Detecção de antigénios do vírus da raiva em encéfalo de cão

Propaganda
RPCV (2004) 99 (550) 89-92
� � � � � � � �� � � � � � � � � �
��
���������������������
Detecção de antigénios do vírus da raiva em encéfalo de cão mantido
em formol durante longo período
Detection of rabies virus antigen in dog encephalon kept
in formalin for a long time
Gisele Fabrino Machado1*, Luzia Helena Queiroz Silva2, Caris Maroni Nunes2
1
Departamento de Clínica Cirurgia e Reprodução Animal (DCCRA) - UNESP - Campus de Araçatuba
2
Departamento de Apoio Produção e Saúde Animal (DAPSA) - UNESP - Campus de Araçatuba
Resumo: Relatamos aqui a detecção de antigénios do vírus da
raiva em encéfalo mantido em formol não tamponado por período que variou de 4-5 anos usando o método da imunoperoxidase
indireto. Devido ao tempo prolongado de permanência no fixador, utilizamos duas técnicas de recuperação antigênica: digestão enzimática com tripsina, seguida de tratamento pelo calor
em microondas. O método da imunoperoxidase mostrou-se mais
efectivo que os testes histológicos para a observação de corpúsculos de Negri, embora não tenha sido observada uniformidade
na intensidade da reação para detecção de antigénios virais. Isto
pode ser decorrente do facto da distribuição de antigénio viral e
mesmo a concentração serem variáveis de acordo com a região
do cérebro do animal infectado, o que é estreitamente relacionado com a duração da doença clínica e estadio da doença no qual o
animal foi sacrificado, ou ainda pode ser decorrente da variação
do título existente no momento do sacrifício ou do longo tempo
de permanência em formol não tamponado. A imunohistoquímica permitiu a observação de dois padrões de distribuição de antigénios virais no citoplasma de neurónios com base no tamanho:
agregados de forma redonda ou oval e antigénio particulado fino
assumindo um aspecto granular. A imunoperoxidase indireta é
um método rápido e pode ser usada para o diagnóstico de rotina
nos casos onde inicialmente não há suspeita de raiva e o material
é enviado para diagnóstico em solução de formol 10%. Para estudos retrospectivos deve-se considerar o tempo de permanência
na solução fixadora para a avaliação dos resultados.
Palavras-chave: Raiva, cão, imunoperoxidase, recuperação antigênica
Summary: We report the detection of rabies virus antigen in encephalon kept in unbuffered formalin for a period that ranged
from 4 to 5 years, using the indirect immunoperoxidase method.
Due to the prolonged time in the fixative solution, we used two
supplementary antigen recovery techniques: enzymatic digestion
with trypsin followed by heat treatment in microwave oven. The
immunoperoxidase method showed to be more effective than the
histological observation of Negri bodies, although the intensity
of the reaction for viral antigen detection was not uniform. This
may be due to the fact that viral antigen distribution and even
concentration vary according to the brain region infected. This
variation is closely related to the duration of the clinical disease
* Correspondência: UNESP- FO - Araçatuba. Curso de Medicina Veterinária, Rua Clóvis Pestana, 793, Jardim Dona Amélia
- Araçatuba-SP 16050-680, Brasil. Fax 55 18 622 4542, e-mail:
[email protected]
and to the disease stage in which the animal was when euthanized. Or it might even be due to the variation in the titre existing
at the moment of the euthanasia or to the prolonged time in unbuffered formalin. The immunohistochemical analysis has permitted the observation of two size-based patterns of viral antigen
distribution in the cytoplasm of neurons: round or oval-shaped
aggregates and thin particulate antigen with a granular aspect.
Indirect immunoperoxidase is a fast method and may be used for
routine diagnosis in cases where initially there is no suspicion
of rabies and the specimen is sent for analysis in 10% formalin
solution. For retrospective studies, the time in fixative solution
has to be considered when assessing results.
