XVIII WORK A 10 QUANDO OS VIRUS CHEGAM A PROSTATA E

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Rui Medeiros
Oncologia Molecular GRP/Serviço de Virologia/Laborat Biologia Molecular
Instituto Port ugues de Oncologia – Porto
Doutorado pela Faculdade de Medicina do Porto
Agregação pelo ICBAS-Univ ersidade do Porto
Diretor Dep. Investigação da Liga Portuguesa Contra o Cancro-NRNorte
Academic Editor PLOS One, Frontiers Genetics
Biologia dos Vírus
Cápsides
Icosaédrica
Helical
Compiled from 'Virus Taxonomy', the Sixth Report
of the International Committee on Taxonomy of
Viruses (ICTV) 1995. N.B: you can search this
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63U-11 virus, Bunyaviridae
75V-2374 virus, Bunyaviridae
75V-2621 virus, Bunyaviridae
78V-2441 virus, Bunyaviridae
Abadina virus, Reoviridae
Abelson murine leukemia virus, Retroviridae
Abras virus, Bunyaviridae
Abraxas grossulariata cypovirus 8, Reoviridae
Abraxas grossulariata NPV, Baculoviridae
Absettarov virus, Flaviviridae
Abu Hammad virus, Bunyaviridae
Abu Mina virus, Bunyaviridae
Abutilon mosaic virus, Geminiviridae
Acado virus, Reoviridae
Acalypha yellow mosaic virus, Geminiviridae
Acantholyda erythrocephala NPV, Baculoviridae
Acara virus, Bunyaviridae
Acciptrid herpesvirus 1, Herpesviridae
Achaea janata NPV, Baculoviridae
Acherontia atropas virus, Tetraviridae
Acheta domestica densovirus, Parvoviridae
Acholeplasma phage Oc1r, Inoviridae
Acholeplasma phage 10tur, Inoviridae
Acholeplasma phage L2, Plasmaviridae
Acholeplasma phage L51, Inoviridae
Acholeplasma phage M1, Plasmaviridae
Acholeplasma phage MV-L1, Inovindae
Acholeplasma phage MVG51, Inoviridae
Acholeplasma phage 01, Plasmaviridae
Acholeplasma phage vl, Plasmaviridae
Acholeplasma phage v2, Plasmaviridae
Acholeplasma phage v4, Plasmaviridae
Acholeplasma phage v5, Plasmaviridae
Acholeplasma phage v7, Plasmaviridae
Achroia grisella NPV, Baculoviridae
Acidalia carticcaria NPV, Baculoviridae
Acleris gloverana NPV, Baculoviridae
Acleris variana NPV, Baculoviridae
Acrobasis zelleri entomopoxvirus, Poxviridae
Acronicta aceris NPV, Baculoviridae
Actebia fennica NPV, Baculoviridae
Actias selene Cypovirus 4, Reoviridae
Actias selene NPV, Baculoviridae
Actinomycetes phage 108/016, Myoviridae
Actinomycetes phage 119, Siphoviridae
Actinomycetes phage A1-Dat, Siphoviridae
Actinomycetes phage Bir, Siphoviridae
Actinomycetes phage f115-A, Siphoviridae
Actinomycetes phage f150A, Siphoviridae
Actinomycetes phage f31C, Siphoviridae
•Actinomycetes phage M1, Siphoviridae
Actinomycetes phage MSP8, Siphoviridae
Actinomycetes phage P-a-1, Siphoviridae
Actinomycetes phage R1, Siphoviridae
Actinomycetes phage R2, Siphoviridae
Actinomycetes phage SK1, Myoviridae
Actinomycetes phage SV2, Siphoviridae
Actinomycetes phage VP5, Siphoviridae
Adelaide River virus, Rhabdoviridae
Adeno-associated virus 1, Parvoviridae
Adeno-associated virus 2, Parvoviridae
Adeno-associated virus 3, Parvoviridae
Adeno-associated virus 4, Parvoviridae
Adeno-associated virus 5, Parvoviridae
Adisura atkinsoni NPV, Baculoviridae
Adoxophyes orana NPV, Baculoviridae
Aedes aegypti densovirus, Parvoviridae
Aedes aegypti entomopoxvirus, Poxviridae
Aedes aegypti NPV, Baculoviridae
Aedes albopictus densovirus, Parvoviridae
Aedes annandalei NPV, Baculoviridae
Aedes atropalpus NPV, Baculoviridae
Aedes epactius NPV, Baculoviridae
Aedes nigromaculis NPV, Baculoviridae
Aedes pseudoscutellaris densovirus,
Parvoviridae
Aedes scutellaris NPV, Baculoviridae
Aedes sollicitans NPV, Baculoviridae
Aedes taeniorhynchus NPV, Baculoviridae
Aedes tormentor NPV, Baculoviridae
Aedes triseriatus NPV, Baculoviridae
Aedia leucomelas NPV, Baculoviridae
Aeromonas phage 29, Myoviridae
Aeromonas phage 37, Myoviridae
Aeromonas phage 43, Myoviridae
Aeromonas phage 44RR2.8t, Myoviridae
Aeromonas phage 51, Myoviridae
Aeromonas phage 59.1, Myoviridae
Aeromonas phage 65, Myoviridae
Aeromonas phage Aeh1, Myoviridae
Aeromonas phage Aeh2, Myoviridae
African cassava mosaic virus, Geminiviridae
African green monkey cytomegalovirus,
Herpesviridae
African green monkey HHV-like virus,
Herpesviridae
