universidade tuiuti do paraná - TCC On-line

UNIVERSIDADE TUIUTI DO PARANÁ
Faculdade de Ciências Biológicas e de Saúde
Curso de Medicina Veterinária
Ana Carolina Hoffmann da Costa E Silva
TRABALHO DE CONCLUSÃO DE CURSO
(T.C.C.)
Curitiba
2007
UNIVERSIDADE TUIUTI DO PARANÁ
Faculdade de Ciências Biológicas e de Saúde
Curso de Medicina Veterinária
TRABALHO DE CONCLUSÃO DE CURSO
(T.C.C.)
Curitiba
2007
Ana Carolina Hoffmann da Costa e Silva
TRABALHO DE CONCLUSÃO DE CURSO
(T.C.C.)
Trabalho de Conclusão de Curso, apresentado ao
Curso de Medicina veterinária, da Faculdade de
Ciências Biológicas e da Saúde, da Universidade
Tuiuti do Paraná, como requisito parcial para a
obtenção do Título de Médico Veterinário.
Professor Orientador: Profª. Michele Salmon
Frehse.
Orientador Profissional: M.V. Cristóvão Câmara
Pereira.
Curitiba
2007
Reitor
Profº Luiz Guilherme Rangel Santos
Pró-Reitor Administrativo
Sr. Carlos Eduardo Rangel Santos
Pró-Reitora Acadêmica
Profª Carmen Luiza da Silva
Pró-Reitor de Planejamento
Sr. Afonso Celso Rangel dos Santos
Pró-Reitora de Pós-Graduação, Pesquisa e Extensão
Profª Elizabeth Tereza Brunini Sbardelini
Secretário Geral
Profº João Henrique Ribas de Lima
Diretor da Faculdade de Ciências Biológicas e da Saúde
Profº João Henrique Faryniuk
Coordenador do Curso de Medicina Veterinária
Profª Neide Mariko Tanaka
Coordenador de Estágio Curricular do Curso de Medicina Veterinária
Profª Elza Ciffoni Galvão
CAMPUS CHAMPAGNAT
Rua: Marcelino Champagnat, 505 - Mercês
CEP 80.215-090 – Curitiba – PR
Fone: (41) 3331-7953
ii
TERMO DE APROVAÇÃO
Ana Carolina Hoffmann da Costa e Silva
TRABALHO DE CONCLUSÃO DE CURSO
Este Trabalho de Conclusão de Curso, o qual é composto por um Relatório de Estágio Curricular e
uma Dissertação (Monografia), foi julgado e aprovado para a obtenção do Título de Médico
Veterinário, no Programa (Curso) de Medicina Veterinária da Universidade Tuiuti do Paraná.
Curitiba, 31 de Maio de 2007.
____________________________________
Curso de Medicina Veterinária
Universidade Tuiuti do Paraná
Orientadora:
Profª. Michele S Frehse
Universidade Tuiuti do Paraná
Prof. Lourenço Rolando Malucelli Neto
Universidade Tuiuti do Paraná
Profª. Tais Marchand Rocha Moreira
Universidade Tuiuti do Paraná
iii
APRESENTAÇÃO
Este Trabalho de Conclusão de Curso (T.C.C.) apresentado ao Curso de
Medicina Veterinária da Faculdade de Ciências Biológicas e de Saúde da
Universidade Tuiuti do Paraná, como requisito parcial para a obtenção do título de
Médico Veterinário é composto de um Relatório de Estágio, no qual são descritas
as atividades realizadas durante o período de 26/02 a 25/04/2007, período este em
que estive na Clínica Veterinária Pet Social, localizada na Cidade de Curitiba
cumprindo estágio curricular e também de uma Monografia que versa sobre o tema:
“Neoplasias das Glândulas Mamárias em Cães”.
iv
DEDICATÓRIA
Dedico meu Trabalho de Conclusão de Curso, à minha família que
sempre esteve do meu lado, sempre me deu força e acreditou que eu iria vencer na
vida. Aos meus amigos e meu namorado VITOR, que mesmo nas horas que eu
estava estudando entenderam minha ausência e sempre permaneceram ao meu
lado. Aos meus cães o SPAIK, o ÁTILA, o DRACO, a DALILA, o TOBI e o SHELBY,
que sempre foram ótimas cobaias e fontes de estudo, onde tudo que eu aprendia
testava neles e eles sempre aceitaram e colaboraram.
Ás minhas avós, a VOVÓ RUTH e a VOVÓ LOURDES, que sempre
acreditaram na minha dedicação.
À minha mãe MARA CRISTINA e ao meu pai GILBERTO, que
estiveram sempre presente ao meu lado, me orientando e incentivando,
DEDICO
v
AGRADECIMENTOS
Agradeço principalmente aos meus pais, Mara Cristina e Gilberto por
terem me proporcionado esta oportunidade, por nunca ter deixado de me incentivar
e me orientar, pela dedicação, por terem me tornado essa pessoa que sou hoje e
por seu apoio nos momentos difíceis desta difícil e árdua jornada, à minha irmã
Gisleine e meu irmão Guilherme Augusto, que sempre estiveram ao meu lado em
todos os momentos, que mesmo sem saberem me ajudaram, me apoiaram e me
incentivaram a cada vez ser uma pessoa melhor. Ás minhas avós Vovó Ruth e Vovó
Lourdes, que sempre estiveram do meu lado, batalharam por mim, que sempre se
orgulham de mim e eu delas.
Agradeço ao meu namorado Vitor, que sempre esteve do meu lado,
me incentivando, me ajudando a enfrentar os desafios da vida, me amando e acima
de tudo sempre ao me lado, vivendo comigo todas as minhas batalhas, derrotas e
principalmente as vitórias.
Agradeço á todos que estiveram ao meu lado todos esses anos que
cursei a faculdade, agradeço por terem me agüentado quando eu estava nervosa ou
ansiosa nas semanas das provas, por estarem do meu lado quando eu chorava, mas
acima de tudo quando eu mais estive precisando, me protegera, me apoiaram e me
deram força de continuar batalhando.
Aos meus grandes mestres: Ambires, Antônio Carlos do Nascimento,
Lucimeris Ruaro, Ana Luisa Palhano Silva, Dirnei Baroni, Elza Galvão Ciffoni, Ítalo
Minardi, Ivana Bilotta, João Ari Gualberto Hill, João Batista Padilha Junior, João Luiz
Androukovitch, José Mauricio França, Lourenço Rolando Malucelli Neto, Luiz
Augusto Gasparetto, Rosária, Maria Aparecida de Alcantara, Maria do Carmo
Pessoa da Silva, Mário João Figueiredo, Neide, Paulo Nocera, Ricardo Maia, Ana
Laura, Sérgio Bronze, Funayama, Silvana, Tais Moreira, Uriel Vinicius Andrande,
Valmir Kowalewski de Souza, Welington Hartmann, Roseli Borges, Pedro Werner,
Homero, Dicezar, Marlon Siqueira, Anderson, dentre muitos outros, por partilharem
seus conhecimentos, sua amizade e mais que isso, o respeito pela vida, na tentativa
vi
nobre de formar profissionais, Médicos Veterinários e acima de tudo, grandes
cidadãos.
Gostaria de agradecer também à minha amiga Priscilla que mesmo no
Rio Grande do Sul, sempre está ao meu lado me apoiando e incentivando a vencer
os desafios da vida, ao João que sempre está do meu lado me incentivando e
apoiando. À Mara, que além de amigona me ensinou pequenas técnicas para
trabalhar com cães e gatos, à Vanessa que mesmo quando eu estava triste e
nervosa conseguia levantar o meu astral, à Marta e a Grácia, que sempre estiveram
do meu lado, me apoiando e auxiliando a nunca desistir.
Aos meus companheiros da faculdade principalmente à Amanda que
durante toda a faculdade esteve ao meu lado e à Susanlay que sempre me
incentivou, me auxiliou nos trabalhos e nos estudos para as provas, “Ah se não
fosse a Susan e suas aulinhas trinta minutos antes das provas o que seria de mim?”.
À Professora MV. Dra. Michele Frehse, por me auxiliar durante a elaboração desse trabalho, por sua orientação, dedicação e amizade acima de tudo.
Ao MV. Dr. Cristóvão Câmara Pereira, meu orientador profissional, que
sempre me ensinou e partilhou tudo o que foi possível, sempre foi um grande amigo
um grande profissional, sempre me apoiou, me incentivou, me auxiliou a me tornar
uma profissional séria e competente.
E além de tudo obrigada por todos que estiveram do meu lado, tanto na
Vida acadêmica, quanto em toda a minha vida, muito obrigada.
vii
Vigie seus pensamentos, porque eles se tornarão palavras;
Vigie suas palavras, porque elas se tornarão atos;
Vigie seus atos, porque eles se tornarão seus hábitos;
Vigie seus hábitos, porque eles se tornarão seu caráter;
Vigie seu caráter, porque ele se tornará seu destino.
(Desconhecido)
viii
UNIVERSIDADE TUIUTI DO PARANÁ
Faculdade de Ciências Biológicas e de Saúde
Curso de Medicina Veterinária
RELATÓRIO DE ESTÁGIO CURRICULAR
CLÍNICA VETERINÁRIA PET SOCIAL
Curitiba
2007
Ana Carolina Hoffmann da Costa e Silva
RELATÓRIO DE ESTÁGIO CURRICULAR
CLÍNICA VETERINÁRIA PET SOCIAL
Relatório de Estágio Curricular apresentado ao
Curso de Medicina Veterinária da Faculdade
de Ciências Biológicas e da Saúde da Universidade
Tuiuti do Paraná,
como
requisito
parcial para
obtenção do título de Médico Veterinário.
Professor Orientador: Profª. Michele Salmon Frehse.
Orientador Profissional: M.V. Cristóvão Câmara Pereira.
