 min 100% EtOH 1 min 95%" 7. Air dry Slides may be returned to freezer for storage until hybridization at a later time. How long they can be stored there, or whether freezing is necessary, needs to be empirically determined. We always continue the procedure on the same day. Hybridization Buffers Hybridization buffer Ingredients: 20X SSC Deionized formamide (Sigma # F-9037) 96 100X Denhardt's: 10g Ficoll (Type 400, Pharmacia) 10g polyvinylpyrollidone 10g BSA (fraction V) H2O to 500ml filter; store at -20C 50X Denhardt’s can be also purchased from Sigma (# D-2532) Yeast tRNA (Roche catalog # 0109495) resuspended at 25mg/ml in DEPC Sheared single stranded DNA (Sigma catalog # D-7656), diluted to 10mg/ml in DEPC-treated water. To shear DNA, draw up and down12 times with 17-22 gauge syringe and store at –20ºC. Just before added to the hybridization buffer, heat 5 minutes in boiling water and chill quickly in wet ice. Dextran sulfate (500,000MW, Sigma) 5M DTT in 0.01 M sodium acetate (pH5.2) Mix 77.25mg DTT in 100µl sodium acetate immediately before use. Do not use frozen aliquots of DTT. (Note: this makes enough for only 10ml of hybridization buffer after the 1:100 dilution you will do below). 0.01 M sodium acetate can be prepared and stored at room temperature for several months. Preparation: Add 2 g dextran sulfate to 4.5 ml DEPC water in 50 ml Falcon tube Vortex, let stand 10 min vortexing every now and then Add 10 ml deionized formamide, vortex, heat to 37ºC until in solution, vortexing now and then (use relatively fresh formamide) Add 2 ml of 20X SSC. Add 200 µl 100X Denhardt's (if using 50X add 400 µl) 97 Add 400 µl tRNA (25mg/ml) Add 800µl sheared single stranded DNA Adjust volume to 20 ml with DEPC-treated water, vortex, store at -20C (can be stored for up to 3 months) Immediately before using add to the needed volume of 5M DTT for a dilution of 1:100 Procedure 8. Prehybridize with a solution containing 50% 4XSSC/50% deionized formamide for 15 to 60 minutes at 37ºC. This step is done by adding approximately 50 µl of solution to the slide and coversliping it. From this step on use extreme care when handling radioactive solutions. 9. Remove the coverslip, tap the slide gently to remove the solution from step 8 and replace with 25-35µl of hybridization buffer containing 108 cpm of probe per ml. Hybridize overnight at 55 ºC under cover slips. Mix 77.25mg DTT in 100µl sodium acetate immediately before use. Do not use frozen aliquots of DTT. (Note: this must account for 1% of the final volume of hybridization buffer). 0.01 M sodium acetate can be prepared and stored at room temperature for several months. Adjust volume per slide to the size of the coverslip (30 µl enough for a 22X22 mm coverslip.) Use humidified chamber (Tupperware is OK), putting a couple of blue screwcaps from 50-ml Falcon tubes containing water so that tissue does not dry out. Depending on container it may be necessary to further seal with parafilm. Day 2 - Posthybridization Buffers Solution containing 50% formamide (NOT deionized, Sigma # F-7503) and 50% 2X SSC. Prepare as much as needed for the slide racks or Copeland jars and place in bath at 52ºC. Prepare the solutions below in the RNAse room, and with miliQ water not treated with DEPC. RNAse buffer: 100 ml 5M NaCl 1 ml 1M Tris, pH 8.0 98 2 ml 0.5M EDTA, pH 8.0 Adjust volume to 1 liter. It does not need to be pHed. RNAse buffer can be stored at room temperature for several months. Just before use, add 100 mg RNase A (Sigma # R-4642) per liter of buffer. Prepare only the volume needed 20X SSC Prepared as above Procedure Steps 10 to 15 are done with RNAse-free solutions (prepared with DEPC-treated water) in the RNAse free area Before starting prepare enough 50% formamide/50% 2XSSC for steps 14 and 15 and place them in water bath at 52ºC 10. Set up 3 beakers of 1X SSC solution 11. Cool and remove coverslips on top of a piece of bench paper (for radioactive waste). If coverslips are stuck, dip slides in 1XSSC and revise your procedure to seal containers. 12. Soak and swirl slides briefly in first, second and third beaker and put back on rack or Copeland jar, containing 1XSSC. 10 min. 13. Do a second wash in 1XSSC. 10 min. Depending on how many slides you have these 10 minute washes will be of variable times for each slides but this does not affect the results according to our experience. Up to this step, slides hybridized with different probes cannot not be placed in the same container. 14. Wash in 50% formamide/50% 2X SSC @ 52ºC. 5 min. 15. Wash in 50% formamide/50% 2X SSC @ 52ºC. 20 min. As soon as you start this step, set RNAse water bath (in RNAse room) to 37ºC and put in a container with enough RNAse buffer 16. Rinse 2 times in 2X SSC at room temperature for 1 min each. These steps can be done in the RNAse room if more convenient. 99 All rinses up to this step should be treated as radioactive and should be drained in radioactive sink letting tab water running. From this step on it is not necessary to use RNAse-free water 17. Add 3-30mg/L RNAse (less w/ newer RNAse) to the buffer and incubate in RNAse solution at 37ºC. 30 min. This and all steps below are carried out in the RNAse room. Use RNAse pipettes only. 18. Wash 2 times in 2XSSC at room temperature. 5 min each. As soon as you take slide racks out of the bath, set bath to 52ºC. The 5-minute washes can be extended if time is needed for bath to reach 52ºC 19. Wash in 50% formamide/50% 2X SSC @ 52ºC. 5 min. 20. Wash in ethanol series as follows: 70% ethanol in 0.1XSSC. 3 min. (70 ml 100%ETOH, 30 ml 0.1X SSC) 80% ethanol in 0.1XSSC. 3 min. 95% ethanol in 0.1X SSC. 3 min. Quick wash in ddH2O 70% ethanol in water. 