GENOTOXIDADE DA TRIANCINOLONA E DO NITRADO DE PRATA EM LINFOCITOS UTILIZANDO O TESTE COMETA* CLAUDIO CARLOS DA SILVA, APARECIDO DIVINO DA CRUZ Resumo: este estudo trata-se da avaliação da genotoxidade induzida pela preparação medicinal do acetonido de triancinolona e o nitrato de prata em linfócitos T utilizando o ensaio cometa. A triancinolona tem grande poder antiinflamatório, enquanto que o nitrato de prata que pode ser utilizado como cauterizador para eliminação de tumorações epidérmicas. estudos, Goiânia, v. . 339, 39, n. n. 1, 2, p. p. 83-87, 155-163, jan./mar. abr./jun. 2012. 2012. Palavras-chave: Mutagênese. Ensaio Cometa. Triancinolona. Nitrato de Prata. O s estudos dos processos pelos quais as células sofrem mutações, tanto espontaneamente como por indução devido à exposição aos agentes ambientais, datam do início do século XX. Os resultados desses estudos coincidiram com uma época em que a comunidade científica procurava entender quais os grupos de agentes, presentes no ambiente, poderiam causar danos genéticos, e se essas alterações poderiam, eventualmente, causar efeitos adversos à saúde humana. Neste período foram levantadas também, as questões a respeito das relações entre mutágenos e carcinógenos, bem como aos efeitos mutagênicos causados por estes em células germinativas. Para enfrentar esse desafio, bioensaios toxicogenéticos começaram a ser desenvolvidos desde o mais simples aos mais sofisticados. Atualmente, novas ferramentas genéticas estão disponíveis para o estudo de genotoxicidade e mutagenicidade, incluindo o uso de animais transgênicos, bem como o uso de marcadores moleculares, microarranjos, estudos genômicos, proteômicos e de bioinformática (RIBEIRO et al., 2003). Os agentes mutagênicos são responsáveis por alterações na sequência do DNA. Podem influenciar no número e no surgimento de mutações associadas ao desenvolvimento de neoplasias. Uma célula poderá acumular mutações que, se em número elevado, poderão determinar a perda do controle de sua divisão, participando assim, dos mecanismos de iniciação e/ou promoção do câncer (MOTA, 2007). Quando as alterações decorridas na estrutura do material genético ocorrem por processos celulares normais, as mutações são conhecidas como espontâneas, e pela exposição do organismo aos agentes químicos, físicos ou biológicos, as mutações são denominadas induzidas (POERSCH, 2005). Dentre os agentes físicos com atividade mutagênica, podem-se destacar as radiações ionizantes e o calor, entre os biológicos temos as infecções virais, enquanto que os agentes químicos destacam-se os alimentos contendo conservantes. Os hábitos pessoais, como o tabagismo e alcoolismo, assim como tratamentos quimioterápicos e radioterapia são considerados importantes fatores de risco ao aumento da taxa de mutação induzida (POERSCH, 2005; POÇA, 2005). O teste cometa é considerado como um biomarcador de danos no genoma que tem como finalidade identificar lesões ocorridas no material genético de forma espontânea ou induzidas pela exposição aos agentes químicos, físicos e biológicos, sendo que as alterações no DNA, em geral, são deletérias aos organismos e podem levar a consequências severas e irreversíveis para a saúde (BICKHAM et al., 2000; MARTINEZ, CÓLUS, 2002). O ensaio cometa foi desenvolvido por Sing et al. (1988) e visa detectar quebras simples e/ou duplas e sítios álcali-lábeis nas moléculas de DNA, que são induzidas por agentes alquilantes, intercalantes e oxidantes (SILVA et al., 2003). Na técnica do ensaio cometa as células utilizadas são individualizadas em agarose com baixo ponto de fusão e gotejadas sobre uma camada de agarose com ponto