Curitiba
2007
SUMÁRIO
LISTA DE FIGURAS......................................................................................iii
LISTA DE ABREVIATURAS.........................................................................iv
LISTA DE TABELAS.....................................................................................v
RESUMO......................................................................................................vii
1. INTRODUÇÃO........................................................................................... 1
2. LOCAL DO ESTÁGIO................................................................................2
3. ATENDIMENTOS REALIZADOS NA CLINICA PET SOCIAL..................6
4. CASOS CLÍNICOS.................................................................................. 12
4.1 DERMATOLOGIA ..................................................................................12
4.1.1Dermatite Alérgica à Picada de Pulgas................................................12
4.2 DERMATOLOGIA...................................................................................20
4.2.1 Sarna Demodécica/ Demodicose........................................................20
4.3 REPRODUÇÃO ANIMAL........................................................................27
4.3.1 Prolapso Vaginal..................................................................................27
4.4 CARDIOLOGIA.......................................................................................33
4.4.1 Síndrome do Seio Enfermo/ Doente....................................................33
4.5 DERMATOLOGIA...................................................................................40
4.5.1 Hipersensibilidade Alimentar...............................................................40
4.6 OTOLOGIA.............................................................................................47
4.6.1 Otite Media Bacteriana........................................................................47
4.7 ENDOCRINOLOGIA...............................................................................57
4.7.1 Hipotireoidismo....................................................................................57
4.8 ODONTOLOGIA.....................................................................................64
4.8.1 Cálculo Dentário..................................................................................64
5. CONCLUSÃO...........................................................................................72
6. REFERÊNCIAS........................................................................................73
ii
LISTA DE FIGURAS
FIGURA 1: CLÍNICA VETERINÁRIA PET SOCIAL........................................2
FIGURA 2: PSICOLOGIA ANIMAL.................................................................3
FIGURA 3: FARMÁCIA ..................................................................................3
FIGURA 4: CONSULTÓRIO VETERINÁRIO............................................... .3
FIGURA 5: SALA DE CIRURGIA...................................................................4
FIGURA 6: RECEPÇÃO.................................................................................5
FIGURA 7: SALA DE INTERNAMENTO........................................................5
FIGURA 8: CTENOCEPHALIDES FELIS.....................................................13
FIGURA 9: PULEX SIMULANS....................................................................13
FIGURA 10: PULEX IRRITANS....................................................................13
FIGURA 11: LESÕES CAUSADAS PELA DERMATITE ALÉRGICA À
PICADA DE PULGAS.................................................................................. 17
FIGURA 12: DEMODEX CANIS...................................................................22
FIGURA 13: CÃO COM DEMODICOSE (PLACAS PRATEADAS)..............25
FIGURA 14: O PROLAPSO VAGINAL, APÓS QUATRO DIAS DO
APARECIMENTO.........................................................................................32
FIGURA 15: DONNA 2, FILA BRASILEIRO COM PROLAPSO VAGINAL .32
FIGURA 16: ESQUEMA DE FUNCIONAMENTO DO MIOCÁRDIO............35
FIGURA 17: MARCA DE RAÇÃO USADA NO MANEJO DA HIPERSENSIBILIDADE ALIMENTAR................................................................................44
FIGURA 18: ANGEL, LHASA APSO COM HIPERSENSIBILIDADE ALIMENTAR.......................................................................................................46
FIGURA 19: ANATOMIA DA ORELHA DE CÃES E GATOS.......................49
FIGURA 20: CÁLCULO DENTÁRIO.............................................................65
FIGURA 21: KATUCHA, DURANTE A
RAMOÇÃO DE CÁLCULO
DENTÁRIO.................................................................................................. 69
iii
LISTA DE ABREVIATURAS
BID: duas vezes ao dia
bpm: Batidas por Minuto
cm: centímetro
CHCM:Concentração de Hemoglobina Corpuscular Média
DAPP: Dermatite Alérgica à Picada de Pulga
HCM: Hemoglobina Corpuscular Média
IM: intramuscular
IV: intravenoso
kg: quilogramas
mg: miligramas
mg/kg: miligrama por quilogramas
ml/kg: mililitros por quilograma
ppm: Ondas P por Minuto
Ph: Potencial Hidrogeniônico
PVPI: Polivinilpirrolidona iodo
SC: subcutâneo
SID: uma vez ao dia
TID: três vezes ao dia
TPC: Tempo de Preenchimento Capilar
TSH: Hormônio Tireotrófico
T3: Tri-iodotironina
T4: Tiroxina
VCM: Volume Corpuscular Médio
VO: via oral
ºC: Graus Celcius
%: por cento
iv
LISTA DE TABELAS
TABELA 1: CASUÍSTICA DE DERMATOLOGIA NA CLÍNICA
VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07...........6
TABELA 2- CASUÍTICA DE GASTROENTEROLOGIA NA CLÍNICA
VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04......................6
TABELA 3- CASUÍTICA DE CARDIOLOGIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA
PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04..............................................7
TABELA 4- CASUÍTICA DE DOENÇAS INFECCIOSAS NA CLÍNICA
VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04......................7
TABELA 5- CASUÍTICA DE ENDÓCRINOLOGIA NA CLÍNICA
VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04......................7
TABELA 6- CASUÍTICA DE DISTÚRBIOS REPRODUTORES E
HORMONAIS NA CLÍNICA VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS
26/02 A 25/04.................................................................................................8
TABELA 7- CASUÍTICA DE OFTALMOLOGIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA
PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04..............................................8
TABELA 8- CASUÍTICA DE NEFROLOGIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04......................................................8
TABELA 9- CASUÍTICA DE ORTOPEDIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04......................................................9
TABELA 10- CASUÍTICA DE HEPATOLOGIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA
PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04..............................................9
TABELA 11- CASUÍTICA DE OTOLOGIA NA CLÍNICA VETERNÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04....................................................10
TABELA 12- CASUÍTICA DE SISTEMA RESPIRATÓRIO NA CLÍNICA
VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04....................10
TABELA 13- CASUÍTICA DE PROCEDIMENTOS CIRURGICOS NA
CLÍNICA VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04.....10
v
TABELA 14- CASUÍTICA DE PROCEDIMENTOS ODONTOLÓGICOS NA
CLÍNICA VETERNÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04........11
TABELA 15- CASUÍTICA DE EMERGÊNCIAS NA CLÍNICA VETERNÁRIA
PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02 A 25/04...............................................11
TABELA 16- EXAME OTOLÓGICO PARA LINCOSAMÍDEOS (L).................54
TABELA 17- EXAME OTOLÓGICO PARA INIBIDORES DE FOLATO –
SULFAS (S).....................................................................................................54
TABELA 18- EXAME OTOLÓGICO PARA BETA-LACTÂMICOS (B).............55
TABELA 19- EXAME OTOLÓGICO PARA AMINOGLICOSÍDEOS (A)..........55
TABELA 20- EXAME OTOLÓGICO PARA MACROLÍDEOAS (M)................55
TABELA 21- EXAME OTOLÓGICO PARA TETRACICLINAS (T)..................56
TABELA 22- EXAME OTOLÓGICO PARA FENICÓIS (F)..............................56
TALELA 23- EXAME OTOLÓGICO PARA NITROFURANTOÍNAS (N)..........56
TABELA 24- EXAME OTOLÓGICO PARA QUINOLONAS (Q)......................56
TABELA 25- EXAME OTOLÓGICO PARA CARBAPENEMA(C)....................56
vi
RESUMO
O Estágio Curricular foi realizado na Clínica Veterinária Pet Social, localizada
no bairro Alto da Rua XV. Onde foram realizados atendimentos para animais de
companhia, principalmente cães e gatos. Na Clínica Veterinária Pet Social são
realizadas consultas gerais, consultas dermatológicas e homeopáticas,
consultas domiciliares, procedimentos odontológicos, procedimentos cirúrgicos
diversos, coleta de material para exames laboratoriais, exames
complementares em geral, vacinações, vermifugações, aplicações de antipulgas, dentre outros procedimentos. Sob a Orientação dos Médicos
Veterinários Cristóvão Câmara Pereira e a Ângela Almeida C Segui.
Palavras-chave: Clínica Veterinária Pet Social; Animais de companhia;
Consultas.
vii
1
1. INTRODUÇÃO
Como determinação do Ministério da Educação e Cultura (MEC), o Curso de
Medicina Veterinária da Faculdade de Ciências Biológicas e de Saúde da UTP, criou
o Estágio Curricular, que obriga o acadêmico a realizar um estágio supervisionado
após concluir todas as disciplinas curriculares e a seguir, defender perante uma
banca, o Trabalho de Conclusão de Curso, sendo considerado apto a receber o grau
de Médico Veterinário.
Como pró determinação, o Estágio Curricular Obrigatório fora realizado na
Clínica Veterinária Pet Social. Onde trabalha com animais de companhia, com
consultas de clínica geral, clínica dermatológica e homeopática, consultas
domiciliares, cirurgias, procedimentos odontológicos, outros procedimentos, exames
complementares em geral, etc.
No Estágio Curricular foram observados casos clínicos diversos, desde casos
de dermatologia veterinária, com tratamentos alopáticos e homeopáticos especial
para cada caso particularmente, como por exemplo dermatites bacterianas, sarnas
otodécicas e demodécicas, hipersensibilidade alimentar e micoses. Procedimentos
odontológicos, desde a consulta até o procedimento cirúrgico odontológico, como
por exemplo, as extrações dentárias e extração de cálculos dentários. Até
procedimentos
cirúrgicos
diversos,
como
por
exemplo,
a
ováriosalpingohisterectomia, a retirada de piometra com ovariosalpingohisterectomia
e outros procedimentos como coleta de material para exames laboratoriais e
bioquímicos.
2
2. DESCRIÇÃO DO LOCAL DO ESTÁGIO
A Clínica Veterinária Pet Social (FIGURA 1), localiza-se na Rua Almirante
Tamandaré, número 1293, no bairro Alto da Rua XV.
FIGURA 1: CLÍNICA VETERINÁRIA PET SOCIAL
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
Destinada a prestar atendimento para animais de companhia, pensando
sempre no bem estar animal e de seus proprietários. A clínica também conta com o
atendimento psicológico (FIGURA 2) para animais de companhia.
Uma clínica Veterinária composta por um consultório, uma sala de cirurgia,
uma sala de internamento, uma sala de radiografia, uma sala de revelação, banho e
tosa, uma recepção, serviço de hospedagem, área externa de lazer para cães, canis
externos, uma farmácia veterinária (FIGURA 3) e a venda de algumas marcas de
rações. A clinica conta com tais aparelhos para auxiliar no diagnóstico, tais como
microscópio, raio X, Lâmpada de Wood, lupa dermatológica e Ultrassom. Além das
balanças de pesagem, uma pediátrica para animais menores e uma balança
3
específica veterinária digital e negatoscópio, uma no consultório e outro na sala de
cirurgia.
FIGURA 2: PSICOLOGIA ANIMAL
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007
FIGURA 3: FARMÁCIA
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
Sendo eles o Médico Veterinário Cristóvão Câmara Pereira, a Médica
Veterinária Ângela Almeida e a Psicóloga de animais de companhia, a Karina Maruo,
para tratamento comportamental dos animais e de seus proprietários, onde estuda e
trabalha com o relacionamento comportamental dos animais e seus donos,
ensinando-os e auxiliando-os para uma convivência melhor para ambos, formada
em psicologia e também especialista em adestramento de animais de companhia.
FIGURA 4: CONSULTÓRIO VETERINÁRIO
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007
4
FIGURA 5: SALA DE CIRURGIA
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
A clínica possui um consultório (FIGURA 4), com mesa para consultas com
um colchonete macio para o conforto do paciente, pisos claro e liso para não
acumular resíduos, paredes azulejadas até acima da metade da parede para melhor
higienização, da mesa e da bancada. Com microscópio, balança pediátrica, pia para
lavagem das mãos e utensílios. E computador para demonstrar cada doença
específica aos proprietários através de programas, onde os proprietários podem ver
a doença, conhece-la melhor, sua progressão se não for tratada e os resultados
após o tratamento correto.
A sala de cirurgia (FIGURA 5), que contém aparelhos de anestesia, mesa de
cirurgia, colchão térmico, cilindro de oxigênio, iluminação especial, uma pia para a
higienização, com paredes e chão claros para não haver acúmulo de resíduos e
facilitar a higienização.
A sala de Internamento (FIGURA 7) para cães e gatos, é toda azulejada, com
quatro gaiolas duas pequenas e duas grandes, podendo comportar até quatro
animais, podendo ser dois grandes e dois pequenos, cada gaiola. Contendo também
uma mesa de procedimentos, papel toalha, antissépticos, dentre outros materiais.
5
FIGURA 6: RECEPÇÃO
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
FIGURA 7: SALA DE INTERNAMENTO
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
A recepção (FIGURA 6) é bem iluminada, toda na cor branca e na cor da
clínica, azul. Na sala de espera localizam-se a farmácia e a venda de rações.
6
3. ATENDIMENTOS REALIZADOS NA CLÍNICA PET SOCIAL
Atendimentos realizados na Clínica Veterinária Pet Social, durante o período
do dia 26 de Fevereiro de 2007 ao dia 25 de Abril de 2007. Atendidos pelos Médicos
Veterinários o Dr. Cristóvão Câmara Pereira e a Dra. Ângela Almeida Segui.