3 min. 21. Air dry 100 Anexo III – Sequências das probes utilizadas para a Hibridização in situ Receptor 5HT1A CAGANGCGTTACGTATCGGATCCAGAATTCGTGATTTTGAGTGAACAGGAAGGGTCCTGTAAGCCCTACACTCTTCCTCCA CTTCTTCCTTCTCCATCACCACCACTATTACCACCACTACCACCACCATCATCATCATCAGCGGCAGAACTTGCACTTGATG ATCTTCTTAAAAGCGTTTTGAAAGTCTTTGTTGAAATAAGCATAAATAACTGGGTTGAGCAGGGAGTTGGAGTAGCCTAGCC AGTTAATTATGGCACCCAACAACTCAGGCATGTGGCAACTGCTCTCACAGAAAGGTAGGACCAGGGCCACAATGAAAAAGG GCAGCCAGCAGAGGATGAAGGTGCCCATGATGATGCCCAGTGTCTTCACTGTCTTCCTCTCACGGGCCAAGGCCATCTTG CGCTTTGCCTCAGCAGTGCGCTCATTTTTTCTCTCCAAGCAGGCGGGGACATAGGAGGTAGCTCCTGATTCGCTGGGCAG AGGAAGGTGCCCTTTGGAGTTGCCCACTCGATGCACCTCGATCACCTCCAGGGTGGCGTCGTCCTCACCCTGTCTCACCG CCCCATTAGCGCACGGAGTCCCCACCGCCCTGTTCTCAGCACTGCGCCTGCAGTCCCCACTACCTGGCTGACCATTCAGG CTCTTCTTGGGGGGCGGGGCCGACGATGTTCCGAAGCTGGTGCCCGCTCCCTTCTTTTCCACCTTCTTGACCGTCTTGCG GATTCGGAAGCGCGCGGCTCTGAAGATGCGCCCATAGAGGACCAGCATGAGCAGCAGCGGAATATAGAAATCTGAATTCG TCGACAAGCTTCTCGAGCCTAGGCTAGCTCTAGACCACACGTGTGGGGGCCCGAGCTCGCGGCCGCTGTATTCTATAGTG TCACCTAAATGGCCGCACAATTCACTGGCCGTCGTTTTACAACGTCGTGACTGGGAAAACCCTNNNTTACCCAACTTAATCG CCTTGCAGCACATCCCCCTTTCGCCAGCTGGCGTAATAGCGAANANGCCCGCNNCGATCNCCCTTCCCAACAGTNGCGCA GCCTG Receptor 5HT2A CACGTGTGGTCTAGAGCTAGCCTAGGCTCGAGAAGCTTGTCGACGAATTCAGATTAGGAAACCCAGCAGCATATCAGCTAT GGCAAGTGACATCAGGAAATAGTTGGTGGCATTCTGCAGCTTTTTCTCTAGGGACACTGCCATGATGACCAGTATGTTTCCC CCAATGGTGAGAATAATCACGACAGTTGTCAATAAAGCAGACCAGTTTTTTTCCTGGAGATGAAGAATGGAGAGGCATGTC GGTGGGAGGTACCCTTCGCAGGAGAGGTTGGTTCTGTTTTCAGCATCAATTGTCCAGTTCGAGGCTTCGGAAGTGTTAGCA TCCCTGGAGTTGAAGTCATTAGGGTAGAGCCTCGAGTCGTCACCTAATTGCATTAAGGAGTTTGGAATTGAGCTCAGGGAG ATATTGTCTTCACAGAGAATTTCCATGTCTAAGCCGGAAGTTGTAGCAGATGAAGTGTGGAGAGACTAGCGAGTCATAGCC GGGGCTCACCATTCATCTTTACGTCCTGGAGCTATCACGAATTCTGGATCCGATACGTAACGCGTCTGCAGCATGCGTGGT ACCGAGCTTTCCCTATAGTGAGTCGTATTAGAGCTTGGCGTAATCATGGTCATAGCTGTTTCCTGTGTGAAATTGTTATCCG CTCACAATTCCACACAACATACGAGCCGGAAGCATAAAGTGTAAAGCCTGGGGTGCCTAATGAGTGAGCTAACTCACATTA ATTGCGTTGCGCTCACTGCCCGCTTTCCAGTCGGGAAACCTGTCGTGCCAGCTGCATTAATGAATCGGCCAACGCGCGGG GAGAGGCGGTTTGCGTATTGGGCGCTCTTCCGCTTCCTCGCTCACTGACTCGCTGCGCTCGGTCGTTCGGCTGCGGCGAG CGGTATCAGCTCACTCAAAGGCGGTAATANGGTTATCCACAGAATCAGGGGATAACGCNNAAAGAACATGTGAGCAAANNN CAGCAAAGGCCAGGAACCGTAAAAAGCCGCGTTGCTGGCGTTTTTCCATANNTCNCCCCCNGACGAGCATCACAAAATCG ACGCTCAAGTCNGAGNNGCGAACCCGACAGGAC 101 Anexo IV – Protocolo da Imunohistoquímica para 5HT1A + DAB Day 1 - post-fixed with ice-cold 4% paraformaldehyde in 0.1 M phosphate buffer pH7.3 for 5 min - washed in PBS (3x5 min) - wash in PBS containing 0.4% Triton X-100 (3x5 min) - Blocking: incubated in PBS containing 0.4% Triton X-100 and 6% normal goat serum (NGS) and 0.5% H2O2 for 1h at RT. - sections were incubated overnight at 4 °C with the rabbit polyclonal anti-5HT2A antibody (Santa Cruz, USA) at a concentration of 2 ug/ml (1:200) diluted in PBS containing 0.4% Triton X-100 and 4% NGS. Day 2 - Following primary antibody incubation, slides were washed in PBS (3x5 min) - incubated for 30 min at RT with a biotinylated goat anti-rabbit (Vector) at a concentration of 5g/ml (1:400) diluted in PBS containing 1.5% NGS. - Following three rinses in PBS (3x5 min) - slides were exposed to the ABC reagent (DakoCytomation) for 30 min at RT. - Slides were then washed in PBS (3x5 min) - stained with 3,3=-diaminobenzidine (DAB) for 3-4 min at RT. - Finally, they were washed, dry,coverslipped with Permount and analyzed microscopically under a bright-field microscope. 102 ANEXO V – EFEITO DA SEQUÊNCIA EM TESTES COMPORTAMENTAIS Koike, BDV; Leite, MD; Ribeiro, JM; Gonçalves, BSB; Araujo JF Departamento de Fisiologia, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Brasil Resumo Vários estudos tem sido realizados a fim de acessar parâmetros comportamentais indicativos do estado de humor dos animais como ansiedade, anedonia, depressão e atividade locomotora. Cada um dos testes avalia certas características e nos traz determinadas informações, sendo muitas vezes complementares às obtidas em um outro teste. O mais comumente utilizado é uma bateria de testes para avaliar as respostas comportamentais dos animais em experimentação, mas como saber que um teste não interfere no resultado do outro? Para responder essa questão, realizamos o presente trabalho, onde avaliamos o efeito de ordem nos testes comportamentais. Além disso, verificamos as diferenças comportamentais com intervalos entre os testes de 24h ou de 7 dias. Os testes utilizados em nossa bateria foram: Labirinto em Cruz Elevado (LCE), Campo Aberto (CA), Nado Forçado (NF) e Preferência Claro-Escuro (PCE), aplicados em diferentes ordens em ratos Wistar machos, que foram acomodados em grupos de 5 indivíduos, tendo acesso ad libitum a água e ração. Com os resultados obtidos, podemos sugerir que é importante determinar a ordem na qual serão realizados os testes para evitar a interferência nos resultados. Os nossos dados sugerem que os testes com características mais aversivas e estressantes sejam os últimos. No caso da bateria de testes utilizada em nosso estudo, sugerimos como ideal a sequência: CA – LCE – PCE – NF. 103 1. Introdução O estudo das ciências comportamentais nos permite acessar variados aspectos biológicos do animal, sendo possível observar como essas variáveis se integram e interagem. Estudos mais invasivos não são capazes de ser realizados em humanos, como por exemplo estudos de neuroquímica, e por este motivo modelos animais são utilizados a fim de responder tais perguntas. Segundo van der Staay (2006), modelo animal é um organismo vivo usado para estudar as relações cérebro-comportamento sob condições controladas, com a finalidade de ter um insight, para permitir previsões sobre essas relações em humanos. Os testes comportamentais nos trazem informações sobre o fenótipo dos animais e, conforme seu desempenho, podemos inferir qual estado de ânimo está mais caracterizado pelo comportamento apresentado. Devemos assumir que os sintomas apresentados pelos animais são comparáveis aos sintomas dos humanos. Entretanto não pode ser provado que os animais experimentam, por exemplo, a ansiedade como os humanos, mas é aceitável que alguns padrões comportamentais dos roedores indiquem ansiedade (Ohl, 2003). Cada um dos testes nos traz informações sobre determinado comportamento. Porém, um único teste pode não nos trazer informações suficientes para que possamos classificar um comportamento. Entretanto um conjunto de testes, combinados, pode caracterizar melhor o estado de ânimo quando agrupamos os resultados de uma bateria de testes comportamentais para que se