BIOQUIMICA BÁSICA

UNIDADE UNIVERSITÁRIA
Faculdade de Ciências e Tecnologia
CURSO
Fisioterapia
HABILITAÇÃO
PROGRAMA
DE
ENSINO
DA
GRADUAÇÃO
OPÇÃO
DEPARTAMENTO RESPONSÁVEL – Física, Química e Biologia (Profa. Dra. Maria de Lourdes Corradi
Custódio da Silva)
IDENTIFICAÇÃO
CÓDIGO
DISCIPLINA OU ESTÁGIO
SERIAÇÃO IDEAL
Bioquímica Básica
1o. Ano
OBRIG/OPT/EST.
PRÉ E CO-REQUISITO
ANUAL/SEM
Obrigatória
1o. Sem.
CRÉDITOS
CARGA HORÁRIA
DISTRIBUIÇÃO DA CARGA HORÁRIA
TOTAL
TEÓRICA
PRÁTICA
OUTRAS
05
75
45
30
NÚMERO MÁXIMO DE ALUNOS POR TURMA
AULAS TEÓRICAS
AULAS PRÁTICAS
AULAS TEORICO/PRATICAS
OUTRAS
45
OBJETIVOS (AO TÉRMINO DA DISCIPLINA O ALUNO DEVERÁ SER CAPAZ DE:)
Teórica: entender os níveis de organização das biomoléculas e suas interações metabólicas nos
organismos superiores de modo a possibilitar o entendimento de suas funções fisiológicas ou
fisiopatológicas em bases moleculares e energéticas
Prática: saber utilizar propriedades físicas e químicas das biomoléculas como base para o isolamento,
caracterização, dosagem e investigação de suas atividades biológicas.
CONTEÚDO PROGRAMÁTICO (TÍTULO E DISCRIMINAÇÃO DAS UNIDADES)
Teórica:
1. Aminoácidos; proteínas fibrosas e globulares; enzimas
2.Carboidratos: monossacarídeos, oligossacarídeos, polissacarídeos, proteoglicanas e glicoproteínas
3. Lipídeos simples e complexos; membranas biológicas
4. Bioenergética e introdução ao metabolismo
5. Ciclo de Krebs, cadeia de transporte e elétrons e fosforilação oxidativa
6. Glicólise e gliconeogênese
7. Síntese e degradação do glicogênio
8. Oxidação e biossíntese dos lipídeos
9. Degradação dos aminoácidos e ciclo da uréia
10. Integração do metabolismo
Prática:
1. Fotocolorimetria e espectrofotometria
2. Caracterização de uma enzima mitocondrial: desidrogenase succínica
3. Cinética enzimática: cinética enzimática da invertase
4. Extração e caracterização de polissacarídeos
METODOLOGIA DO ENSINO
A programação será desenvolvida sob a forma de aulas teóricas e práticas. Para tanto serão utilizados
métodos didáticos atualizados, que objetivam transmitir conhecimentos com a efetiva participação do aluno,
despertando no mesmo, o interesse pelo aprendizado e a verificação na prática, tanto quanto possível, dos
aspectos abordados.
Serão utilizados quadro negro, giz, retroprojetor e películas de acetato.
As aulas práticas serão executadas em grupos de quatro alunos. Após execução do trabalho haverá
discussão dos resultados.
Serão utilizados equipamentos e vidraria necessários às atividades em laboratório.
BIBLIOGRAFIA BÁSICA
1. Champe, P.C. & Harvey, R.A. Biochemistry, J.B. Lippincott Company, Philadelphia, 1994, 2 ed., 443p.
2. Conn, E.E. & Stumpf, P.K. Introdução à bioquímica, Ed. Edgard Blücher Ltda, SP, 1980, 4ed., 525p.
3. Villela, O, Bacila, M. E Tastaldi, M. Técnicas e Experimentos de Bioquímica. Rio de Janeiro,
Guanabara Koogan, 1972.
4. Voet, D. & Voet, J. Biochemistry, John Wiley & Sons, Inc, N.Y., 1990, 1223p.
Com o objetivo de facilitar os trabalhos práticos, serão fornecidas aos alunos apostilas preparadas pela
disciplina.
BIBLIOGRAFIA COMPLEMENTAR
1. Departamento De Bioquímica da UFPR, Bioquímica: aulas práticas, Scientia et Labor, Curitiba, 1987,
116p.