TABELA 1: CASUÍSTICA DE DERMATOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Hipersensibilidade à Picada de Inseto/ pulgas
08
1,69
Dermatite Bacteriana
15
3,18
Hipersensibilidade Alimentar
15
3,18
Pododermatite
01
0,21
Demodicose
03
0,64
Malassezia
02
0,42
Micose
02
0,42
Lesão Traumática Pós Tosa
01
0,21
TOTAL
47
9,96
TABELA 2: CASUÍSTICA DE GASTROENTEROLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA
PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Gastroenterite Hemorrágica
01
0,21
TOTAL
04
0,2
7
TABELA 3: CASUÍSTICA DE CARDIOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Insuficiência Mitral
01
0,21
Síndrome do Seio Enfermo/ Doente
01
0,21
TOTAL
02
0,42
TABELA
4:
CASUÍSTICA
DE
DOENÇAS
INFECCIOSAS
NA
CLÍNICA
VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Leptospirose
01
0,21
TOTAL
01
0,21
TABELA 5: CASUÍSTICA DE ENDÓCRINOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Hipotireoidismo
03
0,64
Diabete Melito
02
0,42
Hiperestrogenismo
01
0,21
TOTAL
06
1,27
8
TABELA 6: CASUÍSTICA DE DISTÚRBIOS REPRODUTORES E HORMONAIS NA
CLÍNICA VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Prolapso Vaginal
01
0,21
Pseudociese
07
1,48
Galactorréia
01
0,21
TOTAL
11
2,33
TABELA 7: CASUÍSTICA DE OFTALMOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Ceratoconjuntivite Seca
07
1,48
TOTAL
07
1,48
TABELA 8: CASUÍSTICA DE NEFROLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Insuficiência Renal Aguda
01
0,21
TOTAL
01
0,21
9
TABELA 9: CASUÍSTICA DE ORTOPEDIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Luxação de Patela
07
1,48
Distenção Muscular
03
0,64
Torção Articular
03
0,64
Fratura
01
0,21
Artrite
01
0,21
Compressão de Disco Intervertebral
02
0,42
Ruptura de Ligamento Cruzado
01
0,21
Displasia Coxo Femural
04
0,85
Osteoartrite
01
0,21
TOTAL
23
4,87
TABELA 10: CASUÍSTICA DE HEPATOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Insuficiência Hepática Crônica
02
0,42
TOTAL
02
0,42
10
TABELA 11: CASUÍSTICA DE OTOLOGIA NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Otite externa
02
0,42
Otite Média
04
0,85
TOTAL
06
1,27
TABELA 12: CASUÍSTICA DE CASOS DO SISTEMA RESPIRATÓRIO NA CLÍNICA
VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ ACHADOS CLÍNICOS
Nº DE CASOS
%
Traqueobronquite
04
0,84
Colapso de Traquéia
03
0,63
TOTAL
07
1,48
TABELA 13: CASUÍSTICA DE PROCEDIMENTOS CIRÚRGICOS NA CLÍNICA
VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
PROCEDIMENTOS
Nº DE CASOS
%
Ovariohisterectomia
05
1,06
Orquiectomia
01
0,21
TOTAL
06
1,27
11
TABELA 14: CASUÍSTICA DE PROCEDIMENTOS ODONTOLÓGICOS NA CLÍNICA
VETERINÁRIA PET SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
PROCEDIMENTOS
Nº DE PROCEDIMENTOS
%
Extração de Cálculo Dentário
11
2,32
Extração Dental
02
0,42
___________________________________________________________________
TOTAL
13
2,7
TABELA 15: CASUÍSTICA DE EMERGÊNCIAS NA CLÍNICA VETERINÁRIA PET
SOCIAL ENTRE OS DIAS 26/02/07 A 25/04/07.
AFECÇÕES/ PROCEDIMENTOS
Nº DE CASOS
%
Hemorragias por lesões
02
0,43
Intoxicação por Chocolate
01
0,21
TOTAL
03
0,64
12
4. CASOS CLÍNICOS
4.1 DERMATOLOGIA
4.1.1 Dermatite Alérgica à Picada de Pulga
Revisão de Literatura:
A Dermatite Alérgica à Picada de Pulga é a desordem cutânea hipersensível
mais comum nos cães, ela é uma dermatite pruriginosa e papulocrostosa ocorrente
em animais que se tornam sensibilizados a materiais alérgenos da saliva das pulgas
(LUCAS, 2006). Podem ocorrer vários tipos de hipersensibilidade como a
hipersensibilidade basofílica cutânea, hipersensibilidade imediata mediada pela
imunoglobulina E (IgE), a reação de imunoglobulina E de início tardio e a
hipersensibilidade do tipo retardado, todos sozinhos ou com combinação (BICHARD
et al, 1998).
A saliva da pulga e os extratos integrais da pulga possuem diversas
substâncias
potencialmente
antígenas,
como
polipeptídeos,
aminoácidos,
compostos aromáticos e materias fluorescentes (LUCAS, 2006). Pesquisas
demonstraram que Ctenocephalides felis (FIGURA 8), Pulex irritans (FIGURA 9) e
Pulex simulans (FIGURA 10) partilhavam antígenos comuns, e que as cobaias e
seres humanos sensibilizados para uma espécie de pulga reagiam a todas as outras
espécies (BERSTEIN, 2004).
A pulga adulta passa toda a sua vida em um hospedeiro, o cão ou o gato. Ela
pode passar de um animal para outro ou mesmo para os humanos, pulando. Para se
reproduzir, a fêmea necessita de uma refeição, ou seja, sangue. Após isso, ela
depositará seus ovos no cão ou gato. Esses ovos cairão do animal e ficarão no
ambiente. Tapetes, móveis, colchões e camas dos próprios animais irão proteger
13
esses ovos. Após três dias, esses ovos eclodirão, de onde sairão pequenas larvas
que se alimentarão de debris, fezes de outras pulgas e restos de comida. Depois,
essas larvas passarão para o estágio de pupa e finalmente se tornarão adultas.
Nessa fase, procurarão algum hospedeiro (BERSTEIN, 2004).
FIGURA 8: Ctenocephalides Felis
FONTE: extension.missouri.edu
FIGURA 9: Pulex simulans
FONTE: www.ksu.edu
FIGURA 10: Pulex irritans
FONTE: www.biol.lu.se
O ciclo de vida completo da pulga desde a fase de ovo até se tornar um
adulto já em fase de postura é de 16 dias.A temperatura mais favorável para o
amadurecimento e eclosão da pulga varia entre 26º e 32º (Celcius) (BERSTEIN,
2004). A maioria dos autores indica que nenhuma predileção por sexo ou raça seja
aparente. Entretanto, em um estudo Francês, os Setters, Fox terriers, Pequineses,
14
Spaniels e Chow-chows eram predispostos. Apesar de os cães poderem
desenvolver a dermatite alérgica à picada de pulgas em qualquer idade, é raro
desenvolver-se sinais, é raro desenvolverem-se sinais clínicos em animais com
menos de seis meses deidade. A idade mais comum de estabelecimento é de três a
cinco anos (SCOTT et al, 1996).
A Dermatite Alérgica à Picada de Pulgas caracteriza-se por dermatite
pruriginosa papular. A picada de pulga induz uma erupção ou uma pápula que
persiste até 72 horas. Podem desenvolver-se crostas na superfície das papilas. O
prurido crônico pode levar a alopecia, liquenificação, formação de crostas e
hiperpigmentação. As lesões são tipicamente confinadas à área lombossacra dorsal,
coxas caudo mediais, abdômen ventral e flancos. As pápulas crostosas na área
umbilical podem ser particularmente sugestivas de hipersensibilidade à picada de
pulgas (SCOTT et al, 1996). As lesões se localizam no dorso e em torno de todo o
pescoço, devido ao clima no Brasil ser favorável o ano todo, a Dermatite Alérgica à
Picada de Pulga pode ocorrer em qualquer época do ano, diferente de países de
climas temperados onde os sinais clínicos são mais severos no verão e no outono
(LUCAS, 2006).
Sinais
cutâneos
generalizados
podem
estar
presentes
em
animais
gravemente hipersensíveis. A dermatite piotraumática, piodermite bacteriana
secundária e seborréia secundária são comuns em casos crônicos. Nódulos
fibropruriginosos são observados ocasionalmente em casos crônicos e estão
geralmente presentes na área lombar dorsal (SCOTT et al, 1996). O prurido constitui
o sinal cínico primário observado pelo proprietário e pode se manifestar como um
mordiscamento, fricciona-se, rola ou se coça. As lesões secundárias resultam da
inflamação crônica e do traumatismo induzido pelo prurido. Podem ocorrer alopecia,
15
pêlos quebrados, pêlos secos, descamação, hiperpigmentação e liquenificação
(FIGURA 11). Os problemas secundários que podem ocorrer podem frequentemente
representar locais de infecção focais, focos de traumatismo severo possivelmente
originários do ciclo da coceira ou reação patológica diferente (BICHARD et al, 1998).
A Dermatite Alérgica à Picada de Pulgas geralmente é distintamente sazonal
(verão e outono) nas áreas do mundo com invernos rigorosos. Nos climas
moderados, ou onde a infestação persista dentro da residência, a dermatite alérgica
à picada de pulgas pode ser não-sazonal, apesar dos sinais clínicos ainda serem
mais graves no verão e no outono (SCOTT et al, 1996).
Testes cutâneos intradérmicos com extrato de pulga em cães, sugerem que a
maioria dos animais, apresentam reações de hipersensibilidade do tipo imediato ou
tipo I. Resultados de alguns testes sugeriram que cães continuamente expostos às
pulgas, podem vir a se tornarem parcialmente ou completamente tolerantes
imunologicamente (LUCAS, 2006).
Na anamnese, identificar os padrões típicos de envolvimento e a
sazonalidade compatíveis com relação ao número e ao tipo de animais de
estimação, o abrigo e o tipo de revestimento do piso, as possíveis fontes de
exposição a pulgas, o uso de pesticida atual e as preocupações do cliente com
relação ao uso de pesticidas (BICHARD et al, 1998).
O diagnóstico diferencial inclui hipersensibilidade alimentar, atopia, reação a
drogas, pediculose, queiletielose, hipersensibilidade parasitária intestinal, dermatite
por malassezia e foliculite bacteriana (SCOTT et al, 1996). O diagnóstico definitivo
baseia-se na história, exame físico, teste intradérmico usando antígeno de pulga e
resposta ao tratamento. A morfologia e as lesões cutâneas são muito sugestivas. A
16
presença de pulgas ou sujeira de pulgas também é um achado útil e é encontrado
de forma ótima (SCOTT et al, 1996).
Geralmente é complicado encontrar pulgas em um animal de pelagem muito
espessa. O uso de pentes especiais ajuda a localizar as pulgas. As “fezes” de
pulgas, nada mais são do que sangue digerido e também são um indicativo de
pulgas. Elas se assemelham à pequenos grânulos pretos de areia que se tornam
vermelhos e mancham quando umedecidos ou molhados. A presença de fezes de
pulgas indica uma infestação ativa tanto no ambiente quanto no cão (BERSTEIN,
2004). A presença de pulgas ou de seus dejetos é também um achado útil, mas a
sua ausência de modo algum impede o diagnóstico, uma vez que banhos recentes
podem remover as pulgas e seus dejetos (SCOTT et al, 1996). Em geral,
classicamente admitiu-se a dermatite alérgica à picada de pulgas em cães tende a
piorar com a idade do animal. Os sinais clínicos começam um pouco precocemente
na estação, persistem um pouco mais de tempo e tendem a tornar-se
progressivamente mais graves (SCOTT et al, 1996).
A biópsia cutânea é diagnóstica, e revela graus variáveis de dermatite
perivascular. Achados histopatológicos consistentes, com piodermites secundárias
(foliculite supurativa, dermatite pustulosa intradérmica) são comuns. Nos EUA, o
teste intradémico é um excelente método para ajudar a confirmar o diagnóstico da
dermatite alérgica à picada de pulgas (LUCAS, 2006).
O
tratamento
glicocorticóides
deve
sistêmicos
envolver
e/ou
o
controle
das
hiposensibilização.
pulgas,
Deve
ser
associado
a
administrada
prednizolona ou prednisona por via oral, na dose de 0,5 mg/Kg duas vezes ao dia
por 5-7 dias. Sequencialmente o tratamento será feito num regime de dias
alternados, conforme a necessidade (SCOTT et al, 1996). A eliminação das pulgas
17
será o tratamento singular mais efetivo, elas devem ser eliminadas tanto do animal
(5% das pulgas) como do ambiente (95% das pulgas). A casa pode ser pulverizada
com produtos a base de Piretróide, e no animal podem ser usados produtos a base
de Fipronil (Frontline), Permetrina (Pulvex), Lufenuron (Program), sendo que este
último funciona como controle a longo prazo. A eficiência da hiposensibilização nos
casos de Dermatite Alérgica à Picada de Pulga pode ser tentado com qualquer dos
extratos de pulga integral, aplicando 0,5-1,0 ml (intradérmico) uma vez por semana
até a obtenção dos resultados (9-12 semanas). Quando se atingir o objetivo, devese administrar injeções de reforço quando necessário (a cada 1-3 meses).
Não há na literatura nacional um levantamento sobre a freqüência de
ocorrência das dermatites alérgicas dos caninos, mas seguramente a dermatite
alérgica à picada de pulgas é a mais freqüente em nosso meio e, é responsável por
mais que 50% dos casos, segundo o dermatologista Ronaldo Lucas.
FIGURA 11: LESÕES CAUSADAS PELA
DERMATITE ALÉRGICA À PICADA DE PULGAS
FONTE: www.amicinet.com.br
18
Se for constatada a presença de pulgas, estas devem ser eliminadas, com
produtos pulicidas de contato, ou seja, deve-se optar por produtos que eliminem as
pulgas antes mesmo que estas se alimentem. O Médico Veterinário deve lembrar de
controlar a população de pulgas em todos os animais que convivem juntos e no
ambiente e após um rigoroso controle das pulgas, os animais vão apresentar
melhora do quadro alérgico (LUCAS, 2006).