tenha uma coleção de características que indiquem o real estado afetivo do animal. Há estudos que utilizam poucas tarefas para verificar as respostas comportamentais, o que pode acarretar em resultados falso positivos ou falso negativos (van Gaalen e Steckler, 2000). Assim, o uso de uma bateria de testes comportamentais se torna vantajoso, uma vez que várias respostas serão testadas em um mesmo animal, o que permite que tenhamos uma visão mais abrangente do que está correlacionado a determinado fenótipo. Por este motivo a utilização de uma bateria de testes é a forma mais comum para avaliar respostas comportamentais dos animais em experimentação (Crawley e Paylor, 1997; Cryan e Holmes, 2005; 104 Chourbaji et al. 2008; Pandey et al. 2009; Lad et al. 2010). Além disso, a utilização do mesmo animal em vários testes reduz o número total de animais necessários para completar um projeto (McIlwain et al., 2001). Geralmente é eleita uma determinada sequência para que os testes sejam realizados em uma ordem de tal modo que os testes menos invasivos sejam executados antes dos mais invasivos. Pois a desvantagem de estudar várias respostas comportamentais no mesmo animal é a possibilidade de haver efeitos de um teste que influencie as respostas do teste subsequente (McIlwain et al., 2001). Alguns estudos de caracterização fenotípica em camundongos preocuparam-se em avaliar o efeito de ordem dos testes comportamentais (Crawley e Paylor, 1997; Lad et al. 2010; McIlwain et al., 2001; Paylor et al. 2006). Em ratos, somente um estudo foi publicado até o momento (Blokland et al., 2012). A fim de avaliar o efeito de ordem dos testes comportamentais em ratos, realizamos o presente trabalho, onde verificamos qual a melhor ordem para ser realizada uma bateria de testes, com intervalos de 24h ou de 7 dias entre os testes. Os testes utilizados em nossa bateria foram: Campo Aberto (CA), Nado Forçado (NF), Labirinto em Cruz Elevado (LCE) e Preferência Claro-Escuro (PCE). 2. Materiais e métodos 2.1.Animais experimentais Utilizamos 40 ratos machos da linhagem Wistar, com idade de 3 meses no início do experimento, nascidos em cativeiro, oriundos do Laboratório de Neurobiologia e Ritmicidade Biológica do Departamento de Fisiologia, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal RN, Brasil. Este trabalho foi aprovado pelo Comitê de Ética no Uso de Animais da UFRN. Durante o período de experimentação os animais foram mantidos em grupos de 5 animais por gaiola em ambiente com temperatura e humidade controladas, sob um ciclo claro/escuro de 12/12h (início às 6h). 105 Os animais foram subdivididos em 8 grupos, com 5 animais cada. Cada grupo realizou a bateria de testes de avaliação comportamental segundo a ordem descrita na Tabela 1. Tabela 1. Grupos experimentais e respectiva sequência de testes. Grupos 1º Teste 2º Teste 3º Teste 4º Teste 24h 7dias G1 G5 CA LCE NF PCE G2 G6 LCE CA NF PCE G3 G7 NF CA LCE PCE G4 G8 NF LCE CA PCE CA – teste de Campo Aberto; PCE – teste de Preferência Claro – Escuro; NF – teste de Nado Forçado; LCE – teste de Labirinto em Cruz Elevado O intervalo estabelecido entre os testes dos grupos 1 a 4 foram de 24h. Já nos grupos de 5 a 8 o intervalo entre os testes foi de 7 dias. 2.2.Handling Uma vez que os animais têm de ser manipulados para serem colocados nos aparatos de teste, situação que aumenta o seu nível de estresse, o procedimento de handling permite a habituação dos animais ao contato e a manipulação pelo experimentador, diminuindo o estresse causado pela manipulação e diminuindo, consequentemente, a sua interferência no resultado dos testes de avaliação comportamental. O procedimento de handling consiste no manuseio dos animais por curtos períodos de tempo, e foi realizado em duas seções de 5 minutos por animal, com 3 dias de intervalo, uma semana antes do início dos testes de avaliação comportamental. 106 2.3. Testes de Avaliação Comportamental Os testes foram iniciados às 18:30h, correspondente ao início da fase de escuro, momento no qual os ratos apresentam maior atividade. Cada grupo experimental realizou um único teste por dia, durante quatro dias consecutivos para os grupos 1 a 4 ou durante 4 semanas para os grupos 5 a 8, sendo realizado um teste por semana. Todos os testes foram realizados no escuro total (<1 lux). Os testes foram filmados, com câmara de infravermelho, para posterior análise dos resultados. 2.3.1. Campo aberto (Insight® modelo EP 154) O teste de campo aberto foi realizado numa arena circular, cercada de paredes acrílicas opacas, base em acrílico de 100 cm x 80 cm dividida em quadrantes centrais e periféricos, com dimensões: 50 cm (altura) x 60 cm (diâmetro). Os animais foram colocados inicialmente no centro do aparato e observados por 5 minutos. Foram aferidos: o deslocamento total (nº de quadrantes), o tempo gasto (segundos) e o deslocamento no centro e na periferia do aparato. 2.3.2. Labirinto em Cruz Elevado O labirinto em cruz elevado é composto por quatro braços de madeira medindo, cada um, 50 cm de comprimento por 12 cm de largura. Dois dos braços são circundados lateralmente por paredes opacas de 40 cm de altura e dispostos perpendicularmente aos outros dois braços que permanecem abertos, sem paredes laterais. Todo o conjunto permanece elevado a 50 cm do solo. Os animais iniciam o teste no centro do aparato de frente para o braço aberto. O teste tem a duração de 5 minutos. Para avaliar o nível de ansiedade foram aferidos: o tempo que o animal passa nos braços abertos, nos braços fechados e no centro do aparato, bem como número de entradas em cada um destes locais para 107 avaliar a locomoção. 2.3.3. Nado Forçado (Insight® modelo EP 180) O teste do nado forçado foi realizado num aparato cilíndrico de acrílico (Altura x Frente x Lado: 61,5 cm x 44 cm x 47 cm), com capacidade para 39 litros de água, cheio até 15 cm antes da borda, para que o animal não consiga fugir e nem tocar o fundo do aparato. A temperatura da água foi aferida (~26°C) e em seguida os animais foram colocados no aparato e observados por 5 minutos. A água do cilindro foi trocada a cada animal. Neste teste, o animal é exposto a estímulos aversivos e estressantes e é mensurada a latência para o “comportamento de desespero”. 