de fusão normal, em uma lâmina de microscopia, posteriormente submetidas à lise, depois à eletroforese e coradas com brometo de etídio ou nitrato de prata. O resultado é observado ao microscópio óptico de fluorescência ou de luz branca, respectivamente. As células que não apresentam DNA danificado mantêm o núcleo intacto e arredondado. Enquanto que, células com DNA resultante de quebras simples ou múltiplas, o DNA migra para fora do núcleo, formando uma cauda, similar a um cometa, correspondendo à desestruturação nuclear. A extensão do DNA na cauda do cometa está relacionada com o grau do dano ocorrido na célula (FAIRBAIRN et al.,1995). As vantagens de se empregar a técnica do cometa incluem: (1) a coleta de dados em nível de células individuais; (2) o uso de uma pequena quantidade de células para análise; (3) possibilidade de aplicação em qualquer população de células eucarióticas isoladas (TICE; VASQUEZ, 1999). Na avaliação do dano são considerados principalmente o tamanho da cauda em relação ao núcleo e/ou a porcentagem de DNA na cauda do cometa (LEE; STEINERT, 2003). São classificados como classe 0, quando nenhum dano ocorre, até a estudos, Goiânia, . 39, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. ENSAIO COMETA NA AVALIAÇÃO GENOTÓXICA classe 4 com o máximo de dano. Esta análise pode ser feita visualmente com o auxílio da microscopia ou com a utilização de softwares específicos para a análise dos cometas (BENINCÁ, 2006). estudos, Goiânia, . 339, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. TRIANCINOLONA E NITRATO DE PRATA NO TRATAMENTO DE HEMANGIOMAS O tratamento de hemangiomas, tumor benigno vascular, que acomete crianças e adultos, tem se mostrado bastante variável, sendo utilizados inúmeras formas, procedimentos e medicamentos, dentre eles está a corticoterapia sistêmica, modalidade geralmente aplicada aos tumores em maior grau de desenvolvimento e tamanho que ameaçam os órgãos próximos. Acredita-se que os corticóides promovam a interrupção do crescimento e/ou induzam a redução dos hemangiomas por seu efeito vasoconstrictor e inibidor da angiogênese. Por essa razão, os melhores resultados são observados quando o tratamento é instituído na fase proliferativa do tumor, ou seja, durante o primeiro ano de vida. A dose preconizada é de dois a 3mg/kg/dia de prednisona ou prednisolona por via oral em tomada única, matinal. A via parenteral pode ser utilizada, quando há impedimento da via oral, com hidrocortisona ou a metilprednisolona em doses equivalentes. Doses maiores, eventualmente empregadas em casos mais graves, implicam considerável aumento dos efeitos colaterais (GONTIJO et al., 2003). O acetonido de triancinolona, ou simplesmente triancinolona, é utilizado há anos em vários campos da medicina, principalmente em dermatologia, otorrinolaringologia e reumatologia. Pesquisas indicam que o fármaco alia propriedades terapêuticas potentes, possibilidades múltiplas de administração e preço baixo. Como todo corticosteróide, a triancinolona (C21H27FO6) tem grande poder antiinflamatório. Também é um medicamento de depósito, isto é, tem meia-vida longa e, dependendo do veículo ao qual estiver associada, pode fazer efeito por semanas no tecido onde foi injetada. Uma das características mais importantes da droga é seu efeito estabilizador da micro-circulação da região onde atua, reduzindo o extravasamento líquido por capilares anormais e, provavelmente, reduzindo o processo de neovascularização, manifestação clínica importante de algumas de doenças como os hemangiomas (UNIVERSOVISUAL, 2009). O nitrato de prata é um composto químico de fórmula molecular AgNO3, comercialmente, costuma