Consegue-se a prevenção através da continuação à longo prazo de um
programa de controle de pulgas. A prevenção funciona melhor através da
antecipação de aumentos na população de pulgas e do aumento do uso da terapia
parasiticida imediatamente interior ao início das condições ambientais que
favorecem esses aumentos. Quando os animais domésticos são primariamente
internos e não erram livremente, prefere-se o controle ambiental como o principal
método de controle de pulgas. Os animais externos / errantes exigem tanto uma
terapia dos animais domésticos como uma terapia ambiental, quando o clima tende
à atividade das pulgas (BICHARD et al, 1998).
RELATO DE CASO:
NOME: Joca
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Schnauzer Miniatura
SEXO: Macho
IDADE: 2 anos
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 9, 200 Kg
HISTÓRICO: Peso anterior 9 Kg. Paciente com lesão com pápulas em
colarete no abdômen, pescoço e dorso. Pústulas intactas na região lombar,
19
escamação e muito prurido. Dermatite interdigital, principalmente em membro
anterior direito. Tratamento com Cefalexina 270 mg/cápsula - 15 cápsulas SID por
15 dias. Prednisona 5 mg – 1 comprimido SID por 10 dias com redução gradual do
medicamento.
ANAMNESE: Peso de 9,3 Kg. O paciente estava com todas as vacinas em
dia. Há dois meses foi aplicado o anti-pulgas, o processo se iniciou há mais ou
menos dois meses e há duas semanas a intensidade do prurido aumentou. A
proprietária relata que o prurido aumenta em dias mais quentes. O paciente toma
banhos mensais e tem mais dois contactantes assintomáticos na residência.
EXAME FÍSICO: Temperatura de 38,2º C, mucosas normocoradas, hidratação
normal, Tempo de preenchimento Capilar (TPC) de dois segundos. Paciente com
melhora acentuada na dermatite, com menos regiões de alopecia, menos prurido,
com diminuição no número de pápulas em colarete pelo corpo. Ainda presente
algumas pústulas secas em região abdominal, pele um pouco ressecada.
Pododermatite interdigital com melhora, mas ainda presente. Com pulgas e fezes de
pulgas ainda presentes.
DIAGNÓSTICO: Dermatite alérgica à picada de Pulgas, realizado aravés da
anamnese e exame físico.
TRATAMENTO: Continuar o tratamento com a Cefalexina 270 mg/ cápsula 15 cápsulas SID por 15 dias. Prednisona 5 mg – ½ comprimido SID por 10 dias com
redução gradual da medicação.
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: O tratamento está sendo eficaz.
Deveria ser aplicado novamente o anti-pulgas e a sua reaplicação deveria ser
feita mensalmente, já que o animal já possui uma alergia à pulga. O exame físico
20
deveria ter sido mais completo, sendo medido a freqüência cardíaca e a freqüência
respiratória, por exemplo.
Todo medicamento dermatológico deve ser administrado por no mínimo 2
vezes por dia e 21 dias no total, o mais indicado seria de 30 dias. Porque é esse o
tempo que a pele demora para sofrer suas mudanças e vir a se recuperar, antes
desse prazo pode vir a ser melhorado mas à recidiva.
4.2 DERMATOLOGIA
4.2.1 Sarna Demodécica/ Demodicose
Revisão de Literatura:
A Sarna Demodécica é também conhecida como demodicose, sarna folicular
ou sarna vermelha (SCOTT et al, 1996). A demodicose canina é uma enfermidade
dermatológica parasitária que ocorre devido à proliferação excessiva de ácaro
Demodex canis, um habitante normal da pele do cão, que se encontra em pouca
quantidade nos folículos pilosos, glândulas sebáceas, sudoríparas e apócrinas
(SOUZA et al, 2001).
O ácaro demodex canis (FIGURA 12) é parte da fauna normal da pele canina
e está presente em pequenos números na maioria dos cães saudáveis (LEYDIG,
1859). Outro ácaro com características morfológicas diferentes foi identificado em
alguns cães com demodicose generalizada. Este ácaro pode ser um mutante do
Demodex canis ou uma segunda espécie de ácaro que ainda não foi identificada
(SCOTT et al, 1996). A transmissão do ácaro ocorre da cadela para os neonatos
lactentes por contato direto durante os dois ou três primeiros dias de vida neonatal
(SCOTT et al, 1996).
21
Geralmente são identificados dois tipos de demodicose: localizada e
generalizada (SOUZA et al, 2001). E a forma mais rara a pododermatite demodécica
crônica (pododemodicose) confinada somente às patas do animal (SCOTT et al,
1996).
É muito comum ver filhotes em fase de amamentação serem infectados por
este parasita durante os primeiros dias de vida. Os parasitas podem ser passados
da mãe para os filhotes porque estes têm sistemas imunológicos fracos e pouco
desenvolvidos que permitem a proliferação dos parasitas, causando perdas
localizadas de pêlo, vermelhidão e descamação. À medida, entretanto, em que os
filhotes crescem e seu sistema imunológico se fortalece, tornam-se geralmente
capazes de combater a doença por si mesmos, com pouca ou nenhuma intervenção
médica. É possível que cães mais idosos - a partir de quatro anos - desenvolvam
demodicose, mas a doença é muito mais grave nestes casos. A infestação pode
ficar restrita a algumas áreas ou se generalizar, com parasitas por todo o corpo
(BERSTEIN, 2004).
A pele dos cães com demodicose é ecologicamente favorável à reprodução e
crescimento de ácaros demodécicos. Eles lançam mão desta oportunidade para
colonizar os folículos pilosos e raramente nas glândulas sebáceas, onde subsiste
alimentando-se de células, sebo e debris epidérmicos. O ácaro habitante parece
habitar apenas a ceratina superficial e não os folículos pilosos (SCOTT et al, 1996).
O curso e prognóstico dos dois tipos são amplamente diferentes. A
demodicose localizada ocorre como uma a diversas áreas de alopecia, pequenas,
eritematosas, circunscritas, escamosas, pruriginosas, não pruriginosas, mais
comumente na face e nas pernas dianteiras. O curso é benigno e a maioria dos
casos resolve-se espontaneamente (BERSTEIN, 2004).
22
FIGURA 12: DEMODEX CANIS
FONTE: www.icb.usp.br
A demodicose generalizada é a forma mais grave da doença, e se apresenta
como uma dermatite crônica com liquenificação, descamação, formação de crostas,
hiperpigmentação, piodermatite severa e alopecia, cobrindo grandes áreas do corpo,
o estabelecimento dessa patologia é rara em adultos (SOUZA et al, 2001).
Na demodicose localizada, uma área de pele desenvolve eritrema e alopecia
parcial. O prurido pode estar presente e a área pode estar recoberta de caspas
prateadas (FIGURA 13). Podem estar presentes de uma a diversas manchas
escamosas. O local mais comum é a face, especialmente a área periocular e as
comissuras bucais. A segunda em ordem de ocorrência são a pernas dianteiras.
Mais raramente, uma ou mais manchas são vistas no tronco ou nas patas traseiras.
A maioria dos casos ocorre de três a seis meses de idade e curam-se
espontaneamente sem tratamento. É raro que a demodicose localizada em um cão
progrida para demodicose generalizada (SCOTT et al, 1996).
Na demodicose generalizada, apesar de a demodicose localizada ser uma
doença clínica média, a demodicose localizada é uma das doenças de pele mais
graves; pode terminar de modo fatal. A doença pode disseminar-se desde o
estabelecimento, mas geralmente começa com múltiplas áreas mal circunscritas da
23
doença, que piora mais do que melhora com o tempo. Numerosas lesões aparecem
na cabeça, pernas e tronco. Cada lesão torna-se maior, e algumas covalescem para
formar manchas (SCOTT et al, 1996).
A pododemodicose pode estar presente nas bases ungueais dos cães com
lesões generalizadas. A história do caso revela se o cão alguma vez teve
demodicose generalizada que se curou, exceto pelas lesões podais, ou se as patas
eram apenas a única parte do corpo acometida. As lesões digitais e interdigitais são
especialmente suscetíveis a piodermites secundárias. Em alguns animais, a
pododemodicose pode ser crônica e extremamamente resistente ao tratamento. A
dor e o edema são especialmente aflitivos para cães grandes como os
Dinamarqueses, Newfoundlands, São Bernardos e Sheepdogs ingleses (SCOTT et
al, 1996).
A pododemodicose em um cão pode progredir para os seguintes estágios,
como demodicose razoávelmente localizada, demodicose generalizada, demodicose
piogênica generalizada e pododemodicose piogênica crônica. Raramente, os cães
podem apresentar-se apenas com otite demodécica externa (SCOTT et al, 1996).
Os quatro estágios do Demodex canis podem ser demonstrados nos
raspados de pele. Os ovos fusiformes eclodem em larvas pequenas e com seis
patas, que mudam para ninfas com oito patas e, em seguida, para adultos de oito
patas. Os ácaros podem ser encontrados nos linfonodos, na parede intestinal, no
baço, no fígado, no rim, na bexiga, no pulmão, na tireóide, sangue, urina e fezes.
Entretanto, os ácaros encontrados nesses locais extracutâneos estão geralmente
mortos degenerados, e apresentam a drenagem simples dessas áreas pelo sangue
ou pela linfa (SCOTT et al, 1996).
24
No diagnóstico, raspados de pele devem ser propriamente efetuados e
interpretados. A pele acometida deve ser pinçada firmemente para colocar fora os
ácaros dos folículos pilosos e os raspados cutâneos devem ser profundos e
extensos. O diagnóstico é feito ou por demonstração dos grandes números de
ácaros adultos ou pelo achado de uma relação aumentada de formas imaturas
(ovos, larvas, ninfas) em relação aos adultos. As amostras de biópsia cutânea de
cães com demodicose localizada ou generalizada demonstram os folículos contendo
ácaros e debris ceratinosos e perifoliculite inflamatória, foliculite ou furunculose
supurativa (SCOTT et al, 1996). No diagnóstico, também pode ser feitos swabs e
curetas auriculares para avaliação de ácaros (BICHARD et al, 1998).
O agente terapêutico ideal para tratamento da demodicose canina e felina
deve ser seguro, altamente efetivo, fácil de administrar, com um preço razoável e
aprovado pela Food and Drug Administration dos Estados Unidos (BICHARD et al,
1998). O tratamento da demodicose generalizada é considerado difícil, pois, nenhum
apresenta uma efetividade de 100%, a maioria obtém cura em 80% dos casos, ainda
que alguns apresentam recidiva. Para isso, são recomendados banhos de amitraz
na diluição de 0,4% semanalmente até obtenção de raspados negativos, sendo que
a taxa de êxito varia entre 75 e 80% (SOUZA et al, 2001). Em casos mais difíceis
pode-se aplicar uma terapia mais agressiva que consiste em banhos diários com
solução de 1.250 ppm de amitraz. Como alternativa a tratamentos resistentes a
amitraz (para o tratamento das principais sarnas dos gêneros: Notoedes, Otodectes
e Psoroptes; Demodex canis, Sarcoptes scabiei e auxiliar no tratamento dos
carrapatos Riphicephalus sanguineus, os piolhos Linognatus setosus e Trichodectes
canis e as pulgas Ctenocephalides canis e se utilizam invermectinas ou
milbemicinas). Não se deve esquecer que algumas raças, como os Collies, não
25
devem receber invermectina devido a possibilidade de intoxicação. A duração do
tratamento depende da forma clínica da doença (SOUZA et al, 2001).
FIGURA 13: CÃO COM DEMODICOSE (PLACAS PRATEADAS)
FONTE: www.inpa.com.br
Segundo a literatura, a ivermectina está sendo usada em pequenos animais
no tratamento da sarna demodécica na dose de 0,4 a 0,6 mg/kg diária ou
semanalmente, com considerável margem de segurança, porém não há estudos que
relatem os valores observados no hemograma ou nas enzimas hepáticas e renais
para verificar a presença de alterações (SOUZA et al, 2001).