2.3.4. Preferência Claro - Escuro (Insight® modelo EP 157) O equipamento é composto por dois compartimentos separados por uma divisória com passagem entre o lado claro (revestido com chapa de acrílico branco A x L x P (cm) 21 x 45 x 41) e o lado escuro (revestido com chapa de acrílico preto A x L x P (cm) 21 x 35 x 41), e tampa de acrílico transparente. Os animais iniciaram o teste no lado claro do aparato e foram observados por 5 minutos. Para avaliar o nível de ansiedade e o comportamento exploratório foram aferidos: o tempo de permanência e o deslocamento em cada lado, bem como o número de transições entre os dois lados. 2.3.5. Registro da temperatura corporal Para analisarmos a temperatura central do animal durante o teste do nado forçado, foi realizado um experimento paralelo, utilizando 10 ratos adicionais (que não foram utilizados na bateria de testes). A temperatura foi registrada utilizando um termistor (iButton®) que foi implantado na região peritoneal do animal. Os dados 108 foram adquiridos a cada minuto durante 24h antes do teste, durante o nado forçado e durante 10h depois do teste. 2.4. Processamento e análise de dados As medidas aferidas descritas acima foram analisadas por meio do teste ANOVA de uma via, comparando-se o desempenho entre os grupos, seguida do post-hoc de Tukey. Observadas as diferenças no desempenho, foi avaliada qual a melhor ordem para serem realizados os testes, onde um tenha a menor interferência possível sobre o outro. Os resultados mostrados correspondem a média e erro padrão. 3. Resultados No presente estudo pudemos observar que os testes realizados em sequência causam certa interferência no resultado do teste seguinte, tanto com intervalo de 24h quanto com intervalos maiores, de 7 dias entre eles. No teste do campo aberto (CA) não houve diferença entre os grupos quanto a atividade locomotora. Todos os grupos exploraram igualmente o aparato independente do teste antecedente e do intervalo entre eles. O deslocamento na periferia do CA também foi semelhante entre os grupos. Entretanto, quando avaliamos o deslocamento no centro do aparato, os animais do G2 apresentaram menor exploração do centro durante o teste quando comparados com G1 (13.20±2.21 x 24.20±3.22 quadrantes, p=0.027), como podemos ver na Figura 1A. O intervalo de 24h entre os testes não mostrou prejuízo no desempenho dos animais no teste do LCE, tanto a exploração do labirinto quanto o tempo de permanência em cada um dos braços apresentaram resultados semelhantes em todos os grupos que realizaram o teste com este intervalo. Mesmo com o intervalo de 7 dias entre os testes, a atividade exploratória não é diferente entre os grupos, o que significa que todos os grupos apresentaram semelhanças quanto o número de entradas em cada um dos braços do aparato. Todavia, nos grupos que fizeram 7 109 dias de intervalo entre os testes foi observada redução no tempo em que os animais do G8 permaneciam no centro do labirinto quando comparados ao G5 (64.40±8.31s x 109.00±10.73s, p=0.046), como mostra a Figura 1B. A fins comparativos, fizemos uma análise do desempenho entre todos os grupos, mesmo com intervalos diferentes. O que encontramos foi que o G8 permanece menos tempo no centro do LCE do que o grupo G4 (64.4±8.31 x 105.8±8.02, p=0.02) (Figura 3A), mesmo tendo realizado a bateria de testes na mesma sequência, o intervalo entre eles também se mostrou relevante para a realização dos testes. Foi mensurado o tempo de latência para imobilidade no teste do nado forçado (NF). Não foram encontradas diferenças entre nenhum dos grupos. Já no teste de PCE, o G1 teve maior deslocamento no compartimento claro do que os animais do G2 (67.80±3.8 x 49.60±3.9; p=0.02). E com uma semana de intervalo, os grupos não apresentaram diferenças quanto ao deslocamento, mas sim no tempo em que permaneceram em cada um dos compartimentos. O G5 permaneceu mais tempo no compartimento claro do que os grupos G6 e G8, respectivamente (G5:184.64±9.4 x G6:138.80±7.3, p=0.008; G5 x G8:148.80±7.2, p=0.04). A temperatura registrada durante o NF chegou ao valor mínimo de 79.78+1.16% daquela em que o animal se encontrava antes do teste. Isso representou uma queda de 7.41+0.48ºC. Esse mínimo foi alcançado 12.57+0.52 minutos após o fim do teste. Após 52.7+3.82 minutos do início do teste a temperatura alcançou 97% do nível basal. 4. Discussão A ideia inicial deste trabalho surgiu da hipótese de que testes comportamentais realizados em sequência podem interferir nos resultados apresentados, e dessa forma buscamos a melhor ordem na qual poderíamos realizar a bateria proposta. Encontramos respostas comportamentais diversas de acordo com a ordem executada. 110 O melhor teste para se iniciar a bateria de testes comportamentais é o campo aberto, pois não foi observada nenhuma alteração nos resultados dos testes realizados a posteriori deste. Já o teste do LCE mostrou-se ansiogênico, pois os animais que primeiramente realizaram o LCE apresentaram ansiedade aumentada quando o teste seguinte era o CA. A ansiedade neste grupo pode ser aferida pela redução da exploração dos quadrantes centrais do aparato. O teste do CA é baseado na propriedade inerente aos ratos chamada tigmotaxia, que consiste na aversão a lugares abertos e expostos. Preferencialmente os ratos ficam em cantos ou lugares entocados, pois como são presas de uma gama de predadores, essa propriedade aumenta suas chances de sobrevivência. Quando o animal tem sua ansiedade reduzida, expõe-se mais ao “perigo”, por outro lado, quando a ansiedade está aumentada, como no caso do grupo 2, os animais apresentam menor exploração da região central do CA. Esse resultado sugere que o LCE não é uma boa escolha para iniciar-se a sequência de testes. O resultado do teste PCE corrobora com esta afirmação uma vez que os animais que iniciaram a bateria de testes pelo LCE apresentaram ansiedade aumentada quando comparados aos animais do G1. O compartimento claro deste aparato é aversivo para os ratos