Cronograma do Curso prático de Biologia do Desenvolvimento

Cronograma do Curso prático de Biologia do Desenvolvimento
Escola de Altos Estudo CAPES UFRJ/UFC – Cátedra UNESCO de Biologia da forma e do
desenvolvimento.
Profs.: Jose Garcia Abreu, Jose Brito, Rodrigo Fonseca e Luis Fernando Marques
Curso UFC – Fortaleza - CE – 3 a 5 de Dezembro
3/dezembro
8:00 – 9:00 –Recepção dos alunos “O que é Biologia do Desenvolvimento?” – José Garcia Abreu.
9:00 -12:00 – O embrião de Xenopus laevis (Jose Garcia Abreu e Alice Reis).
Teórica – Os eixos embrionários e o experimento de Spemann (indução de duplo eixo).
Prática - Estagiamento de embriões, Índice de dorso-anteriorização (DAI)
12:00-13:00 – Almoço
13:00 – 17:00 – Prática - Tratamento com cysteina (dejellying). Decorionamento do embrião –
dissecção. Transplante do labio dorsal no lado ventral e na blastocele (Spemann Organizer).
4/Dezembro
8:00-9:00 - Introdução da prática e estágios do desenvolvimento do embrião de galinha. (Jose
Brito e Alice Reis)
9:00-13:00 – Prática - Técnicas de manipulação, Coleta de embrião E10ss; Preparo das placas
para cultivo in vitro; Coloração do esqueleto.
13-14 – Almoço
14-15 – Conceitos teóricos sobre Evo-Devo de artrópodes (Rodrigo Fonseca): Embriogênese de
insetos: conceitos de insetos banda-longa (“long-germ”) e banda-curta (“short germ”). Conceito
de zona de crescimento: principais vias de sinalização envolvidas no processo de
segmentação.Conceito de duplicação gênica caso de estudo bicoid. Padronização do eixo
dorsoventral e as principais vias de sinalização envolvidas. Principais técnicas disponíveis em
artrópodes não-modelo. Ativação gênica via heat-shock em Tribolium. Transgênese em
Tribolium. RNAi parental como perda técnica de perda de função.
15:00-17:00 - Coletar e fixar embriões de Tribolium e carrapato. Visualização de embriões de
Tribolium e carrapato utilizando DAPI staining.
5/Dezembro
8:00-13:00 - Prática (Rodrigo Fonseca) - Separação de pupas de Tribolium macho e fêmeas.
Injeção em fêmeas de vermelho de metila. Observação de embriões marcados com fucsina em
Tribolium, Drosophila e carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
Observação de embriões marcados com fucsina em Tribolium, Drosophila e
carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
13:00-14:00-Almoço
14:00 -17:00 – Teoria sobre a prática da cultura de “New”. (José Brito e Alice Reis).
Colocação dos embriões em cultura, Fixação de E2,5; Colocação dos embriões em sol Mall.
embrião de Galinha continuação. Fixação de E3,5; Observação dos E2,5 in vitro; Observação do
esqueleto.
Cronograma do Curso prático de Biologia do Desenvolvimento
Escola de Altos Estudo CAPES UFRJ/UFC – Cátedra UNESCO de Biologia da forma e do
desenvolvimento.
Curso UFPI – Terezina-PI – 9 a 11 de Dezembro
9/dezembro
8:00 – 9:00 –Recepção dos alunos “O que é Biologia do Desenvolvimento” – José Garcia Abreu
9:00 -12:00 – O embrião de Xenopus (Jose Garcia Abreu e Alice Reis).
Teórica – Os eixos embrionários e o experimento de Spemann (indução de duplo eixo).
Prática - Estagiamento de embriões
12:00-13:00 – Almoço
13:00 – 17:00 – Prática – Classificação de fenótipos. Índice de dorso-anteriorização (DAI),
observação de hibridização in situ em embriões no estagio de nêurula.
10/Dezembro
8:00-9:00 - Introdução da prática e estágios do desenvolvimento do embrião de galinha. (Jose
Brito e Alice Reis)
9:00-13:00 – Prática - Técnicas de manipulação, Coleta de embrião E10ss; Preparo das placas
para cultivo in vitro; Coloração do esqueleto.