Key words: Rabies, dog, immunoperoxidase, antigen recovery
Introdução
O diagnóstico laboratorial de raiva é essencial para
direcionar os programas de controle da doença, para o
estabelecimento de vigilância imunológica e o monitoramento efetivo de áreas geográficas, assim como para
a orientação de medidas profiláticas. Pode ser efectuado por detecção de antigénio viral em tecido nervoso
fresco e em tecido fixado por imunofluorescência ou
imunocitoquímica, por testes de isolamento de vírus
em camundongos ou culturas de células, por detecção
de ácido nucléico viral por RT-PCR, e por testes histológicos de demonstração de corpúsculos de Negri.
Entretanto, estas inclusões são observadas em apenas
50-80% dos casos de raiva, detectados pelo isolamento
do vírus na prova biológica realizada em camundongos
(Fekadu e Smith, 1986; Debbie, 1988).
Uma vez que a fixação em formol é o procedimento
padrão para a rotina de preservação dos tecidos, nos
casos onde não há suspeita clínica de raiva ou onde há
deficiências de transporte ou refrigeração na região, o
diagnóstico desta enfermidade pode ser prejudicado
pela mesma, pois o procedimento padrão exige a utilização de material fresco congelado ou preservado em
glicerina. A marcação por imunofluorescência direta
89
RPCV - 47.indd 89
7/14/2004 11:40:40 AM
Machado, G. F. et al.
RPCV (2004) 99 (550) 89-92
Figura 1 - A - Porcentagem de animais que apresentaram diagnóstico positivo para raiva baseada na observação de cortes corados pela H-E (corpúsculos de inclusão característico) e de animais que apresentaram imunomarcação positiva para detecção do vírus da raiva pelo método imunoistoquímico.
B - Comparação entre a detecção de corpúsculos de Negri (coloração H-E) e a porcentagem de imunorreatividade ao antigénio viral detectada após a
utilização do método da imunoperoxidase indireto em diferentes regiões.
do antígeno rábico em encéfalo fresco ou congelado é
essencial para o diagnóstico de rotina de raiva (Smith,
1995). A detecção de antigénio viral em casos de raiva através de imunofluorescência em tecidos fixados
em formol foi previamente relatada por Johnson et al.,
(1980). E depois disto, alguns autores demonstraram
que a digestão enzimática com pepsina e tripsina aumentava a sensibilidade do método (Reid et al., 1983),
embora outros como Fekadu e Shaddock (1984) não
comprovassem a eficiência da técnica em tecidos preservados em formol ou em blocos de parafina por mais
de oito anos.
A
B
C
D
Figura 2 - Fotomicrografias de encéfalos de cães com diagnóstico positivo para raiva. A - Múltiplos corpúsculos de Negri observados em neurónio (seta),
H-E. B - Detecção de antigénios virais na forma de agregados arredondados ou ovalados (seta) em neurónios do tronco cerebral, imunoistoquímica
revelada por DAB. C - Positividade de antigénios virais com padrão granular no citoplasma de neurónios. D - Positividade granular (seta) e na forma
agregados maiores, arredondados/ovalados em neurónios hipocampais. Todas as fotografias foram realizadas usando a objetiva 40 X exceto no item C
onde se utilizou a objetiva 100 X.
90
RPCV - 47.indd 90
7/14/2004 11:40:47 AM
Machado, G. F. et al.
O uso de métodos de recuperação antigênica em
tecidos fixado tem mostrado utilidade para pesquisa retrospectiva no material mantido nos arquivos de
centros de diagnóstico. Além dos tratamentos enzimáticos, a utilização de calor (microondas, panela de
pressão, autoclave) vem sendo utilizada associada ou
não às enzimas (ex. tripsina, pronase) para melhorar a
imunodetecção de antigénios nos tecidos (Cattoretti et
al., 1993).