que são animais noturnos, o que significa que quando a ansiedade está aumentada a tendência é a redução na exploração da região mais aversiva do PCE. Vimos que o teste do nado forçado causa efeito subsequente no teste LCE. Os animais apresentam avaliação do risco reduzida no LCE quando precedido pelo NF, pois permanecem menos tempo no centro do aparato avaliando o novo compartimento a ser explorado. Portanto, este estudo sugere que teste do NF deve ser executado após o teste do LCE. Ao mesmo tempo o NF não deve ser o primeiro teste realizado na bateria comportamental, pois mesmo após uma semana os animais apresentam redução no tempo em que permanecem no centro do LCE avaliando o risco quando comparados ao G5. Outra evidência para excluir o NF como primeiro teste da bateria é o resultado encontrado no teste PCE, mesmo após 3 semanas os animais do G8 111 apresentam ansiedade aumentada neste teste quando comparados aos resultados do G5, mensurada pelo tempo de permanência no compartimento claro deste aparato. Há disponível na literatura alguns estudos relatando o efeito de ordem em camundongos, principalmente em testes de animais transgênicos (p.ex. Paylor et al., 2006; McIlwain et al., 2001; Voikar et al., 2004). Em ratos, o primeiro estudo realizado para testar o efeito de ordem numa bateria de testes comportamentais foi recentemente publicado e apresentou um resultado bastante diferente do encontrado por nosso grupo (Blokland et al., 2012). A mesma linhagem de ratos (Wistar) foi utilizada, porém a metodologia foi bastante diferente. Blokland e colaboradores (2012) encontraram efeito de ordem somente quando os animais foram repetidamente expostos ao mesmo teste, o que sugere que o efeito de ordem encontrado pode ter sido influenciado pela repetição no mesmo teste. Neste estudo não realizamos treinamento prévio nos animais a fim de acessar o desempenho dos animais na sua primeira exposição ao teste. Outra observação é que nem todas as combinações possíveis foram testadas, portanto diferentes efeitos de ordem podem ser encontrados. O que ficou claro neste estudo é que o teste do NF é o mais estressor entre eles, o que foi confirmado com o registro da temperatura. Porsolt e colaboradores (1978) sugerem que a hipotermia registrada durante o nado forçado seja devido ao stress causado pelo teste. Cinco minutos no teste é suficiente para elevar o nível de corticosterona sérica, um marcador de situação estressante (Abel, 1993). Com isso desaconselhamos a utilização desse teste antes de qualquer outro. A execução dos testes comportamentais em forma de uma bateria de testes permite a redução no tempo necessário de meses (dependendo do número de testes) para semanas, poupando tempo e dinheiro, sem afetar na qualidade dos resultados, além de possibilitar a execução de uma bateria de testes completa. Reduzindo o intervalo entre os testes, também é reduzido o potencial para problemas associados com o aumento na idade dos animais (Paylor et al., 2006). 112 Outra vantagem no uso da bateria de testes é a redução significativa no número de animais utilizados. Com os resultados obtidos no presente trabalho, podemos sugerir que é importante determinar a ordem na qual serão realizados os testes para evitar o viés nos resultados. Os nossos dados sugerem que os testes com características mais aversivas e estressantes sejam os últimos. No caso da bateria de testes utilizada em nosso estudo, sugerimos como ideal a sequência: CA – LCE – PCE – NF. 5. Referências Abel EL. (1993). Physiological Correlates of the forced swim test in rats. Physiology & Behavior 54:309-317. Blokland A, Oever S, Gorp D, Draanen M, Schmidt T, Nguyen E, Krugliak A, Napoletano A, Keuter S, Klinkenberg I (2012). The use of a test battery assessing affective behavior in rats: Order effects. Behavioural Brain Research 228:16–21. Chourbaji S, Brandwein C, Vogt MA, Dormann C, Mueller R, Drescher KU, Gross G, Gass P (2008). Dopamine receptor 3 (D3) knockout mice show regular emotional behavior. Pharmacological Research 58: 302–307. Crawley JN, Paylor R (1997). A proposed test battery and constellations of specific behavioral paradigms to investigate the behavioral phenotypes of transgenic and knockout mice. Hormones Behavior 31:197–211. Cryan JF, Holmes A (2005). The ascent of mouse: advances in modeling human depression and anxiety. Nat Rev Drug Discov 4:775-790 Lad HV, Liu L, Paya-Cano JL, Parsons MJ, Kember R, Fernandes C, Schalkwyk LC (2010). Behavioural battery testing: Evaluation and behavioural outcomes in 8 inbred mouse strains. Physiology & Behavior 99:301–316. McIlwain KL, Merriweather MY, Yuva-Paylor LA, Paylor R (2001). The use of behavioral test batteries: effects of training history. Physiology & Behavior 73:705–717. Ohl, F (2003). Testing for anxiety. Clin. Neurosci. Res. 3, 233-238. Pandey DK, Yadav SK, Mahesh R, Rajkumar R (2009). Depression-like and anxiety-like behavioural aftermaths of impact accelerated traumatic brain injury in rats: A model of comorbid depression and anxiety? Behavioural Brain Research 205:436–442. Paylor R, Spencer CM, Yuva-Paylor LA, Pieke-Dahl S (2006). The use of behavioral test batteries, II: Effect of test interval. Physiology & Behavior 87: 95–102. Porsolt RD, Anton G, Blavet N, Jalfre M (1978). Behavioral despair in rats: a new model sensitive to antidepressant treatments. Eur J Pharmacol 47:379-391. van der Staay FJ (2006). Animal models of behavioral dysfunctions: basic concepts and classifications, and an evaluation strategy. Brain Res Rev. Aug 30;52(1):131-159. Review. van Gaalen MM, Steckler T (2000). Behavioural analysis of four mouse strains in an anxiety test battery. Behavioural Brain Research 115:95–106. Voikar V, Vasar E, Rauvala H (2004). Behavioral alterations induced by repeated testing in C57BL/6J and 129S2/Sv mice: implications for phenotyping screens. Genes Brain Behav ;3:27–38. 