13-14 – Almoço
14-15 – Conceitos teóricos sobre Evo-Devo de artrópodes (Rodrigo Fonseca): Embriogênese de
insetos: conceitos de insetos banda-longa (“long-germ”) e banda-curta (“short germ”). Conceito
de zona de crescimento: principais vias de sinalização envolvidas no processo de
segmentação.Conceito de duplicação gênica caso de estudo bicoid. Padronização do eixo
dorsoventral e as principais vias de sinalização envolvidas. Principais técnicas disponíveis em
artrópodes não-modelo. Ativação gênica via heat-shock em Tribolium. Transgênese em
Tribolium. RNAi parental como perda técnica de perda de função.
15:00-17:00 - Coletar e fixar embriões de Tribolium e carrapato. Visualização de embriões de
Tribolium e carrapato utilizando DAPI staining.
11/Dezembro
8:00-13:00 - Prática (Rodrigo Fonseca) - Separação de pupas de Tribolium macho e fêmeas.
Injeção em fêmeas de vermelho de metila. Observação de embriões marcados com fucsina em
Tribolium, Drosophila e carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
Observação de embriões marcados com fucsina em Tribolium, Drosophila e
carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
13:00-14:00-Almoço
14:00 -17:00 – Teoria sobre a prática da cultura de “New”. (José Brito e Alice Reis).
Colocação dos embriões em cultura, Fixação de E2,5; Colocação dos embriões em sol Mall.
embrião de Galinha continuação. Fixação de E3,5; Observação dos E2,5 in vitro; Observação do
esqueleto.
Cronograma do Curso prático de Biologia do Desenvolvimento
Escola de Altos Estudo CAPES UFRJ/UFC – Cátedra UNESCO de Biologia da forma e do
desenvolvimento.
Curso João Pessoa – 12 a 14 de Dezembro
12/dezembro
8:00 – 9:00 –Recepção dos alunos “O que é Biologia do Desenvolvimento” – José Garcia Abreu
9:00 -12:00 – O embrião de Xenopus (Jose Garcia Abreu e Alice Reis).
Teórica – Os eixos embrionários e o experimento de Spemann (indução de duplo eixo).
Prática - Estagiamento de embriões
12:00-13:00 – Almoço
13:00 – 17:00 – Prática – Classificação de fenótipos. Índice de dorso-anteriorização (DAI),
observação de hibridização in situ em embriões no estagio de nêurula.
13/Dezembro
8:00-9:00 - Introdução da prática e estágios do desenvolvimento do embrião de galinha. (Jose
Brito e Alice Reis)
9:00-13:00 – Prática - Técnicas de manipulação, Coleta de embrião E10ss; Preparo das placas
para cultivo in vitro; Coloração do esqueleto.
13-14 – Almoço
14-15 – Conceitos teóricos sobre Evo-Devo de artrópodes (Rodrigo Fonseca): Embriogênese de
insetos: conceitos de insetos banda-longa (“long-germ”) e banda-curta (“short germ”). Conceito
de zona de crescimento: principais vias de sinalização envolvidas no processo de
segmentação.Conceito de duplicação gênica caso de estudo bicoid. Padronização do eixo
dorsoventral e as principais vias de sinalização envolvidas. Principais técnicas disponíveis em
artrópodes não-modelo. Ativação gênica via heat-shock em Tribolium. Transgênese em
Tribolium. RNAi parental como perda técnica de perda de função.
15:00-17:00 - Coletar e fixar embriões de Tribolium e carrapato. Visualização de embriões de
Tribolium e carrapato utilizando DAPI staining.
14/Dezembro
8:00-13:00 - Prática (Rodrigo Fonseca) - Separação de pupas de Tribolium macho e fêmeas.
Injeção em fêmeas de vermelho de metila. Observação de embriões marcados com fucsina em
Tribolium, Drosophila e carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
Observação de embriões marcados com fucsina em Tribolium, Drosophila e
carrapato.Observação de cutícula de Tribolium, Drosophila e carrapato.
13:00-14:00-Almoço
14:00 -17:00 – Teoria sobre a prática da cultura de “New”. (José Brito e Alice Reis).
Colocação dos embriões em cultura, Fixação de E2,5; Colocação dos embriões em sol Mall.
embrião de Galinha continuação. Fixação de E3,5; Observação dos E2,5 in vitro; Observação do
esqueleto.
15/Dezembro
8:00-10:00 - Introdução Teórica sobre o Desenvolvimento do ouroço-do-mar (Luis
Fernando Marques - UFPB)
10:00-12:00 - Obtenção e preparação dos gametas
12:00-13:00 - Intervalo para almoço
13:00-17:00 - Ensaios de fertilização e acompanhamento do desenvolvimento
embrionário inicial.