African green monkey polyomavirus,
Papovaviridae
African horse sickness viruses 1 to 10,
Reoviridae
African swine fever virus, African swine feverlike viruses
AG83-1746 virus, Bunyaviridae
AG83-497 virus, Bunyaviridae
Agaricus bisporus virus 1, Unassigned
Agaricus bisporus virus 4, Partitiviridae
Agraulis vanillae virus, Tetraviridae
Agrobacterium phage PIIBNV6, Myoviridae
Agrobacterium phage PS8, Siphoviridae
Agrobacterium phage PT11, Siphoviridae
Agrobacteriurn phage Y, Siphoviridae
Agrochola helvolva cypovirus 6, Reoviridae
Agrochola lychnidis cypovirus 6, Reoviridae
Agropyron mosaic virus, Potyviridae
Agrotis exclarnationis NPV, Baculoviridae
Agrotis ipsilon NPV, Baculoviridae
Agrotis segeturn cypovirus 9, Reoviridae
Agrotis segeturn NPV, Baculoviridae
Aguacate virus, Bunyaviridae
Ahlum water-borne virus, Tombusviridae
Aino virus, Bunyaviridae
Akabane virus, Bunyaviridae
AKR (endogenous) murine leukemia virus,
Retroviridae
Alabama argillacea NPV, Baculoviridae
Alajuela virus, Bunyaviridae
Alcaligenes phage 8764, Siphoviridae
Alcaligenes phage A5/A6, Siphoviridae
Alcaligenes phage A6, Myoviridae
Alcelaphine herpesvirus 1, Herpesviridae
Alcelaphine herpesvirus 2, Herpesviridae
Alenquer virus, Bunyaviridae
Aletia oxygala NPV, Baculoviridae
Aleutian disease virus, Parvoviridae
Aleutian mink disease virus, Parvoviridae
Afalfa cryptic virus 1, Partitiviridae
Alfalfa cryptic virus 2, Partitiviridae
Alfalfa latent virus, Carlavirus
Alfalfa mosaic virus, Bromoviridae
Alfuy virus, Flaviviridae
Allerton virus, Herpesviridae
Alligatorweed stunting virus, Closterovirus
Allitrich herpesvirus 1, Herpesviridae
Allomyces arbuscula virus, Unassigned
Almeirim virus, Reoviridae
Almpiwar virus, Rhabdoviridae
Alphaea phasma NPV, Baculoviridae
Alsophila pometaria NPV, Baculoviridae
Alstroemeria mosaic virus, Potyviridae
Alstroemeria streak virus, Potyviridae
Alstroemeria virus, Carlavirus
Altamira virus, Reoviridae
Alteromonas phage PM2, Corticoviridae
Amapari virus, Arenaviridae
Amaranthus leaf mottle virus, Potyviridae
Amathes c-nigrum NPV, Baculoviridae
Amazon lily mosaic virus, Potyviridae
Aglais urticae cypovirus 2, Reoviridae
Aglais urticae cypovirus 6, Reoviridae
Aglais urticae NPV, Baculoviridae
Agraulis vanillae cypovirus 2, Reoviridae
Agraulis vanillae densovirus, Parvoviridae
Agraulis vanillae NPV, Baculoviridae
Andraca bipunctata GV, Baculoviridae
Aneilema virus, Potyviridae
Angel fish reovirus, Reoviridae
Anhanga virus, Bunyaviridae
Anhembi virus, Bunyaviridae
Anisota senatoria NPV, Baculoviridae
Anomala cuprea entomopoxvirus, Poxviridae
Anomis flava NPV, Baculoviridae
Anomis sabulifera NPV, Baculoviridae
Anomogyna elimata NPV, Baculoviridae
Anopheles A virus, Bunyaviridae
Anopheles 8 virus, Bunyaviridae
Anopheles crucians NPV, Baculoviridae
Antequera virus, Bunyaviridae
Anthela varia NPV, Baculoviridae
Anthelia hyperborea NPV, Baculoviridae
Antheraea eucalypti virus, Tetraviridae
Antheraea mylitta cypovirus 4, Reoviridae
Antheraea paphia NPV, Baculoviridae
Antheraea pemyi cypovirus 4, Reoviridae
Antheraea pemyi NPV, Baculoviridae
Antheraea polyphemus NPV, Baculoviridae
Antheraea yamamai NPV, Baculoviridae
Anthonomus glandis PV, Baculoviridae
Anthoxan, thum latent blanching virus,
Hordeivirus
Anthoxanthum mosaic virus, Potyviridae
Anthrenus museorum NPV, Baculoviridae
Anthriscus virus, Carlavirus
Anthriscus yellows virus, Sequiviridae
Anticarisia gemmatalis MNPV, Baculoviridae
Antitype xanthomista cypovirus 6, Reoviridae
Aotine herpesvirus 1, Herpesviridae
Aotine herpesvirus 2, Herpesviridae
Aotine herpesvirus 3, Herpesviridae
Apamea anceps GV, Baculoviridae
Apamea anceps NPV, Baculoviridae
Apamea sordens GV, Baculoviridae
Apanteles fumiferanae virus, Polydnaviridae
Apeu virus, Bunyaviridae
Aphid lethal paralysis virus, Picornaviridae
Aphodius tasmaniae entomopoxvirus,
Poxviridae
Apocheima cinerarius NPV, Baculoviridae
Variolação
Vacinação
?
Primeiro registo de um vírus:
1892 - Ivanowsky. Observa que a doença do
mosaico do tabaco era transmissivel por um agente
capaz de passar por filtros que retinham
as bactérias
Detecção de infecção viral