A melhor medida de prevenção é manter os animais saudáveis. Visitas
regulares ao médico veterinário assegurarão que o cão esteja em boas condições
gerais e que não contraia doenças que possam enfraquecer seu sistema
imunológico. A administração regular de vermífugos e a vacinação também são
importantes. Consulte um médico veterinário antes de cruzar cães afetados pela
demodicose (BERSTEIN, 2004). Aconselha-se que todos os proprietários de cães
com demodicose generalizada a castrá-los. Isso impede que os estresses
associados ao acasalamento e à transmissão de uma característica hereditária. Um
26
ponto-chave para a prevenção da demodicose nos animais de estimação é a
identificação e a eliminação de todos os fatores predisponentes potenciais
(BICHARD et al, 1998).
RELATO DE CASO:
NOME: Pitty
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Pit Bull
SEXO: Fêmea
IDADE: 1 ano
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 20 Kg
HISTÓRICO: Na primeira consulta a paciente apresentava alopecia
generalizada e muito prurido secundário a demodicose. O tratamento foi feito com
48 gotas de advocate, 9 mg de Ivermectina SID por 30 dias. E a administração de
Moxidectina 0,2% na dose de 4 mg, via oral.
A paciente voltou à clínica
mensalmente, sendo que o tratamento foi continuado por até três meses depois da
primeira consulta.
ANAMNESE: A proprietária relata que o prurido diminuiu, que a paciente está
mais alegre, brinca mais com as crianças, que as roupas de cama da paciente estão
sendo lavados semanalmente e que ela está tomando banhos semanais.
EXAME FÍSICO: Retorno para avaliação. A paciente está bem melhor, a pele
está mais hidratada, diminuíram as áreas de alopecia pelo corpo, o prurido está
quase cessado, o animal não se coça mais durante a consulta, os pêlos que
nasceram estão sadios. Animal com temperatura normal, freqüência cardíaca e
27
respiratória sem alterações, linfonodos normais, mas ainda possui algumas
pequenas áreas ainda afetadas.
DIAGNÓSTICO: Demodicose canina generalizada. Diagnóstico com base nos
sinais clínicos, e resultado positivo para o raspado cutâneo para o Ácaro Demodex.
TRATAMENTO:
Fazer
banhos
semanais
com
shampoo
Hexadene
(Clorexidine 3%), troca da coleira Preventic (coleira à base de amitraz) a cada três
meses e Aminomix (Suplementação de 46 tipos de aminoácidos, vitaminas e
minerais) por três meses.
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: O tratamento mesmo sendo eficaz como está
sendo, deveria ter algo a mais como a administração da Ivermectina via subcutânea, na dose de 0,4 a 0,6 mg/kg semanalmente e o raspado de pele para ver se
tem ácaros deveria ser feito semanalmente para ser vista como anda a regressão da
doença e para mudar a medicação se for necessário.
4.3 REPRODUÇÃO ANIMAL
4.3.1 Prolapso Vaginal
Revisão de Literatura:
O prolapso da vagina através da vulva ocorre em todas as espécies
domésticas, sendo mais freqüente em vacas e ovelhas (NASCIMENTO et al, 2003).
O prolapso vaginal é menos comum que o edema vaginal em cadelas; pode ser
parcial ou completo (SLATTER, 1998).
Na cadela o prolapso vaginal representa uma resposta do tecido vaginal e
vestibular ao aumento da concentração de estrógenos durante o proestro e estro,
resultando na protrusão do tecido vaginal edematoso através do lúme vaginal e,
28
frequentemente, através da vulva. provocam também a multiplicação das camadas
de células epiteliais da vagina e o relaxamento dos ligamentos, facilitando a
exteriorização da mucosa vaginal.
Estas doenças são vistas principalmente em
animais jovens, mais comum em raças braquicefálicas como o boxer e o bulldog,
quase sempre por ocasião do primeiro estro. Os sinais clínicos são localizados e
variam de acordo com a porção da mucosa exteriorizada, podendo desaparecer
espontaneamente no final da fase de estimulação estrogênica. Quando a afecção é
de grau mais severo, ocorrem complicações como congestão passiva, traumatismos,
necrose e perda de tecido, hiperemia, edema e queratinização (GABALDI et al,
1998). Uma ou mais pregas de tecidos edematoso, anterior ao meato urinário,
projetam-se dentro da luz uterina. Muito ocasionalmente, toda a circunferência da
vagina é afetada, dando origem a uma grande massa com aspecto de massa de
superfície brilhosa, a resposta fisiológica normal da mucosa vaginal ao estrógeno é
exagerada em algumas fêmeas, sendo que as dobras vaginais tornam-se muito
edematosas e hiperplásicas, salientando-se entre os lábios vulvares. A massa
proeminente deve ser cuidadosamente examinada para determinar sua origem,
tamanho na base, localização da luz vaginal e o meato urinário (GABALDI et al,
1998). Estas dobras anormais aparecem cranialmente ao orifício uretral, na face
ventral da vagina. Em raras ocasiões, o lúmen completo da vagina está envolvido,
exceto a porção imediatamente cranial à uretra, enquanto o restante da vagina e
vestíbulo permanecem normais (GABALDI et al, 1998).
Essa alteração pode impedir o coito e em geral regride espontâneamente com
o início da fase luteinica, podendo recorrer nos estros subseqüentes (NASCIMENTO
et al, 2003). De um modo geral, o problema é descoberto quando as cadelas entram
29
em um de seus primeiros três cios porque os problemas são mais severos nesta
época (GABALDI et al, 1998).
O prolapso vaginal ocorre principalmente nos casos de constipação,
separação forçada durante o coito e tamanho discrepante entre o macho e a fêmea
durante a cobertura. Pode ocorrer também durante o período de estro, quando a
produção de estrógeno está aumentada ou em casos de hiperestrogenismo (cistos
ovarianos, por exemplo). As causas dessa condição são complexas e o relaxamento
de origem hereditária do tecido perivaginal é considerado um fator predisponente
(GABALDI et al, 1998).
O diagnóstico clínico é baseado nos sintomas, idade, fase do ciclo estral, e
confirmado pelo exame clínico e citologia vaginal. Deve ser feito diagnóstico
diferencial de neoplasias (pólipos, fibromas, leiomiomas). No caso de neoplasias
vaginais, não há relação entre o aparecimento dos sintomas e o estro, sendo as
lesões também diferentes, de consistência mais firme. O tumor venéreo
transmissível tem características friáveis e pendulares (GABALDI et al, 1998).
O prognóstico do prolapso vaginal é mais grave devido às complicações
locais. A atividade reprodutiva fica comprometida pela impossibilidade de realização
de cobertura. Nos casos de edemas mais leves, recomenda-se o uso de
inseminação artificial (GABALDI et al, 1998).
O tratamento medicamentoso para os casos de hiperplasia sem regressão
espontânea baseia-se na lavagem e desinfecção do local, empregando soluções
fisiológicas e pomadas lubrificantes. A terapia específica para a hiperplasia vaginal
direciona-se para a eliminação da estimulação estrogênica. Pode-se adotar como
tratamento hormonal o Hormônio Liberador de Gonadotrofinas, a gonadotrofina
Coriônica Humana, o Acetato de Megesterol ou o Mibolerone (GABALDI et al, 1998).
30
Hormônios como o Acetato de Megesterol reduzem o edema, mas são contraindicados quando se deseja acasalar a fêmea neste cio, pois impedem a ovulação,
além de induzirem a hiperplasia cística endometrial. A dose recomendada é de 2,2
mg/Kg, uma vez ao dia, por 5 a 7 dias (GABALDI et al, 1998). Após a cura
espontânea ou tratamento clínico, podem ser observadas recidivas nos cios
subseqüentes. Apesar de recomendado pela literatura pertinente, o tratamento
hormonal não deve ser realizado de rotina, em vista, principalmente, dos efeitos
colaterais graves apresentados (GABALDI et al, 1998).
O tratamento cirúrgico é baseado na vaginoplastia inferior, sendo preconizado
nos casos de insucesso no tratamento medicamentoso ou nos casos de prolapso
vaginal. A ressecção não impedirá a recidiva da hiperplasia vaginal durante os ciclos
subseqüentes em algumas cadelas. O primeiro passo consiste em realizar uma
episiotomia e referendar a uretra com uma sonda. A técnica difere de acordo com o
grau de edema vaginal. O tecido hiperplasiado é seccionado em um plano
horizontal, a incisão deve ser o mais próxima possível da base da porção
prolapsada, de tal maneira que se obtenha uma ferida vaginal circular. A hemostasia
deve ser cuidadosamente realizada. As suturas deverão ser realizadas a partir de
quatro pontos de tração dispostos 90º uns dos outros; os demais pontos são fixados
entre os primeiros. A sutura deve ser com fio categute em pontos separados. Ao
término, a episiotomia deve ser fechada (GABALDI et al, 1998).
O edema do tecido pode ser reduzido por compressão manual, ou pela de
Dextrose a 50% à superfície mucosa. Mais tarde a solução é eliminada por meio de
irrigação para que seja minimizada a irritação da mucosa (SLATTER, 1998).
Uma cadela com prolapso vaginal durante a fase avançada de sua gestação
provavelmente terá dificuldades na hora do parto. Portanto, é preferível que a
31
ressecção cirúrgica do tecido que sofreu prolapso seja levada a efeito no momento
mesmo de sua ocorrência ao invés de esperar até que o parto seja evidente
(SLATTER, 1998).
Com cuidados pós-operatórios, deve se utilizar um anti-séptico ou antibiótico
de eliminação urinária por 5 dias. Além disso, deve-se evitar lambedura por meio de
um colar elisabetano. Não são indicados quaisquer curativos na ferida cirúrgica,
desaconselhando-se a reprodução se houver estenose posterior da vagina
(GABALDI et al, 1998).
A prevenção permanente é feita pela ovariosalpingohisterectomia, retirandose a fêmea, definitivamente, da reprodução. A redução da hiperplasia vaginal, após
a cirurgia, é observada dentro de 7 a 10 dias (GABALDI et al, 1998).
RELATO DE CASO:
NOME: Donna 2
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Fila Brasileiro
SEXO: Fêmea
IDADE: 5 meses
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 38 Kg
ANAMNESE:
Paciente
com
vacinação,
vermifugação
e
anti-pulgas
atualizados. A proprietária relatou que o cio começou há 5 dias com muito
sangramento e 2 (dois) dias depois a vagina prolapsou (FIGURA 14).
32
FIGURA 14: O PROLAPSO VAGINAL, APÓS QUATRO DIAS DO APARECIMENTO
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
EXAME FÍSICO: A paciente se apresenta bem, com temperatura de 38,6º C,
freqüência cardíaca e respiratória normais, mucosas normocoradas, tempo de
preenchimento capilar (TPC) normal, a massa prolapsada é de extensão e coloração
normal (FIGURA 15), sem sinal de necrose ou contaminação.
DIAGNÓSTICO: Através da anamnese, do exame clínico e físico e da
observação do quadro.
FIGURA 15: DONNA 2, FILA BRASILEIRO COM PROLAPSO VAGINAL
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
33
TRATAMENTO: Limpeza local diária com solução fisiológica resfriada, 3
vezes ao dia. Não foi preciso a intervenção cirúrgica, pois o prolapso foi reduzido
gradualmente.
CONCLUSÃO / DISCUSSÃO: O tratamento instituído foi a lavagem e
desinfecção local com solução fisiológica e não foi necessário intervir com
tratamentos medicamentosos, pois houve regressão do prolapso espontâneamente.
Caso fosse preciso de tratamento medicamentoso ou cirúrgico, possivelmente fosse
tardio o diagnóstico.
4.4 CARDIOLOGIA
4.4.1 Síndrome do Seio Enfermo/ Síndrome do Seio Doente.
Revisão de Literatura:
O coração é um órgão muscular composto por quatro câmaras projetadas
para trabalhar de modo eficaz, confiável e contínuo durante toda a vida. As paredes
musculares de cada câmara contraem em uma seqüência precisa, impulsionando o
volume máximo de sangue com o menor consumo energético possível durante cada
batimento cardíaco (FIGURA 16). A contração das fibras musculares no coração é
controlada por uma descarga elétrica que flui através do coração de maneira
precisa, ao longo de vias distintas e em uma velocidade controlada. A descarga
rítmica que inicia cada batimento cardíaco origina-se no marcapasso natural do
coração (nódulo sinoatrial), situado na parede do átrio direito. A freqüência da
descarga é influenciada pelos impulsos nervosos e pelos níveis de hormônios que
circulam na corrente sangüínea (ALTMAN et al, 2004).