Material e métodos
O material utilizado foi obtido junto ao arquivo do Serviço de Patologia do Departamento de Clínica Cirurgia
e Reprodução Animal (DCCRA). Os encéfalos estavam
mantidos em solução de formol a 10% não tamponado.
Os cães foram sacrificados apresentando sintomas neurológicos característicos da doença durante o surto de raiva
ocorrido na cidade de Araçatuba - SP em 1994/1995. O
tempo de permanência na solução fixadora variou de 4-5
anos. Os exames que determinaram positividade para o
vírus da raiva foram realizados previamente no Laboratório de Raiva do Departamento de Apoio, Produção e
Sanidade Animal (DAPSA), utilizando-se do método da
imunofluorescência direta e de prova biológica em camundongos.
Após o procedimento de rotina para inclusão em parafina, foram obtidos cortes com 5µ em lâminas com PolyL-Lisine (Sigma). O exame de rotina do material corado pela hematoxilina e eosina (H&E) foi realizado em
pelo menos um corte de cada região estudada. O método
imunohistoquímica utilizado foi o da imunoperoxidase
indireta. O anticorpo primário utilizado foi produzido
em carneiro, imunizado com vacina Pasteur Merieux®.
Cada carneiro recebeu 2 mL de vacina junto com 120 µL
de avridine, como adjuvante, por via subcutânea. Foram
realizadas quatro imunizações com intervalo de uma semana. A sangria final foi realizada após os animais terem
recebido dois “boosters” com intervalo de um mês entre
eles. A dosagem de anticorpos do soro hiperimune realizada por soroneutralização, segundo Atanasiu (1967)
resultou em título de 1:900.
Após desparafinização e hidratação dos cortes, foi realizado o bloqueio da peroxidase endógena (peróxido de
hidrogênio 1% em metanol). Os cortes foram lavados
três vezes com tampão fosfato tamponado (pH 7,0) e a
recuperação antigênica realizada em forno microondas
(com tampão citrato pH 6,0) seguida de digestão enzimática (tripsina 0,1% por 30 minutos a 37 ºC). Antes da
incubação com o anticorpo primário antivírus da raiva,
os sítios de ligação inespecíficos foram bloqueados com
leite em pó desnatado (3% em PBS pH 7,4, 30 minutos). O anticorpo primário foi usado na diluição 1:100
(18 horas mantido a 4 ºC). Os cortes foram então lavados
e incubados com o anticorpo secundário (jumento anti
ovino SIGMA 9015) 1:100 durante 45 minutos. Diaminobenzidina (DAB) foi usada como cromógeno e, após
interromper a reação com água, os cortes foram contra-
RPCV (2004) 99 (550) 89-92
corados com Hematoxilina de Harris e montados conforme procedimento padrão.
Cortes provenientes do encéfalo de bovino (mantidos
por curto período em formol 10%) com diagnóstico positivo de raiva por meio de imunofluorescência direta e
prova biológica em camundongos, e que apresentavam
corpúsculos e Negri evidentes, quando corados por hematoxilina e eosina, foram utilizados como controle
positivo. Cortes de encéfalo de cães que morreram sem
sintomatologia neurológica foram usados como controle
negativo. Para controle do anticorpo primário algumas
lâminas foram processadas omitindo-se a incubação com
o mesmo.
Resultados
Na coloração pela H-E foram detectados corpúsculos
de inclusão em 11 encéfalos, o que correspondeu a 55%,
enquanto que com o método da imunoperoxidase indireto para detecção de antigénios do vírus da raiva, a marcação positiva foi observada em 70% dos encéfalos (Figura
1A). Corpúsculos de Negri foram observados com maior
freqüência em neurónios localizados na região do bulbo
(54%) e formação hipocampal (45%) e com menor freqüência no tálamo/hipotálamo e núcleo caudato (18%)
(Figura 1B).
O tratamento enzimático seguido por tratamento pelo
calor em forno microondas resultou em melhor detecção
de antigénios virais.
