Processamento pós-transcricional Capeamento Remoção de

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Processamento pós-transcricional
Capeamento
Remoção de introns
Adição da cauda de poliA
Ligação a proteínas ligantes ao RNA
Capeamento
Remoção de introns
Adição da cauda de poliA
Varios tipos de capeamento: extensão de reações de metilação
Capeamento: ocorre no primeiro minuto
Todos os mRNAs eucariotos são capeados
Proteção contra degradação: decapeamento ligado a degradação
Ligação de fatores que facilitarão ligação do ribossomo
Disjunção: splicing
Introns
Definidos por sequências GT (5’) e AG (3’)
Presença de códons de terminação em ordem de leitura (ORF)
Mecanismo da disjunção: complexa interação entre proteínas
Splicing alternativo
Poliadenilação
- Presente em eucariotos: enzima Poli-A polimerase
Sequência AAUAAA em mamíferos:
Sinal de poliadenilação e de terminação da transcrição
- Altamente conservada em mamíferos
Função: transporte, estabilidade, eficiência da tradução
- Presente em região 11 a 30 nt antes do sítio de adição do poliA
- cordycepin (3’deoxyadenosine): impede o transporte para o citosol
Em animais somente uma sequência é presente. Em plantas, várias:
diferentes tamanhos para um mRNA: diferente estabilidade e tradução
Sinal de poliadenilação e de terminação da transcrição
Tamanho da cauda de poli-A pode variar de gene para gene
poli-A: estabilidade e/ou eficiência de tradução
Instabilidade do RNA em plantas
Experimentos com actinomicina D (inibidor da transcrição): presença desse
Elemnto reduz a vida do RNA
Instabilidade do RNA em plantas
Erro de leitura da RNA polimerase II. Ex: gene da
fitohemaglutinina
Região responsável pelo aumento da estabilidade do RNA
Domínios
II e III,aricos
em (AU)n
instabilidade
em I,resposta
presença
de luzresponsáveis
no mRNA dapela
ferredoxina
na presença de açúcares
Instabilidade e degradação do RNA
Proteínas ligantes internamente ao RNA
Elemento IRE
Degradação do RNA em levedura
Degradação do RNA em plantas
Degradação do RNA em plantas
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