34
A
parte
do
sistema
nervoso
que
regula
a
freqüência
cardíaca
automaticamente é o sistema nervoso autônomo, constituído pelos sistemas
nervosos simpático e parassimpático. O sistema nervoso simpático aumenta a
freqüência cardíaca, enquanto o sistema nervoso parassimpático a diminui. O
sistema simpático inerva o coração com uma rede de nervos, o plexo simpático. O
sistema parassimpático inerva o coração através de um único nervo, o nervo vago
(ALTMAN et al, 2004). A freqüência cardíaca também é influenciada pelos
hormônios circulantes do sistema simpático – a epinefrina (adrenalina) e a
norepinefrina (noradrenalina), os quais são responsáveis por sua aceleração. O
hormônio tireoidiano também influencia a freqüência cardíaca: quando em excesso,
a freqüência cardíaca torna-se muito elevada; quando há deficiência do mesmo, o
coração bate muito lentamente (ALTMAN et al, 2004).
A síndrome do seio enfermo caracteriza-se por bradicardia sinusal, bloqueio
sino atrial, parada sinusal internitente, taquiarritimias supraventriculares, ou alguma
combinação destes eventos. Também podem ser observadas arritimais ventriculares
(ETTINGER et al, 1997). É a síndrome da bradicardia - taquicardia, na qual ritmos
atriais acelerados, como a fibrilação ou o flutter atrial, alternam-se com longos
períodos de ritmos cardíacos lentos. Todos os tipos de síndrome do seio doente são
particularmente comuns em cães idosos (ALTMAN et al, 2004).
Causa episódios de fraqueza, e é caracterizada depressão do nodo sinusal,
incluindo bradicardia sinusal e parada sinusal prolongada (sinus arrest) e
geralmente, freqüências cardíacas baixas e persistentes A parada sinusal
prolongada é seguida por batimentos prematuros ventriculares e juncionais
demorados, e o ritmo alternando com arritmia sinusal, bradicardia sinusal e
prolongado sinus arrest. Em alguns cães, taquicardia paroxística atrial alterna com
35
períodos prolongados de inércia sinusal nodal e frequentemente inércia juncional
átrio-ventricular também. Caso a freqüência cardíaca seja muito baixa, o animal
pode apresentar desmaios e muitas vezes, o aumento das freqüências cardíacas e
palpitações (ALTMAN et al, 2004). Síncope, convulsões, e fraqueza episódica são
os sinais mais comumente encontrados (NELSON et al, 1992).
FIGURA 16: ESQUEMA DE FUNCIONAMENTO DO MIOCÁRDIO
FONTE: www.msd-brazil.com
É mais comumente observada em cadelas idosas da raça Schnauzer
miniatura, embora também seja detectada em Dachshunds, Pugs e cães mestiços. A
síndrome do seio enfermo é extremamente rara em gatos (NELSON et al, 1992).
36
Os cães acometidos apresentam episódios de bradicardia sinusal grave com
parada sinusal e/ou bloqueio sinoatrial. Podem coexistir anormalidades do sistema
de condução átrio ventricular, causando depressão da atividade de marcapassos
subsidiários e, assim, períodos prolongados de assistolia. Alguns desse pacientes
também tem taquiarritimias supraventriculares paroxísticas chamadas síndrome
bradicardia-taquicardia. Os complexos premeturos podem ser seguidos por longas
pausas antes do retorno da atividade do nodo sinusal, indicando tempo de
recuperação
prolongado
do
nodo
sinusal
(NELSON
et
al,
1992).
As anormalidade eletrocardiográficas são freqüentes pronunciadas em cães
com a síndrome do seio enfermo de longo tempo. Contudo, alguns cães têm um ou
mais Ecocradiograma normal em repouso. A observação visual prolongada do
ecocardiograma ou um ecocardiograma de 24 horas são úteis para estabelecer um
diagnóstico definitivo (NELSON et al, 1992). A doença de válvula mitral e doença
pulmonar crônica frequentemente coexistem. A falência congestiva devido à
insuficiência de válvula mitral eventualmente complica o manejo desta síndrome
(ALTMAN et al, 2004).
O tratamento pode ser feito com a administração de Atenolol, 50 mg em
comprimido, é uma monoterapia recomendada no tratamento inicial da hipertensão
níveis I e II; entretanto, geralmente a hipertensão nível II requer a combinação de
dois fármacos. Os diuréticos e os beta-bloqueadores são preferidos como fármacos
inciais porque têm demonstrado reduzir a morbidade cardiovascular e mortalidade.
Os beta-bloqueadores podem ser agentes iniciais preferidos nos pacientes com
angina, cardiomiopatia hipertrófica, circulação hiperdinâmica, insuficiência cardíaca,
diabete, pós-infarto do miocárdio, hipertensão associada com a ciclosporina e dores
de cabeça vasculares, por exemplo. Por outro lado, são relativamente ou
37
absolutamente contra–indicados em pacientes com bradicardia, bloqueio cardíaco,
doença vascular periférica, síndrome do seio enfermo ou asma/doença pulmonar
obstrutiva crônica (MARAGON et al, 2002). Geralmente, os indivíduos humanos que
apresentam sintomas da síndrome são submetidos a um implante de marcapasso
artificial, o qual é utilizado para aumentar a freqüência cardíaca e não para diminuíla (ALTMAN et al, 2004). A implantação de marcapasso permanente traz as maiores
esperanças de tratamento bem sucedido (ETTINGER et al, 1997). Para os
indivíduos que ocasionalmente apresentam freqüência cardíaca elevada, o
tratamento medicamentoso também pode ser necessário. Por essa razão, no ser
humano a melhor terapia é a implantação de um marcapasso juntamente com a
administração de uma droga que diminui a freqüência cardíaca um betabloqueador
ou o verapamil, que também pode ser usado na medicina veterinária (ALTMAN et al,
2004).
RELATO DE CASO:
NOME: Minnie
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Schnauzer Miniatura
SEXO: Fêmea
IDADE: 9 anos
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 5,900 Kg
HISTÓRICO: Paciente apresentou reações dermatológicas alérgicas, foi
prescrito ½ enrofloxacina ao dia por 20 dias. A paciente apresentou também um
processo inflamatório por contaminação bacteriana em todas as bases ungueais,
feita tricotomia e antissepsia das bases ungueais com PVPI – TID; administrado
38
meloxican 0,5 mg/kg SC – SID; ácido clavulônico 0,8 ml SC – SID; administração
de crema 6A – BID até cicatrizar, com a utilização do colar Elizabetano. A paciente
também apresenta “chiados”, que são indicadores típicos das raças miniaturas, de
uma patologia chamada colapso de traquéia.
ANAMNESE: A proprietária relata que nos dias de calor a paciente apresenta
uma dificuldade respiratória observada por aumento dos “chiados”.
EXAME FÍSICO: Temperatura de 36,6º C, na auscultação foi observados
chiados como se arranhasse a traquéia, além de uma bradicardia seguida de
taquicardia, paciente apresentando leve desidratação, continua apresentando
reações dermatológicas alérgicas com diminuição na inflamação por contaminação
bacteriana em todas as bases ungueais.
EXAMES
COMPLEMENTARES:
Raio-X
Eletrocardiografia, Ecocardiografia e Doppler.
do
tórax,
Eletrocardiograma/
E Exames Laboratoriais de
Hemograma Completo Automatizado e Perfil Renal (Uréia e Creatinina).
No Raio X, do tórax com dupla exposição, onde o resultado indicava um
discreto aumento no padrão bronquial dos campos pulmonares; a silhueta cardíaca
com discreto aumento generalizado de câmaras mais evidente em câmaras direitas;
observando o afastamento dos últimos arcos costais (esforço respiratório); traquéia
com lúmem preservado e porção cervical e torácica; e deslocamento dorsal com
abaulamento em região cardíaca (aumento de átrio ou massa em mediastino).
No Eletrocardiograma/ Eletrocardiografia: em ritmo juncional, o resultado
exibe uma parada de nodo sinusal intermitente; com evolução para ritmo juncional
também intermitente.
No exame de Ecocardiografia, o resultado do laudo foi de 50 bpm para a
freqüência cardíaca; ritmo de bradicardia sinusal. No ventrículo esquerdo o septo
39
tem movimento normal; a parede tem movimento normal; a cavidade tem tamanho
normal de 2, 73 cm; a espessura é normal de 0,6 cm. No átrio valvar – as
ventriculares da mitral estão degeneradas; a tricúspide está normal; o átrio esquerdo
está normal com 1,4 cm; a aorta está normal com 1,4 cm; a parede do ventrículo
direito está normal com 0,5 cm; o átrio direito está normal e o pericárdio está normal.
No Doppler, mostrou regurgitação mitral de grau leve; fluxos aórticos e
pulmonares normais.
O resulta do hemograma foi: Eritrócitos: 6,02 (6 A 8); Hematócritos: 42 (40 a
53); Hemoglobina: 13,9 (14 a 53); VCM: 79,8 (65 a 78); HCM: 23,1 (21 a 26); CHCM:
33,1 (31 a 35); Leucócitos: 4.280 (8.000 a 16.000); Bastonetes: 3% (0 a 1%);
Segmentados: 72% (55 a 80%); Linfócitos: 25 (13 a 40%); Plaquetas: 478.000
(200.000 a 500.000), Uréia: 50 (10 – 56), Creatinina: 0,81 (0,5 – 1,6).
DIAGNÓSTICO: Raio-X: A alteração pulmonar pode ser compatível com a
idade do animal, a imagem em silhueta cardíaca pode sugerir doença cardíaca, o
deslocamento da imagem traqueal pode estar relacionada com alteração cardíaca.
Eletrocardiograma/ Eletrocardiografia: freqüência cardíaca de 49 bpm, Síndrome do
Seio Enfermo. No Doppler, o diagnóstico foi de endocardiose valvar e insuficiência
mitral de grau leve. Hemograma com observação de leucopenia e perfil renal
normal.
TRATAMENTO: Xarope de Fluconazol (antifúngico e anti-infeccioso) 20 ml –
1 ml por semana, administrado em um dia da semana, por durante 20 dias.
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: É um caso muito raro na clínica veterinária
de pequenos animais em geral, como é um caso raro têm poucos relatos e artigos,
então ainda é de difícil discussão sobre tal caso.
40
O tratamento administrado foi incompleto, pois como o animal está debilitado
e apresentando fraqueza, somente um antifúngico não seria o suficiente para que o
animal se mantenha um pouco mais resistente e que auxilie na melhora do estado
geral do paciente. Nesse caso, indicaria além do Fluconazol, o Glicopan
(suplemento vitamínico e de aminoácidos) e a administração de Cloridrato de
Verapamil (antiarrítmico e vasodilatador) e de Digoxina (antiarrítmico), pois a
síndrome do seio enfermo é caracterizada por arritmias cardíacas.
4.5 DERMATOLOGIA
4.5.1 Hipersensibilidade Alimentar
Revisão de Literatura:
A Hipersensibilidade Alimentar, é conhecida também como alergia alimentar e
intolerância alimentar (SCOTT et al, 1996). É um distúrbio cutâneo não-sazonal,
pruriginoso de cães que está associado à ingestão de uma substância encontrada
na dieta do cão.
Presumivelmente, é uma reação de hipersensibilidade a um
ingrediente antigênico. Este pode não ser o caso, entretanto, e a intolerância
alimentar também pode estar ocorrendo e ser incorretamente chamada de
intolerância alimentar (SCOTT et al, 1996).
Há muito a dieta foi reconhecida como uma causa de reações tipo
hipersensibilidade em cães, gatos e seres humanos. Apesar do patomecanismo da
hipersensibilidade alimentar ser pouco esclarecido, reações de hipersensibilidade do
tipo I são também documentadas e é o tipo de reação mais comum em humanos,
apesar de rações do tipo III e IV serem suspeitas. Reações imediatas e tardias a
alimentos também têm sido vistas em cães e gatos (SCOTT et al, 1996). Não se
41
determinaram ainda os mecanismos exatos da hipersensibilidade alimentar nos cães
e nos gatos (BICHARD et al, 1998).