113 Anexo VI – Efeito da interação do ciclo claro-escuro de 22 horas e o período endógeno na relação de fase entre os ritmos circadianos de atividade/repouso e temperatura central Autores: Bruno da Silva Brandão Gonçalves1,2, Breno Tercio Santos Carneiro1, Bruna Del Vechio Koike1, João Miguel Gonçalves Ribeiro1,John Fontenele Araújo1 1 – Departamento de Fisiologia, Centro de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Norte –UFRN, Natal (RN), Brasil. 2 – Instituto Federal Sudeste de Minas Gerais – Campus Barbacena, Barbacena (MG), Brasil Periódico no qual será submetido: Chronobiology International RESUMO Ratos submetidos a ciclos claro-escuro com o período de 22h apresentam dois componentes rítmicos com períodos diferentes (1320 e maior do que 1440 minutos) na atividade locomotora. Sugere-se que cada um desses componentes seja gerado por uma região diferente dos núcleos supraquiasmáticos. Simulações computacionais em conjunto com a análise de dados da atividade locomotora mostraram que esses componentes podem ser gerados por um único oscilador através de dois fenômenos: a modulação ou a superposição linear. Na superposição linear ocorre um fenômeno conhecido como batimento, que é o aparecimento de uma modulação lenta na amplitude da saída do oscilador. Um comportamento semelhante a esta modulação foi encontrado no ritmo da atividade locomotora e de secreção de melatonina. Aqui nós mostramos essa modulação através da análise da 114 variação na amplitude da temperatura central. Para isso comparamos o ritmo da temperatura central de animais submetidos ao ciclo CE de 22 horas com o grupo controle (expostos ao ciclo CE 24h). Além da variabilidade na amplitude da temperatura decorrente da superposição linear, nós encontramos uma maior instabilidade no ângulo de fase entre a atividade e a temperatura. Esses resultados ajudam a discutir os efeitos da dessincronização interna que ocorre nos seres vivos, permitindo interpretar que ultrapassar o limite da sincronização pode acarretar diversas consequências para o organismo, provocando a quebra da ordem temporal interna levando ao surgimento de doenças. 1. INTRODUÇÃO Os ritmos circadianos são oscilações de aproximadamente 24 horas, observadas desde o nível bioquímico até o cognitivo (Kondo et al., 1993; Campos et al., 2001; Wright et al., 2012). Esses ritmos são controlados por um sistema de temporização interno, e sincronizados por pistas ambientais (para revisão ver Schibler et al., 2003). Entende-se que o sistema de sincronização circadiana em mamíferos é composto de múltiplos osciladores arranjados de forma hierárquica, sendo o núcleo supraquiasmático (NSQ) do hipotálamo seu oscilador central (Ralph et. al., 1990, Schwartz, 2002). Estudos recentes mostram que os NSQs apresentam pelo menos duas regiões morfologicamente e funcionalmente distintas: região ventrolateral (vl-NSQ) e região dorsomedial (dm-NSQ) (4). A região vl-NSQ recebe diretamente a informação luminosa através do trato retino-hipotalâmico (RHT) (Moore e Lenn, 1972). Entre essas regiões do NSQ, há uma densa projeção de vl para dm com pouca inervação recíproca (Leak et. al., 1999), o que sugere que a região vl é sincronizada pelo ciclo claro-escuro e ajusta a fase de dm (Miyake et. al.,2000). Sob um regime de ciclo CE próximo ao limite inferior de sincronização, ratos apresentam dissociação do ritmo de atividade locomotora resultando na apresentação de dois componentes rítmicos: um deles sincronizado ao ciclo CE imposto e outro não sincronizado que segue num período maior que 24h 115 (Campuzano e cols., 1998). A exposição dos animais a diferentes fotofases variando o período entre 22 ou 23h gera uma gama de padrões de atividade locomotora diferentes, desde o arrastamento total do ritmo (ajustado ao ciclo claro/escuro imposto) até o ritmo em livre curso (expressão do componente endógeno), o que indica que o processo de sincronização do sistema de temporização circadiano pode ser gradualmente distribuído entre o componente circadiano dependente de luz e o componente em livre curso, sugerindo que populações distintas de osciladores podem estar em diferentes níveis de (des) acoplamento (Cambras et al, 2004). Este mesmo efeito pode ser observado em outros ritmos circadianos, tais como o de temperatura central e o de sono-vigília (Campuzano et. al., 1998; Vilaplana et. al., 1997; Cambras et. al., 2007). Em um trabalho elegante analisando expressão gênica de Per1 e Bmal1, de la Iglesia et al. (2004) mostraram a relação entre a expressão dos dois componentes rítmicos da atividade locomotora e as subdivisões do NSQ – vl e dm. O componente sincronizado ao CE mostrou-se associado à expressão gênica da região vl-NSQ e o componente com período maior que 24 h está associado à dm-NSQ. Utilizando um modelo matemático de dois osciladores acoplados, Schwartz et al. (2009) mostraram que o oscilador na região dm-NSQ apresenta uma coordenação relativa em ratos mantidos em CE de 22 h. Além disso, mostraram que a liberação de melatonina apresenta uma variação na sua amplitude que pode estar associada ao sinal de saída da região dm-NSQ. Em outras palavras, a atividade ocorre quando o animal deveria estar em repouso (misaligned phase). A estabilidade da relação de fase entre diferentes ritmos circadianos está reduzida. No presente trabalho, investigamos o comportamento da relação de fase entre dois ritmos dependentes do NSQ, o ritmo de atividade-repouso e o ritmo da temperatura central. Para isso utilizamos simulações computacionais e registros experimentais de ratos mantidos em ciclo CE simétricos de 24 e 22 horas. 116 2. MATERIAL E MÉTODOS 2.1. Modelo computacional O modelo utilizado nesse trabalho foi o descrito por Gonçalves et al. (2010) que simula dois osciladores, cada um representando duas regiões do NSQ. O oscilador vl-NSQ recebe a informação luminosa e sua saída é projetada para o oscilador dm-NSQ. A saída utilizada para nossas análises será do oscilador dmNSQ que simula a região dorsomedial. O sistema foi submetido ao ciclo claro-escuro (CE) de 24 horas (T24) e de 22 horas (T22) de forma semelhante aos experimentos. Cada oscilador foi descrito pelo modelo de Goodwin (1965) composto por três variáveis (X, Y e Z). Nesses osciladores a variável X representou a concentração de um gene relógio fictício, Y a proteína produzida por X e Z um inibidor da produção de X. No modelo adaptado por Gonçalves et al. (2010) a luz tinha o efeito de aumentar a taxa de produção do gene relógio X. Os parâmetros foram ajustados para que os períodos endógenos dos osciladores vl-NSQ e dm-NSQ fossem iguais a 24.25 e 24.4 horas respectivamente. 