chamar-se também de cáustico lunar, ainda que para uso como reagente analítico em grau de pureza de 99,8% ponderal. Em medicina pode ser utilizado como cauterizador para eliminação de ligeiras tumorações epidérmicas. Apresenta amplo emprego na ciência analítica e na técnica, na indústria e na medicina (LIDE, 2008). A terapia conjunta da triancinolona com o nitrato de prata para o tratamento de hemangiomas tem apresentado bons resultados considerando a regressão desses tumores, porém não há estudos suficientes para comprovar essa eficácia quando utilizados de forma associada, sobretudo, nenhuma evidência da ação mutagênica e/ou citotóxica desses compostos Os corticóides indicados ao uso intralesionais sofre controversa, e como argumento os que se opõem seu emprego dizem que o efeito da droga é possivelmente sistêmico, e não local. Essa hipótese fundamenta-se em relatos de regressão de hemangiomas à distância da lesão infiltrada e na ocorrência de supressão supra-renal (GONTIJO et al., 2003). O objetivo desse estudo é avaliar danos genômicos em linfócitos T, células do sangue periférico humano, expostos a triancinolona combinada com o nitrato de prata, terapia utilizada durante o tratamento de hemangiomas, utilizando o ensaio cometa como sistema teste. MATERIAL E METODOS Preparo Medicinal Foram misturados 1,0mL de acetato de triancinolona (40mg) com 1,0mL de nitrato de prata (0,5%). Esta associação contém ingredientes ativos orgânicos constituídos por sistemas de anéis de ciclopenta[ ]hidrofenantreno. Seus derivados apresentam esteróides substituídos na posição 17 beta por uma cadeia de dois átomos de carbono. Esta preparação medicinal associa também substâncias ativas inorgânicas, como metais pesados e derivados. A Tabela 01 apresenta os volumes da associação medicamentosa utilizados nas suspensões celulares de linfócitos T do sangue periférico heparinizado para a avaliação do dano genotóxico induzido pela ação dos ingredientes ativos orgânicos e substâncias ativas inorgânicas da preparação medicinal. A Tabela 02 indica as condições de exposição das suspensões celulares. Foram realizadas cinco exposições, em duplicatas, denominadas: Controle Negativo - CN, Teste 01, Teste 02, Teste 03 e Teste 04, para as doses de 8,0µ g/mL, 20,0µ g/mL, 32,0µ g/mL e 40,0µ g/mL, respectivamente. Tabela 1: Medicação, apresentação volumes e doses finais utilizadas na exposição de linfócitos T do sangue periférico Apresentação Acetato de Triancinolona 40mg Nitrato de Prata 0,5% (mL) 5,0 12,5 20,0 25,0 8,0 20,0 32,0 40,0 Dose final (µ L/mL) 1,0 1,0 Tabela 2: Condições de exposição dos linfócitos T à associação da triancinolona (40mg) com o nitrato de prata (0,5%) Componentes do Meio Meio RPMI 1640 L-Glutamina Volume (mL) Concentração Celular Temperatura de incubação (oC) Tempo de Exposição (horas) 10.000 37 3 4,5 1,0 Soro Fetal Bovino 1,0 estudos, Goiânia, . 39, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. Medicamento Volumes da cultura celular (µ L) Volume Ensaio Cometa O protocolo utilizado foi proposto por Singh e colaboradores (1988), com modificações de acordo com os seguintes procedimentos: Aproximadamente, 10 L de cada suspensão celular (linfócitos T expostos às diferentes doses da preparação medicinal de triancinolona e nitrato de prata) foram embebidos em 120 L de agarose Law Melting Paint - 0,75%. Essa mistura foi colocada em lâmina de vidro com cobertura de agarose Narmal Melting Paint - 1,5%. Depois da solidificação em geladeira, as células foram lisadas com uma solução de lise (pH 10) contendo 2,5 NaCl, 100mM EDTA, 10mM de Tris, 1% Tween 80 e 10% DMSO, por aver night. Após