Alergia ou hipersensibilidade alimentar é um tipo de reação ao alimento com
base imunológica, cuja patogenia é pouco conhecida. Um pequeno número de cães
e gatos desenvolve sinais clínicos devido a essa reação imunológica, desencadeada
pela ingestão de antígenos específicos da dieta, geralmente proteínas ou
glicoproteínas (NASCENTE et al, 2006). Mais comumente, o alérgeno é uma
glicoproteína é presente no alimento e esta glicoproteína pode tornar-se identificável
apenas após a digestão ou o calor e preparo do alimento (SCOTT et al, 1996).
A Hipersensibilidade Alimentar está associada a prurido de intensidade
variável, generalizado ou similar àquele encontrado na atopia e na hipersensibilidade
à picada de pulga (NASCENTE et al, 2006).
Os sinais clínicos não são sazonais e apresentam pouca resposta à terapia
com glicocorticóides. A idade dos cães que apresentam a enfermidade varia de seis
meses a 12 anos (NASCENTE et al, 2006). Em 62% dos cães com prurido não
sazonal, a responsável é a hipersensibilidade alimentar, sendo uma alergia à
determinadas substâncias ingeridas pelo animal (na maior parte das vezes uma
glicoproteína). O diagnóstico mais preciso é realizado através da chamada dieta de
eliminação, e que deve ser feita após descartar-se a existência de dermatite alérgica
à picada de pulga. Essa dieta deve ser feita durante 6 semanas (tendo como
alimentos o arroz integral, carne de carneiro ou coelho, óleo de milho e água
mineral) com posterior re-exposição provocativa (voltar a alimentação original para
verificar se voltam os sintomas (NASCENTE et al, 2006).
Não há nenhuma predileção por idade ou sexo, foi comprovada a
hipersensibilidade alimentar canina. Ainda que não exista predileção por idade é
42
importante notar que muitos casos ocorrem em cães jovens e podem aumentar o
índice de suspeita sobre quais das doenças atópicas ocorrem com prurido em cães
abaixo de seis meses de idade. A maioria dos pesquisadores não encontrou
predileção racial. Outros pesquisadores, todavia, encontraram que o Cocker e o
Springer Spaniels, os labradores Retrievers, Collies, Schnauzers Miniatura, Shar Pei
chineses, West Highland White Terriers, Wheaton Terriers, Boxers, Dachshunds,
Dálmatas, Lhasa Apsos, Pastores Alemães e Golden Retrievers estavam sob risco
aumentado (SCOTT et al, 1996).
Estudos indicaram que a hipersensibilidade alimentar em cães e gatos
contasse por cerca de 5% de todas as doenças de todas as doenças de pele e 15%
de todas as dermatoses alérgicas. A hipersensibilidade alimentar é a terceira
hipersensibilidade cutânea mais comum em cães após a dermatite alérgica à picada
de pulgas e a atopia (SCOTT et al, 1996). Tais dermatites mostram seus sinais
clínicos em animais ainda jovens na hipersensibilidade alimentar, 30 a 50% dos
casos tem início antes dos 12 meses (CHAMUSCA, 2005).
Para um bom diagnóstico, devemos fazer uma anamnese completa, levandose em consideração fatores como distribuição das lesões, manejo do animal,
sazonalidade, contactantes e tratamentos anteriores (NASCENTE et al, 2006). A
comprovação de um mecanismo alérgico raramente é confirmada no cão (SCOTT et
al, 1996).
Estima-se que um por cento de todas as dermatopatias em cães seja
representado pelas hipersensibilidades alimentares e que 10% das dermatites
alérgicas sejam de etiologia alimentar (NASCENTE et al, 2006).
43
A hipersensibilidade alimentar se constitui na terceira dermatopatia alérgica
mais comum no cão, sendo precedida apenas pelas dermatite alérgica a picada de
pulgas e dermatite atópica (SCOTT et. al 1995).
O prognóstico da hipersensibilidade alimentar geralmente é bom. O
tratamento consiste em evitar os alimentos agressores ou usar agentes
antipruriginosos sistêmicos. As dietas hipoalergênicas são formuladas adicionandose alimentos simples à dieta. Tais dietas precisam ser balanceadas com
suplementos vitamínicos, minerais e de ácidos graxos. Cerca de 20% dos cães
hipersensíveis a alimentos, entretanto, não podem consumir qualquer dieta
comercial e devem ser mantidos com dieta caseira (SCOTT et al, 1996). Para o
manejo do animal com hipersensibilidade alimentar, pode-se manter a dieta testada
(após testar alimento por alimento, mantendo os que não provocaram reação) ou
recorrer à rações especializadas (NASCENTE et al, 2006). Quando as dietas
hipoalergênicas não estiverem disponíveis, os glicocorticóides sistêmicos e/ou antihistamínicos podem ser usados para suprimir os sinais cínicos, todavia, pode ser
difícil de controlar com estas drogas. Uma resposta completa aos glicocorticóides
sistêmicos é verificada apenas em 50% doas cães com hipersensibilidade a
alimentos (SCOTT et al, 1996).
Se o animal não puder tolerar uma ração comercial (FIGURA 17), use uma
dieta preparada em casa, que consista de uma fonte de proteínas e de carboidratos
suplementada com vitaminas, minerais e, no caso dos gatos, com taurina suficiente
(60 a 100 mg de taurina diariamente). A suplementação com meia colher de chá de
extrato de concha de marisco por dia, recomendada por alguns autores, não
constitui uma suplementação de taurina adequada (BICHARD et al, 1998).
44
FIGURA 17: MARCA DE RAÇÃO USADA NO MANEJO
DA HIPERSENSIBILIDADE ALIMENTAR.
FONTE: http://www.farmina.it/ink/farmina.asp.
Como adjuvantes no tratamento do prurido podemos recorrer ao uso de
ácidos
graxos
insaturados,
além
do
uso
de
shampoos
hidratantes
ou
condicionadores, já que evitam a perda de água da pele e seu ressecamento,
tornando-a mais saudável. Devido ao fato dos animais alérgicos possuírem pele
sensível, apenas produtos suaves devem ser usados. Por fim, para promover a
saúde, a pele e a pelagem devem ser tratados pois, caso o cuidado apropriado da
pele seja negligenciado, poderá resultar uma irritação cutânea, ou os resíduos
poderão afetar de modo adverso uma doença de pele já existente. Para o manejo de
animais saudáveis, deve-se realizar tosas rotineiras, que ajudam a diminuir a queda
de pêlos; e a escovação (15 a 30 minutos semanais), que retira a pelagem morta,
permitindo termorregulação mais apropriada e evita a irritação e infecção bacteriana
secundária. Para os banhos, um shampoo suave não medicamentoso, hidratante
e/ou hipoalergênico é o mais indicado (NASCENTE et al, 2006).
RELATO DE CASO:
NOME: Angel
ESPÉCIE: Canina
45
RAÇA: Lhasa Apso
SEXO: Fêmea
IDADE: 1 ano
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 8,1 Kg
HISTÓRICO: Há um mês a paciente chegou à clínica apresentando intenso
prurido na região torácica abdominal, com eritema nos coxins plantares, alopecia
periocular, dermatite interdigital e otite bilateral. Foi tratado com banhos uma vez por
semana com shampoo allercalm (é um shampoo à base de aveia e glicerina que
proporciona alívio do prurido de diversas causas e melhora a integridade da pele) e
depois passar humilac (é uma solução dermatológica hidratante para os pêlos e a
pele dos animais), por todo o corpo massageando-o, por 60 dias. A administração de
cefalexina (antibiótico beta lactâmico) 240 mg/ ml BID por 20 dias, mudar a ração
para uma hipoalergênica e a administração de um medicamento homeopático,
meticago ch3, 10 gotas SID por 60 dias.
ANAMNESE: Paciente com prurido há 45 dias, alimentava-se com ração Delly
Dog carne. A paciente era alimentada com petiscos variados durante o dia. De
acordo com a proprietária foram suspensos os petiscos e depois da ultima consulta
a ração Delly Dog foi substituída pela Cibau Fish and Rice indicada para animais
alérgicos.
A proprietária relata que não foi mudado nenhum produto de limpeza utilizado
na casa, que não houve nenhuma mudança de perfumes, roupas de cama da
paciente, a casa é toda de piso e a paciente vive dentro de casa e sai duas vezes
por dias para passear.
46
EXAME FÍSICO: Paciente com prurido intenso, alopecia periocular e
embolamento dos pêlos (FIGURA 18). Houve melhora nos eritemas plantares, na
otite bilateral e na dermatite interdigital. Paciente se alimenta com ração Cibau Fish
and Rice.
DIAGNÓSTICO: Hipersensibilidade alimentar. Diagnóstico realizado através
do histórico, da anamnese e do exame físico.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL: Atopia e dermatite alérgica à picada de
pulgas.
FIGURA 18: ANGEL, LHASA APSO COM HIPERSENSIBILIDADE ALIMENTAR.
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
TRATAMENTO: A administração de Cefalexina (antibiótico beta lactâmico) 25
mg BID por 30 dias e banhos semanais com clorexiderm (antibacteriano), lenços
umedecidos com clorexidine para as bases ungueais e 1ml ao dia de complexo
vitamínico aminomix (Suplemento à base de 46 tipos de aminoácidos, vitaminas e
minerais), por 60 dias.
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: O tratamento na troca de ração está eficaz, pois
a maioria dos pacientes com dermatites alérgicas quais forem elas, quando
alimentados com alimentos hipoalergênicos demonstram melhoras nos sinais da
47
alergia. Mas, antes de dar o diagnóstico de hipersensibilidade alimentar, deveria ter
sido feito exames de raspados cutâneos para verificar a possibilidade de ser outro
problema dermatológico e dentro da anamnese perguntar se a paciente tem crises
em certas épocas do ano como, exemplo a primavera, por causa do pólen das
flores.
4.6 OTOLOGIA
4.6.1 Otite Média Bacteriana
Revisão de Literatura:
A otite é o nome usado para designar um processo inflamatório dos ouvidos.
Otite externa é uma inflamação do tecido que reveste o canal auditivo externo e a
otite média é a inflamação do ouvido médio. A otite média muitas vezes é uma
conseqüência da otite externa mediante ruptura do tímpano (AMARAL et al, 2005).
Anatomicamente o ouvido (FIGURA 19) pode ser dividido em ouvido externo,
ouvido médio e ouvido interno, que estão interligados entre si. O ouvido externo
compreende o pavilhão auricular (orelha), o canal auditivo externo e o tímpano, que
separa o ouvido externo do médio. O ouvido médio é a câmara onde se situam três
ossículos (martelo, estribo e bigorna) interligados entre si e que servem como meio
de ligação para o ouvido interno. O ouvido interno é a parte mais especializada,
onde existem os chamados canais semicirculares, a cóclea e o nervo acústico, este
último ligando todo o conjunto diretamente ao cérebro (AMARAL et al, 2005).
Se esta parte interna for atingida, animal poderá apresentar alterações mais
graves como desequilíbrio ou labirintite (AMARAL et al, 2005).
48
Existem várias causas que podem ocasionar a otite, tais como, infecções
bacterianas e por leveduras, alergias, doenças de pele, distúrbios hormonais, corpos
estranhos, infestações por parasitas ou tumores.
As bactérias raramente são
causas primárias de otite externa, portanto um diagnóstico de "otite bacteriana" é
freqüentemente
incompleto.
Os
agentes
secundários
mais
freqüentemente
encontrados são Staphyloccocus intermedius e S. aureus, que podem ser isolados
de ouvidos de cães sadios, e os gram-negativos Pseudomonas spp, Proteus spp.,
Escherichia coli e Klebsiella spp (AMARAL et al, 2005). As infecções bacterianas
estão em geral associadas a corpos estranhos perfurantes, ou ocorrem como
seqüela de otite externa crônica, geralmente proliferativa ou grave (ETTINGER et al,
1997).
As leveduras e os fungos são causas incomuns de otite média e otite interna.
Malassezia canis, Aspergillus spp e a Cândida spp encontram-se entre os mais
freqüentes mencionados. Paecilomyces constitui uma causa rara (BICHARD et al,
1998).
A otite média é a inflamação da bula timpânica. Geralmente está associada à
exsudato, difícil de tratar com terapia tópica e frequentemente permanece como uma
fonte
de infecção e deixa que debris atinjam o conduto auditivo externo via
membrana timpânica rompida. Nos casos mais avançados, o autor encontrou
ceratina em forma de rolhas desenvolvendo-se dentro da cavidade timpânica. A
ceratina pode funcionar como reservatório de bactérias e fonte de inflamação
(SCOTT et al, 1996).