2.2. Procedimentos experimentais Condições gerais Foram utilizados 18 ratos Wistar (2-4 meses de idade) no estudo. Os animais foram mantidos individualmente em gaiolas de polipropileno dentro de módulos de isolamento com controle do ciclo CE e da temperatura (23 ± 1°C). Água e ração (Labina, Purina®) foram disponibilizadas à vontade durante todos os experimentos. A atividade motora foi registrada através de sensores infravermelhos e a temperatura corporal através de sensores ibutton (Maxim Integrated Products, Inc.). Todos os protocolos experimentais foram aprovados pelo Comitê de Ética para o Uso de Animais da Universidade Federal do Rio Grande do Norte (projetos nºs. 026/2009, 021/2010, 038/2010). Este estudo foi realizado de acordo com os princípios éticos da Sociedade Brasileira de Ciência em Animais de Laboratório (SBCAL). 117 Procedimentos cirúrgicos Os animais foram anestesiados através de injeções intraperitoneais de cetamina (100 mg/kg) e xilazina (10 mg/kg). Os sensores de temperatura foram inseridos na cavidade peritoneal através de uma incisão de aproximadamente um cm. Após a cirurgia, foram administradas gentamicina (0,1 ml) e dexametasona (0,1 ml) e os animais permaneceram em recuperação por pelo menos 10 dias até o início dos experimentos. Os mesmos procedimentos foram utilizados para retirar os sensores após o fim dos experimentos. Experimentos Um grupo de 10 ratos foi sincronizado em CE 12:12 por 18 dias (grupo T24) enquanto outro grupo de oito ratos foi submetido ao protocolo de dessincronização forçada (T22), que consiste num ciclo CE 11:11 por 30 dias até apresentarem dissociação do ritmo de atividade locomotora. Este grupo foi registrado por mais 100 dias consecutivos para registro e avaliação do ritmo em dessincronização forçada. Análise de dados Os dados de temperatura foram registrados durante 28 dias e para a análise foram filtrados utilizando uma média móvel cuja janela foi de 10 horas. A amplitude foi calculada como o valor máximo da temperatura subtraído pelo valor pelo mínimo. Para cada animal foi calculado o coeficiente de variação (CV), definido como o desvio padrão das amplitudes diárias da temperatura por sua média. O CV é calculado para cada animal a partir das N amplitudes. Sendo N o número de dias registrados. O registro completo da atividade locomotora em T22 foi utilizado para calcularmos as frequências e períodos presentes no sinal. Para isso foi utilizado o periodograma Sokolove-Bushel (Sokolove e Bushel, 1978). O cálculo da frequência de batimento (fb) foi feito através da fórmula (f1-f2). Sendo f1 a frequência do zeitgeber (1/79200 Hz) e f2 a frequência do ritmo em livre curso. 3. RESULTADOS Uma inspeção visual dos actogramas e a geração de periodogramas a partir do registro de atividade e temperatura indicam que todos os animais sincronizaram 118 ao ciclo CE de 24 horas (Figura 1). Todos os animais submetidos ao ciclo CE de 22 apresentaram dois componentes rítmicos de atividade locomotora:um com período médio de 1320 min e o outro de 1500±10.13 min (Figura 2). Avaliando o ritmo circadiano da temperatura, somente um animal apresentou dois componentes rítmicos e sete animais apresentaram um único componente rítmico em livre-curso com período de 1498.75±13.56. Figura 1 – Gráficos representativos dos registros experimentais de atividade locomotora, temperatura corporal e da simulação computacional em T24. 119 Figura 2 – Gráficos representativos dos registros experimentais de atividade locomotora, temperatura corporal e da simulação computacional em T22. A temperatura foi filtrada utilizando uma média móvel de 10 horas (figura 3A e 3B). Uma inspeção visual mostra que a variação na amplitude é menor em T24 quando comparado com T22 (figura 3). Esse resultado foi obtido nos registros experimentais (figura 3A e 3B) e nas simulações computacionais (figuras 3C e 3D). A partir desses valores calculamos o CV da amplitude da temperatura nas duas condições de CE. Em T24 o CV foi igual a 0.1504±0.0454 e em T22 a média foi igual a 0.2983±0.0423. O teste T mostrou que há uma diferença significante entre os dois grupos (p < 0.001). 120 Figura 3. Registros experimentais da temperatura central filtrada pelo método de média móvel em T24 (A) e em T22(B). Saída do oscilador dm-NSQ simulado em T24 (C) e em T22 (D). Tanto para os dados experimentais e computacionais a variação na amplitude da temperatura é menor em T24 (A e C) do que em T22 (B e D). Calculamos o ângulo de fase entre as acrofases do ritmo circadiano da temperatura central e do ritmo de atividade-repouso para cada período de 24 horas para ambos os grupos. A média e desvio padrão do ângulo de fase foi igual a 1.21±0.36 h e 2.36±0.77 h para o ciclo CE de T24 e T22 respectivamente. O teste T mostrou que há uma diferença significante entre os dois grupos (p<0.001). A partir dos ângulos de fases dos animais calculamos a variância desses valores. Encontramos que para T24 a média das variâncias foi de 2.50±1.28 h e para T22 foi de 5.70± 2.34 h (p = 0.0019). 