A imunohistoquímica demonstrou a presença do antigénios no citoplasma dos neurônios na forma de dois padrões distintos: agregados de forma particulada e difusa
ou de forma redonda ou oval, semelhantes a corpúsculos
de inclusão típico, múltiplos ou unitários (Figuras 2 B,
C e D). A forma particulada e difusa não foi detectada
nos cortes corados pela hematoxilina-eosina. As principais áreas onde a imunorreatividade foi observada foram:
o tronco cerebral (72%), hipocampo (55%) e neurônio da
região do tálamo/hipotálamo (22%) (Figura 1A).
Discussão
A utilização da técnica da imunoperoxidase (método
indireto) para detecção de antigénios do vírus da raiva
apresentou bons resultados, permitindo a observação
do antigénio viral no citoplasma de neurónios (Figuras
2 B, C e D) com distribuição semelhante às citadas na
literatura (Zimmer et al., 1990). Observando a Figura
1A e B, constatamos também que a imunoistoquímica
mostrou maior eficiência na comprovação do diagnóstico de raiva do que a detecção de corpúsculos de inclusão em cortes corados pela H-E. Segundo Jubb et al.
(1993), a freqüência com que as inclusões são observadas no SNC de animais com raiva varia muito. Neste
caso, é possível que as mesmas não tenham sido observadas em maior número, porque os cães foram capturados e
sacrificados (surto de raiva urbana em 1994/1995) e não
91
RPCV - 47.indd 91
7/14/2004 11:40:47 AM
Machado, G. F. et al.
tiveram morte natural. Reid et al. (1983) demonstraram
que se o título do vírus é baixo (103 MICLD50 0,03mL)
resultados falso negativos podem ocorrer quando o teste
de imunofluorescência é utilizado após digestão enzimática com tripsina em tecido fixado em formol.
Em casos onde o diagnóstico de raiva não é concluído
mesmo após exame neuropatológico detalhado, a imunohistoquímica tem mostrado ser uma ferramenta útil
(Jogai et al., 2000). Segundo Zimmer et al. (1990) a imunofluorescência e a imunoperoxidase detectaram antigénios virais em 98% dos casos, o que as tornam métodos
confiáveis de diagnóstico. A detecção de antigénios do
vírus da raiva através de imunohistoquímica em 70% dos
encéfalos utilizados nesta pesquisa pode ter sido decorrente do baixo título existente no momento da morte do
animal ou estar associada ao longo tempo de permanência do tecido em formol não tamponado. Mesmo assim,
observamos maior eficiência na detecção de antigénios
da raiva pela imunoperoxidase do que na observação de
corpúsculos de inclusão em cortes corados pela H-E.
O uso de digestão enzimática para melhorar a intensidade das reações de imunohistoquímica para diagnóstico de raiva tem sido descrito em trabalhos como os
de Budka e Popow-Kraupp (1981), Reid et al. (1983),
Bourgon e Charlton (1987) e Fekadu et al. (1988). Warner et al. (1997) destacam ainda a importância deste tipo
de fixador para preservação da morfologia celular. Após
digestão enzimática com tripsina 0,1% durante 30, 45 e
60 minutos a 37 ºC, não observamos imunomarcação positiva de antigénios virais, mas o tratamento enzimático
seguido por tratamento pelo calor em forno microondas
resultou em boa detecção do vírus.
A imunoperoxidase indireta é um método rápido e
pode ser usada para o diagnóstico de rotina em casos
onde inicialmente não há suspeita de raiva, e o tecido
é enviado para diagnóstico em solução de formol 10%,
ou de material enviado de forma inadequada para a realização da prova biológica. Como em muitas ocasiões,
apenas tecido fixado em formol se encontra disponível
para o diagnóstico post mortem, a recuperação antigênica
através de métodos enzimáticos ou do tratamento pelo
calor (forno microondas ou panela de pressão) demonstrou grande utilidade no aproveitamento de material. O
método também é útil, pois permite a pesquisa retrospectiva, mas deve-se considerar o tempo de permanência na
solução fixadora para a avaliação dos resultados.