2. Devlin, T.M. Textbook of Biochemistry with clinical correlations, ed. Wiley-Liss, N.Y., 1997, 4 ed.,
1186p.
3. Gilbert, H.F. Basic Concepts in Biochemistry: a student’s survival guide, McGraw-Hill, Inc. USA, 1992,
298p.
4. Montgomery, R.; Conway, T.W. & Spector, A.A. Bioquímica uma abordagem dirigida por casos, Artes
Médicas, S.P., 1994, 5 ed., 477p.
5. Murray, R.K.; Granner, D.K.; Mayes, P.A. & Rodwell, V.W., Harper’s Biochemistry, Appleton & Lange,
Connecticut, 1990, 22ed., 720p.
6. Nelson, D.L. & Cox, M.M. Lehninger Principles of Biochemistry, Ed. Worth Publishers, N.Y., 2000, 3
ed., 1152p.
7. Roskoski, R. Bioquímica, ed. Guanabara Koogan, R.J., 1997, 513p.
8. Stryer, L. Bioquímica, ed. Guanabara Koogan, R.J., 1992, 3 ed., 881p.
CRITÉRIO DE AVALIAÇÃO DA APRENDIZAGEM
A avaliação será feita tendo como elementos informativos:
a) provas escritas sobre assuntos abordados no curso teórico e prático
b) avaliação do comportamento individual (dedicação e eficiência) nos trabalhos de laboratório bem como
apresentação de relatórios.
O aluno será considerado aprovado com média igual ou superior a 5,0 e 70% de freqüência.
EMENTA (Tópico que caracteriza as unidades dos programas de ensino)
Teórica:
1. Aminoácidos: estrutura e propriedades ácido-base; proteínas globulares e fibrosas: hemeproteínas
globulares e proteínas fibrosas: colágeno; enzimas: nomenclatura, propriedades das enzimas, como
elas trabalham, fatores
que afetam a velocidade de uma reação química, equação de Michaelis-
Mentem, inibição da atividade enzimática.
2. Carboidratos: classificação e nomenclatura dos carboidratos, estrutura dos monossacarídeos, ligação
glicosídica, oligossacarídeos, polissacarídeos de reserva e estruturais, proteoglicanas e glicoproteínas.
3. Lipídeos: classificação, acidos graxos, lipídeos simples e complexos, membranas biológicas.
4. Bioenergética: energia livre e ATP como carregador de energia
5. Ciclo do ácido cítrico: reacões do ciclo; cadeia de transporte de elétrons: organização da cadeia,
reações da cadeia de transporte de elétrons e liberação da energia livre durante o transporte de
elétrons; fosforilação oxidativa: sistema de transporte de membrana.
6. Glicólise: transporte da glicose para as células, reações da glicólise, caminhos alternativos do piruvato,
rendimento energético da glicólise; reações e regulação da gluconeogênese.
7. Síntese e degradação do glicogênio: regulação enzimática e hormonal desses caminhos.
8. Oxidação dos ácidos graxos: secreção e utilização dos lipídeos da dieta, mobilização dos ácidos graxos
estocados e oxidação dos ácidos graxos, corpos cetônicos.
9. Degradação dos aminoácidos e ciclo da uréia
10. Integração do metabolismo: papel dos principais órgãos nos três metabolismos principais. Regulação
hormonal
Prática:
1. Elaborar curvas de calibração e estabelecer a sensibilidade de um método fotocolorimétrico, relacionar o
método às situações onde pode ser aplicado tendo como exemplo a dosagem de proteínas do leite pelo
método da reação do biureto e resolver problemas específicos como cálculos de diluições e de
concentrações.
2. Demonstrar a técnica de isolamento de mitocôndrias, caracterizar a presença da desidrogenase
succínica na fração mitocondrial e demonstrar a inibição enzimática competitiva.
3. Demonstrar o estudo da cinética enzimática usando a invertase como exemplo, avaliar a atividade
enzimática pela formação de produtos, verificar efeitos de tempo, concentração de enzima, pH e
concentração de substrato sobre a atividade da invertase e determinar o Km.
Demonstrar a extração e caracterização de polissacarídeos de materiais biológicos: amido de batata e
glicogênio de fígado, identificar o amido e glicogênio como carboidratos e evidenciá-los através de reações
de coloração e precipitação.
HORÁRIO DE ATENDIMENTO AO ALUNO:
APROVAÇÃO:
DEPARTAMENTO
CONSELHO DE CURSO
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CONGREGAÇÃO
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