4. DISCUSSÃO Neste trabalho, pudemos observar que ratos submetidos ao protocolo de dessincronização forçada em ciclo CE simétrico de 22 horas, apresentam maior variação na amplitude diária quando comparada aos animais expostos ao ciclo CE 121 de 24 horas, tanto do ritmo de atividade locomotora quanto do ritmo da temperatura central. O mesmo resultado foi encontrado na simulação matemática do modelo. Como acontece experimentalmente, em T24 ambos os osciladores se sincronizaram ao estímulo externo confirmando a sincronização, ou o acoplamento, entre as duas regiões dos NSQs sob o ciclo CE de 24 horas. Por outro lado, a expressão de genes relógios durante o protocolo de dessincronização forçada (T22) mostra que o oscilador vl-NSQ se sincroniza ao CE enquanto o dm-NSQ apresenta um período semelhante aos animais em livre curso. Em nossas simulações, o comportamento do oscilador vl-NSQ seguiu o achado experimental permanecendo sincronizado a luz. Quanto à região dm-NSQ, os dois períodos encontrados na saída deste oscilador não foram encontrados nos dados de la Iglesia et al. (2004) devido à técnica utilizada. No referido trabalho, a expressão dos genes relógios foi analisada em um único dia para cada animal. Essa amostragem impossibilita a detecção de mais de um componente rítmico na expressão dos genes relógios no oscilador dmNSQ. Granada et al. (2011) mostraram que um único oscilador é capaz de gerar diferentes componentes rítmicos e que isso deve ser uma explicação complementar para a dessincronização forçada. Para os autores um oscilador pode apresentar dois componentes espectrais independentes através da superposição linear de duas ondas. A primeira seria referente ao período endógeno do oscilador e a segunda dependente do ciclo CE. Se pensarmos que o dm-NSQ atua como principal saída do NSQ, o padrão observado na simulação de T22 seria devido ao seu período intrínseco somado a saída de vl-NSQ que está sincronizado ao ciclo CE de 22 horas. A superposição linear de dois períodos gera um fenômeno chamado batimento que é típico de osciladores no limite de sincronização (Granada et al. 2011). O batimento gera uma modulação lenta na saída do oscilador com uma frequência igual à composição das frequências do zeitgeber e do oscilador. Os valores encontrados para o período dessa modulação na atividade foi próximo ao calculado, com um erro de 10+2%. A variação encontrada na amplitude da temperatura em T22 pode ser explicada por esse efeito de batimento e também ocorre no ritmo de secreção de melatonina (Schwartz et al., 2009). A compressão e 122 descompressão na amplitude da curva de secreção de melatonina persistem em escuro constante. Com isso, é possível concluir que o ritmo de secreção de melatonina é controlado pelo oscilador dm-NSQ, cuja saída no modelo apresentou uma maior variação na amplitude. Assim foi descartada a hipótese de que a variação na concentração de melatonina é somente dependente do mascaramento pela luz. Figura 4. Influência do NSQ sobre os osciladores centrais e periféricos na construção dos ritmos circadianos. Em T22 a saída da região dm-NSQ simulada é apresentada em (A) com uma variação na amplitude tendo o seu máximo em 1 e o mínimo em 2. Essa variação altera a estabilidade na sincronização que ocorre entre os múltiplos osciladores que formam o sistema de temporização circadiano (B), sendo que em 1 a sincronização do ritmo do NSQ é maior do que em 2. Quando a saída do dm-NSQ é baixa a diferença de fase entre os ritmos deve ser maior como demonstrado em (C). Através do nosso modelo computacional reproduzimos essas condições e encontramos essa variação na amplitude da saída de dm-NSQ em T22. O modelo computacional utilizado por Schwartz et al. (2009) apresentou resultados semelhantes aos nossos e como ambos os modelos não simulam o efeito inibitório da luz, reforçamos a ideia de que essa variação na amplitude dos ritmos tem uma relação com a saída do oscilador. A alta variabilidade na amplitude da saída do NSQ em T22 deve gerar uma instabilidade na fase dos ritmos circadianos como temperatura central, ciclo sono-vigília, liberação de hormônios e outros, dificultando a sincronização, como mostrado na figura 4. Acreditamos que quando a saída do 123 NSQ é reduzida há uma perda na capacidade desse marcapasso em sincronizar os osciladores circadianos no regime CE de 22 horas (figura 4B). Da mesma forma a maior estabilidade na relação de fase dos ritmos em T24 se deve a pouca variação na amplitude da saída do NSQ, facilitando a sincronização do oscilador (a geração dos ritmos) com os osciladores periféricos. O sistema circadiano parece estar envolvido também na regulação de processos cognitivos (Tapp e Holloway, 1981; Valentinuzzi et al, 2008; Craig e McDonald, 2008; Loh et al., 2010). Especificamente, mostramos que os animais com dissociação do ritmo circadiano apresentam déficits de memória em um tipo específico de tarefa, a esquiva passiva (Neto et al., 2008). Talvez, a dessincronização circadiana ou o desalinhamento entre ritmos circadianos, os seja, a desordem temporal interna, prejudique funções cognitivas e também a saúde numa forma geral, uma vez que várias evidências também mostram que a dessincronização circadiana pode estar ligada ao desenvolvimento de doenças (Martino et al., 2008; Preuss et al., 2008) Consequências da alteração/dessincronização circadiana têm sido reportadas também em seres humanos (Cho et al., 2000). Além disso, transtornos psiquiátricos, por exemplo, apresentam uma série de sintomas relacionados a distúrbios de ritmo, como a dessincronização do ciclo sono-vigília que é observada em praticamente 80% dos indivíduos acometidos (Maurizi et al., 2000). Os pacientes depressivos apresentam um avanço da fase do sono e acarretam uma relação de fase anormal com diversos outros ritmos, quase sempre resultando em um episódio depressivo (Wehr et al., 1979). Esses estudos, entre outros, mostram a estreita relação entre o sistema de temporização com graves transtornos como os psiquiátricos, ressaltando assim a relevância da ritmicidade circadiana na saúde e no bom funcionamento do organismo. Em alguns casos os seres humanos são submetidos a mudanças no ciclo CE que os colocam em seu limite de sincronização como constantes jet-lag e trabalho em turno por exemplo. As alterações fisiológicas que acontecem podem estar relacionadas à variação na saída do oscilador principal e na instabilidade de fase entre os ritmos circadianos. 124 REFERÊNCIAS 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. 21. 22. Albus H, Vansteensel MJ, Michel S et al. A GABAergic mechanism is necessary for coupling dissociable ventral and dorsal regional oscillators within the circadian clock. Curr Biol 2005; 15:886–893. Benedetti, F., Dallaspezia, S., Colombo, C., Pirovano, A., Marino, E., Smeraldi, E., 2008. 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