a lise, as lâminas foram colocadas em uma cuba de eletroforese horizontal. Para permitir o desenrolamento do DNA, as lâminas ficaram incubadas por 25 minutos em tampão alcalino, feito no momento do uso, contendo 300mM NaOH e 1mM EDTA, pH > 13, a 4ºC. As lâminas foram submetidas uma corrente elétrica de 300mA e 25V, durante 25 minutos. Ao final da corrida as lâminas foram neutralizadas com 0.4M de Tris (pH = 7.5). Posteriormente, as lâminas foram coradas com 20µ L de uma solução de brometo de etídeo (20µ g/ mL) cobertas com lamínula, protegida da luz, sendo armazenadas em câmara úmida na geladeira até o momento da análise. Análise dos Cometas na Avaliação dos Danos ao DNA estudos, Goiânia, . 339, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. As lâminas foram analisadas sob microscopia de epifluorescência, utilizando conjunto de filtros de excitação 515-560nm e filtro de barreira 590nm, para fluorescência vermelha. Os núcleos foram visualizados utilizando objetivas de 40X e 60X e a imagem fluorescente foi capturada utilizando o software ISIS® (Metasystems Carparatian, Alemanha). Na determinação dos danos ao DNA, os núcleos foram classificados de acordo com a forma dos núcleos e o comprimento da cauda observada. As células analisadas receberam escores de 0 a 4, conforme apresentado a Figura 01. S core 0 S core 1 ID i = N C o x S core S core 2 S core 3 S core 4 ID T = ID i Figura 1: Classes de Cometas e seus respectivos scares na determinação dos Danos no DNA. Legenda: IDi = Índice de dano individual; NCo = Número de Cometas Observados; IDT = Índice de dano Total; IDi Somatório dos índices de danos individuais. Classificação segundo Kobayashi et al. (1995). RESULTADOS E DISCUSSÃO O ensaio cometa permitiu a detecção de danos genômicos ocorridos no núcleo dos linfócitos T expostos às diferentes doses da preparação medicinal de acetonido de triancinolona (40mg) e Nitrato de prata (0,5%). A Tabela 03 apresenta os grupos, os tipos de tratamento e o número de núcleos analisados com os seus respectivos scores. O índice de dano no genoma observado no núcleo dos linfócitos T que constituem o controle negativo foi de 40 unidades arbitrárias (UArb), não sendo observado nenhum cometa com dano máximo, apresentando uma média de dano de 10UArb. A dose de 8,0µ g/mL (41Uarb) não apresentou diferença no Índice de Dano Total quando comparada ao grupo controle negativo (p = 0,5). Para a dose de 20,0µ g/mL (61Uarb) indicou uma diferença superior a 50% em relação ao controle negativo (p = 0,07). A dose de 32,0µ g/mL (66UArb) apresentou um IDT de 70% acima quando comparada ao controle negativo (p = 0,04). Para a dose 40,0µ g/mL (61Uarb) índice de dano reduziu devido ao menor número de cometas com scares menores, porém foi a única dose que apresentou cometas com scare 4, significando alta citotoxicidade do produto testado. Tabela 3: Grupos, tratamentos e número de células avaliadas pelo Teste Cometa de Linfócitos T expostos às diferentes doses de triancinolona e nitrato de prata (0,5%) Numero de células com danos no DNA Grupos Doses (µ g/mL) Scores 0 1 2 3 4 Total Média ± DP 0 24 29 4 1 0 55 11.6±13.8 8,0 20 24 7 1 0 52 10.4±11.0 20,0 12 27 14 2 0 55 11.0±10.8 32,0 5 33 12 3 0 53 10.6±13.8 40,0 12 29 7 2 3 53 10.6±11.0 73 142 44 93 3 268 54.2±56.6 Negativo Tratamentos Total A Tabela 04 apresenta os Índices de Danos Individuais (IDi) e Totais (IDT), enquanto que a Figura 02 evidencia os resultados dos índices de Danos Totais decorrentes da análise dos cometas obtidos a partir da exposição de linfócitos T às diferentes doses da preparação medicinal testada. A Figura 03 relaciona os núcleos dos linfócitos com os seus respectivos scares utilizados na avaliação dos danos genotóxicos devido à exposição às diferentes dosagens do acetonido de triancinolona (40mg) associado ao nitrato de prata (0,5%). estudos, Goiânia, . 39, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. Controle estudos, Goiânia, . 339, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. Figura 2: Classes dos cometas e seus respectivos scares utilizados na determinação dos danos genômicos Legenda: (a) Aspectos nucleares observados na microscopia óptica de fluorescência utilizando filtro ® Texas Red e (b) Espectro de análise dos cometas utilizando o Software CametScare versão 1.5. IDi = Índice de dano individual; NCom = Número de Cometas Observados; IDT = Índice de dano Total. O desenvolvimento de novas modalidades terapêuticas tem sido enfocado, com o objetivo de se obter uma redução dos efeitos adversos ao uso de corticóides, possibilitando o tratamento de lesões de difícil acesso cirúrgico e refratário às modalidades terapêuticas utilizadas rotineiramente. Os melhores resultados têm sido obtidos com o interferan-alfa. Vários autores relatam a sua eficácia, baseado nas suas propriedades antiangiogênicas (FONSECA et al., 2008). A associação da triancinolona com nitrato de prata no tratamento de hemangiomas e linfohemangiomas por infiltração intralesional em crianças, deve ser considerada capaz de potencializar a ação desses dois produtos e que quando injetado dentro da lesão, promove uma rápida redução da massa turnoral evitando a sua proliferação e impedindo com isso o seu crescimento, evoluindo para a cura. Essa preparação medicinal vem solucionar um problema sério de patologias que causam deformidades severas em que o paciente é excluído do convívio social (UNIVERSOVISUAL, 2009). Neste sentido, a ação da preparação medicinal de triancinolona combinada com o nitrato de prata, no tratamento de hemangiomas deve ser cuidadosamente avaliada. Os nossos resultados evidenciam uma ação genotóxica destes produtos em linfócitos T do sangue periférico utilizando doses de 32µ g/mL e 40µ g/mL enquanto que as doses terapêuticas giram em torno 20mg/mL. Adicionalmente, com tratamento sistêmico devemos nos preocupar com possíveis lesões hepática e/ou renais, principalmente lesões no genoma das células desses órgãos. CONCLUSÃO O tratamento de hemangiomas tem se mostrado bastante variável, sendo utilizadas inúmeras formas de procedimentos e medicamentos, dentre eles a corticoterapia sistêmica. Esta modalidade geralmente é aplicada aos tumores em maior grau de desenvolvimento e tamanho que ameaçam os órgãos próximos. O tratamento com a preparação medicinal de triancinolona (40mg) e o nitrato de prata (0,5%) vem sendo uma alternativa terapêutica nos tratamentos de hemangiomas, no entanto, são necessários estudos adicionais que comprovem seu efeito não-genotóxico nas células. Os linfócitos T expostos às diferentes doses da mistura medicinal apresentaram um aumento de 40% (p < 0,05) na média dos índices de danos no genoma (57,3UArb) quando comparados com o controle negativo (40UArb). As diversas doses da preparação medicinal resultante da combinação entre Acetonido de Triancinolona (40mg) e nitrato de prata (0,5%), apresentam ação genotóxica, sendo capaz de influenciar no número e no aparecimento de mutações, que são consideradas importantes eventos na iniciação e promoção tumoral. Abstract: this study deals with the assessment of genotoxicity induced by the medical preparation of triamcinolone acetonide and silver nitrate in T lymphocytes using the comet assay. The triancinolone has anti-inflammatory power, while the silver nitrate