Observação efeito citopático induzido pelos vírus
sobre as células

Detecção de particulas virais por microscopia
electrónica

Isolamento e crescimento dos vírus em linhas
celulares

Detecção de componentes virais: proteínas;
enzimas, RNA; DNA

Avaliação da resposta imunológica do hospedeiro
Detecção de infecção viral

Detecção de componentes virais: proteínas;
enzimas, RNA; DNA

RNA/DNA
– PCR tempo real
Rui Medeiros
Oncologia Molecular IPO-Porto
Sarcoma
de
Kaposi
Virus em populações sem doença:
ex. Poliomavirus
E
B
V
C
M
V
2013 In press
EUROPE
HPV DNA PREVALENCE in the GENERAL POPULATION
UK
ITALY
GREECE
SWEDEN
RUSSIAN FED.
FRANCE
FRANCE
GREECE
DENMARK
NORWAY
DENMARK
FRANCE
ITALY
NORWAY
45.6
42.3
29.5
25.6
25.5
21.7
18.4
15.5
15.4
15.4
15
SPAIN
GREECE
Total prevalence
6.3
6.1
5.9
5.4
5.4
4.9
4.6
4.5
4.2
NETHERLANDS
UK
SWEDEN
NETHERLANDS
GERMANY
NETHERLANDS
ITALY
UK
SPAIN
Prevalence >35
12.3
11.3
9.3
2
1.9
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
16,6%
HPV e Prostata?