Agradecimentos
RPCV (2004) 99 (550) 89-92
Bibliografia
Atanasiu, P. (1967) Titrage des anticorps rabiques pratique sur les
sérum humaines. Bulletin Office Inernational des Epizooties,
67, 383-387.
Bourgon, A.R., Charlton, K.M. (1987). The demonstration of rabies antigen in paraffin-embedded tissues using the peroxidase-antiperoxidase method: a comparative study. Canadian
Veterinary Research, 51, 117-120.
Budka, H., Popow-Kraupp, T. (1981). Rabies and herpes simplex
vírus encephalitis in immunohistological study on site and
distribution of viral antigens. Virchows Archives (Pathology
anatomy and histology), 390, 353-364.
Cattoretti, G., Pileri, S., Parravicini, C., Becker, M.G.H., Poggi, S.,
Bifulco, C., Key, G., Dámato, L., Sabattini, E., Feudale, E.,
Reynolds, F., Gerdes, J., Rilke, F. (1993). Antigen unmasking
on formalin-fixed, paraffin-embedded tissue sections. Journal of Pathology, 171, 83-98.
Debie, J.G. (1988). Rabies: an old enemy that can be defeated.
WHO Forum, 9, 536-542.
Fekadu, M., Shaddock, J.H. (1984). Peripheral distribution of virus
in dogs inoculated with two rabies strains. Journal of American Veterinary Research, 45, 724-729.
Fekadu, M., Smith, J.S. (1986). Laboratory diagnosis of rabies. In:
Rabies Concepts for Medical Professionals. Eds. Fishbein
DM, Sawer LA, Winkler WG. Miami: Merieux Institute, 3742.
Fekadu, M., Greer P.W., Chandler, F.W., Sanderlin, D.W. (1988).
Use of avidin-biotin peroxidase system to detect rabies antigen in formalin-fixed paraffin-embedded tissues. Journal of
Virological Methods, 19, 91-96.
Jogai, S., Radotra, B.D., Banerjee, A.K. (2000). Immunohistochemical study of human rabies. Neuropathology, 20, 197-203.
Johnson, K.P., Swoveland, P.T. (1980). Emmons R.W. Diagnosis of
rabies by immunofluorescence in trypsin-treated histologic
sections. Journal of the American Medical Association 244,
41-43.
Jubb, K.V.L., Kennedy, P.C., Palmer, N. (eds) (1993). Pathology
of Domestic Animals. 4th ed, San Diego: Academic Press,
1, 267-437.
Reid, F.L., Hall, N.H., Smith, J.S., Baer, G.M. (1983). Increased
immunofluorescent staining of rabies-infected, formalin-fixed brain tissue alter pepsin and trypsin digestion. Journal of
Clinical Microbiology, 18, 968-971.
Smith, J.S. (1995). Rabies virus. In: Murray, P.R., Baron, E.J.,
Pfaller, M.A., Tenover, F.C., Yolken, R.H., (Eds.) Manual of
Clinical Microbiology, 6th ed. Washington DC: A S M Press,
997-1003.
Warner, C.K., Whitfield, S.G., Fekadu, M., Ho, H. (1997). Procedure for reproducible detection of rabies antigen mRNA and
genome in situ in formalin-fixed tissues. Journal of Virological. Methods, 67, 5-12.
Zimmer, K., Wiegand, O., Manz, D., Frost, J.W., Relnacher, M.,
Frese, K. (1990). Evaluation of five different methods for
routine diagnosis of rabies. Zentralblatt fur Veterinarimedizin
Reiae B, 37, 392-400.
À Magna Adriana da Silva Galvão pelo processamento
do material e a FUNDUNESP (001/98 DFP) pelo financiamento do projeto.
92
RPCV - 47.indd 92
7/14/2004 11:40:48 AM
Download