which may be used for disposal of seared skin tumor. Keywords: Mutagenesis. Comet Assay. Triancinolone. Silver Nitrate. Referências BELPAEME, K.; COOREMAN, K.; KIRSCH-VOLDERS, M. Development and validation of the in vivo alkaline comet assay for detecting genomic damage in marine flatfish. Mutation Research. Nº 415. p. 167-184, 1998. BICHKHAM, J. W. et al. Effects of chemical contaminants on genetic diversity in natural populations: implications for biomonitoring and ecotoxicology. Mutation Research, v. 463, p. 33-51, 2000. BENICÁ, C. Biomonitoramento das lagoas estuarinas do Camacho – Jaguaruna (SC) e Santa Marta - Laguna (SC); Utilizando Geaphagus brasiliensis (Cichlidae). Dissertação de mestrado. Univesidade Federal do Paraná, Curitiba. PR. 112 p. 2006. estudos, Goiânia, . 39, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. GENOTOXICITY OF TRIAMCINOLONE AND SILVER NITRATE IN T’ LYMPHOCYTE USING THE COMET TEST estudos, Goiânia, . 339, n. 2, p. 155-163, abr./jun. 2012. COLLINS, A. M. et al. Comet assay in human biomonitoring studies: Reability, validation, and applications. Environ. Mol. Mutagen., 30: 139-146. 1997. DAMAS MATEACHE, B. et al. Interferon alpha and infantile orbital hemangioma. Arch Soc Esp Oftalmol. 2003;78 (11), p. 623-9. Spanish. 2003;56(4):317-27. DELLA NINA, B. I. et al. Apresentação, evolução e tratamento dos hemangiomas cutâneos experiência do Ambulatório de Dermatologia Infantil do Hospital das Clínicas da Faculdade de Medicina da Universidade de São Paulo. An Bras Dermatol. 2006;81(4):323-7. FAIRBAIRN, D. W.; OLIVE, P. L.; O’NEILL, K. L. The comet assay: a comprehensive review. Mutatian Research, n. 339, p. 37 59. 1995. FONSECA, J. N. L.; CHA, S. B. CHA; REHDER, J. R. C. L. Eficácia terapêutica do interferon alfa em criança com hemangioma gigante craniofacial: relato de caso. Arq Bras Oftalmol. 2008;71(3):423- 6. LIDE, D. R. (Ed.); TAYLOR; FRANCIS. CRC Handbook of Chemistry and Physics. In: Properties of the Elements and Inorganic Compounds 88.ed (Versão an line). 2008. MARTINEZ, C. B. R.; I. M. S. Cólus. 2002. Biomarcadors em peixes neotropicais para o monitoramento da poluição aquática na bacia do rio Tibagi. In: A bacia do rio Tibagi, cap.29. MOTA, I. S. O ensaio cometa na avaliação da genotoxidade induzida pela ciclofosfamida em linfócitos de camundongos Balb/c. Monografia de conclusão do Curso de Biologia. Depto de Biologia. Universidade Católica de Goiás, 2007. p.35. POERSCH, A. 2005. “Atividade protetora da DCTN (transdesidrocrotonina) na frequência de micronúcleos e apoptose induzidos por diferentes agentes mutagênicos in vitra”. Dissertação de mestrado. Universidade Estadual de Londrina. PR. POÇA, K. S. 2005. Avaliação do efeito genotóxico do Megazol. Dissertação de Mestrado. Fundação Oswaldo Cruz. Rio de Janeiro. p.67. RIBEIRO, L R., E. K. Marques. 2003. A importância da mutagênese ambiental na carcinogênese humana. In: Ribeiro, L. R., Salvadori, D. M. F., Marques, E. K. (orgs). Mutagênese ambiental, Canoas. Ulbra, P. 21-28. SINGH, N. P., M. T. Mccoy., R. R. Tice., E. L. Schneider. 1988. A single Tecnique for quantification of Low levels of DNA Damage in Individual Cells. Experimental cell Pesearch, V. * Recebido em: 02.03.2012. Aprovado em: 12.03.2012. CLAUDIO CARLOS DA SILVA APARECIDO DIVINO DA CRUZ Programa de Pós-Graduação Lata Sensu em Genética – Pró-Reitoria de Pós-Graduação e Pesquisa / Universidade Católica de Goiás. Núcleo de Pesquisas Replicon – Departamento de Biologia / Universidade Católica de Goiás. LaGene – Laboratório de Citogenética Humana e Genética Molecular / LACEN – Laboratório de Saúde Pública Dr. Giovani Cysneiros – SES/GO.