DNA :
EBV
KSHV

papovaviruses
hepadnaviruses
herpesviruses
adenoviruses
poxviruses
RNA virus:
HPV
SV-40
BK, JC
retroviruses
flaviviruses
E
B
V
C
M
V
Virus e
cancro
renal?
HERVs em 8% do genoma humano
HERV e carcinogenese
-Directamente
-Activaçao oncogenes
- Imunosupressão
Muito
Obrigado
Pela
Vossa
Atenção
EBV

Gamma Herpes-Vírus

Taxonomicamente denominado Vírus Herpes Humano 4

O Homem é o seu hospedeiro natural exclusivo

Infecção primária adquirida na Infância

90% dos adultos são portadores


Agente causador da Mononucleose Infecciosa e associado ao
Linfoma de Burkitt e ao NPC (carcinoma da nasofaringe)
Infecta células que expressam o CD21 (receptor c3d) –
Linfócitos B e T, e células epiteliais
Infecção primária – ocorre normalmente durante a
infância (usualmente assintomática)
Infecção primária retardada – pode induzir doença
linfoproliferativa benigna
Mononucleose Infecciosa
Patologias associadas ao EBV
 Linfoma de Burkitt
 Carcinoma da Nasofaringe
 Doença de Hodgkin (DH)
 Linfoma não-Hodgkin de células B (LNH)
 Doenças linfoproliferativas pós-transplante (PLTD)
Doentes Transplantados
Pode ocorrer reactivação do vírus em indivíduos imunodeprimidos
Infecção ou reactivação por EBV podem originar PTLD
Doenças linfoproliferativas pós-transplante (PTLD)
Histologicamente – as PTLD representam um espectro
de doenças: desde linfoproliferações policlonais,
polimórficas benignas até linfomas monoclonais,
monomórficos malignos.
A maioria dos casos de PTLD têm origem nas células B e
estão associados à infecção por EBV
Incidência de PTLD
- Tipo de transplante
• 2% rim
• 10% coração/pulmão
• > 20% transp. medula óssea não relacionados com deplecção de células T
Factores de risco
- EBV D+/R- Infecção CMV
DIAGNÓSTICO LABORATORIAL
Isolamento: saliva, sangue periférico ou tecido linfóide
com linfócitos normais transformados
Hibridização do DNA: método mais sensível para a
detecção do EBV em amostras de pacientes
Testes imunológicos: imunofluorescência indirecta e ELISA
Testes moleculares: real time PCR
Exemplo: Quantificação da carga viral de EBV
Estratégia preemptiva para reduzir a incidência da reactivação de
EBV e o desenvolvimento de PTLD em doentes transplantados
Quantificação frequente da carga viral – 3 a 5 vezes por semana
Estabelecimento da cinética da replicação do vírus
Resultados/conclusões
Cada aumento de 10 vezes na quantidade de DNA de EBV
Aumento do risco em
desenvolvimento de PTLD
cerca
de
3
vezes
para
A partir de que valor de carga viral se deve aplicar terapia
preemptiva???
A partir de 1000 cópias DNA viral/ml
Tratamento com Rituximab
Ac monoconal direccionado para CD20
Receptor de ligação do EBV
Redução da incidência de PTLD (de 49% para 18%)
Eliminação da taxa de mortalidade aos 6 meses
- Monitorização quantitativa frequente da reactivação do EBV
- Terapia preemptiva com Rituximab
Melhoram o prognóstico de doentes transplantados com elevado
risco para desenvolvimento de PTLD originada por EBV
HHV-6, 7 e 8
Muito
Obrigado
Pela
Vossa
Atenção
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