Admitiu-se que a membrana timpânica pudesse estender-se e aumentar
dentro da cavidade timpânica. Além disso, as membranas timpânicas curam-se
prontamente e, portanto a otite média pode estar presente com membrana timpânica
49
intacta. O tecido, inclusive as estruturas anexas, que se originam do conduto
auditivo externo, podem ser encontrados na cavidade do ouvido médio, mesmo
quando a membrana timpânica apareça intacta. A membrana timpânica quase
sempre se espessa em resposta à inflamação e pode desenvolver extensões
polipóides de tecido de granulação dentro da cavidade do ouvido médio, a qual, em
alguns casos, forma aderências com a mucosa do ouvido médio (SCOTT et al,
1996).
FIGURA 19: ANATOMIA DA ORELHA DE CÃES E GATOS
FONTE: www.veterinariaonline.com.br
A microanatomia do conuto auditivo de caninos e felinos foi estudada. A
inflamação crônica estimula o forramento cutâneo do conduto auditivo para sofrer
inúmeras mudanças, inclusive a hiperceratose e hiperplasia epidérmica, edema e
fibrose dérmicos, hiperplasia das glândulas apócrinas e dilatação (SCOTT et al,
1996).
50
A menor incidência em gatos pode ser parcialmente atribuível à posição ereta
da orelha e do conduto auditivo relativamente sem pêlos (SCOTT et al, 1996).
Os achados físicos indicativos de otite externa incluem eritrema, tumefação,
formação de caspas, crostas, alopecia, pêlos quebrados, timidez, corrimento
auricular (otorréia), mau cheiro e dor à palpação da cartilagem auricular. Alguns
animais tentam coçar a orelha com a pata traseira ipsilateral ou sacodem a cabeça
durante ou após a palpação do conduto. As lesões podem envolver a orelha e a pele
caudal à orelha na cabeça, na face lateral e ao redor do canal vertical. A sacudida
de cabeça pode ser vista tanto como otite externa como com a média (SCOTT et al,
1996).
A palpação do conduto auditivo externo e da bula timpânica podem fornecer
informação adicional. A espessura, firmeza e flexibilidade dos condutos vertical e
horizontal devem ser determinadas. Condutos mais espessos, mais firmes e flexíveis
estão associados a mudanças proliferativas e garantem um prognóstico mais
reservado. Dor e anormalidades palpáveis da bula timpânica implicam a presença de
otite média (SCOTT et al, 1996).
O exame otoscópico é usado para detectar corpos estranhos, para determinar
se há otite média e para avaliar que tipos de lesões, exsudatos e mudanças
patológicas progressivas ocorreram. Se houver doença unilateral, o ouvido nãoacometido deve ser examinado primeiro. Examinado primeiro o ouvido nãoacometido, diminui o risco de disseminação de um agente infeccioso do ouvido
doente para o não-acometido (SCOTT et al, 1996).
Um diagnóstico da otite externa é feito facilmente a partir da história, e do
exame físico. A otite média é muito mais difícil de diagnosticar porque muitos casos
apresentam-se com sintomas apenas de otite externa. A radiografia está indicada
51
nos casos suspeitos de otite média e especialmente antes de métodos cirúrgicos
envolvendo o ouvido médio. Entretanto, a radiografia só é útil quando demonstra
mudanças envolvendo o ouvido médio. O exame citológico do corrimento
geralmente não estabelece um diagnóstico definitivo, mas é valioso na determinação
dos agentes infecciosos, se houver. A avaliação citológica é o método preferido de
certificar-se do papel da Malassezia, em um caso particular. A indicação primária
para os testes de cultura e sensibilidade, é a presença de otite média ou otite
externa grave associada a bactérias bastonetiformes quando o tratamento sistêmico
está para ser prescrito. Dependendo do diagnóstico primário, muitos outros testes
podem ser necessários para se fazer um diagnóstico definitivo (SCOTT et al, 1996).
O tratamento da otite externa depende da identificação e controle das
doenças predisponentes e primárias, se possível. Além disso, a limpeza dos
condutos auditivos e do ouvido médio, aplicando-se tratamentos tópicos e
administrando-se medicações sistêmicas, pode ser necessária para a eliminação
eficaz ou para o controle das causas primárias e dos fatores perpetuantes (SCOTT
et al, 1996).
A limpeza completa dos condutos auditivos é extremamente importante para o
tratamento eficaz para a otite externa. Nos casos crônicos de otite média ou falso
ouvido médio, isto inclui a limpeza daquela área. A limpeza é valiosa por diversas
razões. Juntamente com o impedimento de um tratamento eficaz, o exsudato pode
interferir no exame adequado até que esteja limpo. Corpos estranhos, especialmente
os pequenos, são eliminados quando os ouvidos são adequadamente limpos. Pus e
debris inflamatórios podem inativar alguns medicamentos. A limpeza completa
remove toxinas, bactérias, debris celulares degenerados e ácidos graxos livres, o
que diminui o estímulo para mais inflamação. Nas condições proliferativas dos
52
condutos auditivos, a limpeza completa é uma das etapas mais valiosas no
tratamento, exatamente como no tratamento do intertrigo (SCOTT et al, 1996).
Agentes ceruminolíticos facilitam grandemente e apressam o método de limpeza.
Incluem vários tipos de surfactantes, como o sulfossuccinato de dioctil sódico ou
sulfossuccinato de cálcio e detergentes que ajam por emulsificação de ceras e
lipídios. O peróxido de carbamida, é um agente ceruminolítico ligeiramente menos
potente que age como umectante por liberação de uréia quando ativado (SCOTT et
al, 1996).
Inúmeros tratamentos tópicos estão disponíveis para o conduto auditivo
externo. A maioria dos produtos auriculares contém diversas combinações de
glicocorticóides, antibióticos, antifúngicos e parasiticidas. Os agentes terapêuticos
tópicos são selecionados com base nos efeitos necessários. À medida que o caso
progrida, o paciente deve ser monitorizado e os produtos concordantemente
modificados (SCOTT et al, 1996). A lavagem do conduto auditivo com solução salina
normal morna ajuda a eliminar os resíduos.
O tratamento sistêmico está indicado se a otite externa for grave ou se tiver
otite média, quando os proprietários não podem administrar tratamentos tópicos e,
em alguns casos, quando modificações proliferativas acentuadas estiverem
presentes. Devem ser usados antibióticos ou antifúngicos apropriados até uma
semana após a cura. A corticoterapia sistêmica está indicada quando houver otite
edematosa acentuadamente inflamada e quando modificações patológicas crônicas
causem estenose acentuada da luz do conduto (SCOTT et al, 1996).
Métodos cirúrgicos que possam promover a drenagem ou a ventilação estão
descritos nos principais livros-texto cirúrgicos. A cirurgia também está indicada para
53
aliviar a estenose do conduto, remover tumores ou pólipos e tratar clinicamente otite
média resistente (SCOTT et al, 1996).
RELATO DE CASO:
NOME: Félix
ESPÉCIE: Felina
RAÇA: SRD
SEXO: Macho
IDADE: 8 anos
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 2,1 Kg
HISTÓRICO: O paciente já apresentou esse quadro há um ano atrás, foi
tratado com Antirobe (cloridrato de clindamicina) e limpeza diária dos ouvidos com
Aurivet (Gentamicina) e Otoguard (combina um antifúngico, cetoconazol), um
antibacteriano (tobramicina), um antiinflamatório (dexametasona) e um anestésico
local (lidocaína). As atividades de cada um dos princípios ativos se complementam
para controlar de forma eficaz e segura, as infecções fúngicas e bacterianas, a
inflamação e a sensibilidade dolorosa localizada do canal auditivo, restaurando a
função auditiva e aliviando o desconforto causado pelas otites externas) e melhorou
por 8 meses.
ANAMNESE: A proprietária relata que há 4 meses o paciente apresenta-se
inquieto, coçando ambas as orelhas com a pata, arrastando a cabeça no chão, está
sem apetite. A proprietária informa que tem muita secreção em ambas as orelhas,
mesmo sendo feita limpeza com Otoguard (cetoconazol e lidocaína) a cada 2 dias o
paciente não estava apresentando melhora. A proprietária relata que a orelha se
54
mantém eritematosa e aparentemente dolorosa, pois o animal sacode muito a
cabeça durante o dia.
EXAME FÍSICO: Paciente inquieto, com lesões de arranhadura nas orelhas,
otite purulenta, orelha eritematosa e cabeça inclinada.
EXAMES
COMPLEMENTARES:
Primeiro
foram
feitos
exames
de
antibiograma e bacteriológico de material otológico, com resultado de ausência de
crescimento bacteriano, falso negativo pelo uso de medicação anti-bacteriana.
Exame micológico com resultado negativo, falso negativo pelo uso da medicação
antifúngica, anti-bacteriana e antiinflamatótia (Aurivet: gentamicina).
Após o resultado foi suspensa a medicação por uma semana e coletado
material otológico com swab para novo exame bacteriológico e antibiograma, com
resultado de crescimento bacteriano para Staphylococcus sp e Corynebacterium sp.
Após o ultimo resultado foi esperado mais uma semana, coletado novo
material otológico para o exame de microorganismos Staphylococcus sp e
Corynebacterium sp.
QUADRO 16: EXAME OTOLÓGICO PARA LINCOSAMÍDEOS (L)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Lincomicina
resistente
sensível
QUADRO 17: EXAME OTOLÓGICO PARA INIBIDORES DE FOLATO – SULFAS (S)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Sulfazotrim
sensível
sensível
55
QUADRO 18: EXAME OTOLÓGICO PARA BETA-LACTÂMICOS (B)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Penicilina
resistente
sensível
Ampicilina
sensível
sensível
Amoxicilina
sensível
sensível
Ácido Clavulônico
sensível
sensível
Cefalexina
sensível
sensível
Ceftiofur
resistente
sensível
Amoxicilina +
QUADRO 19: EXAME OTOLÓGICO PARA AMINOGLICOSÍDEOS (A)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Estreptomicina
resistente
sensível
Gentamicina
sensível
sensível
Neomicina
sensível
resistente
Tobramicina
sensível
sensível
Amicacina
sensível
sensível
QUADRO 20: EXAME OTOLÓGICO PARA MACROLÍDEOAS (M)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Eritromicina
resistente
sensível
Azitromicina
resistente
sensível
56
QUADRO 21: EXAME OTOLÓGICO PARA TETRACICLINAS (T)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Tetraciclina
resistente
QUADRO 22: EXAME OTOLÓGICO PARA FENICÓIS (F)
Substância
Staphylococcus sp
Cloranfenicol
resistente
sensível
Corynebacterium sp
sensível
QUADRO 23: EXAME OTOLÓGICO PARA NITROFURANTOÍNAS (N)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Nitrofurantoína
sensível
resistente
QUADRO 24: EXAME OTOLÓGICO PARA QUINOLONAS (Q)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Norfloxacina
resistente
resistente
Ciprofloxacina
resistente
resistente
Levofloxacina
resistente
-------------
Enrofloxacina
resistente
intermediário
QUADRO 25: EXAME OTOLÓGICO PARA CARBAPENEMA(C)
Substância
Staphylococcus sp
Corynebacterium sp
Imipenem
sensível
sensível
DIAGNÓSTICO: Através da anamnese, do exame completo do canal
auricular, do exame com o otoscópio.e dos resultados dos exames complementares.
57
TRATAMENTO: A remoção da secreção ainda com ceruminolíticos (limp &
trat), administração de Aurivet (antibiótico Gentamicina), administração de
antirobe (cloridrato de clindamicina).
CONCLUSÃO / DISCUSSÃO: O tratamento está sendo eficaz, mas a partir do
momento que é cessado, logo em seguida todos os sinais clínicos voltam
gradativamente, não havendo então uma cura do caso.
Para um tratamento mais eficaz, antes de tudo deveria ser feita uma limpeza
do canal auditivo através de lavagem do canal auditivo com solução salina normal
morna, deveria ser tratado com produto Otogen (antibiótico gentamicina e
antifúngico miconazol).
4.7 ENDOCRINOLOGIA
4.7.1 Hipotireoidismo
Revisão de Literatura:
O hipotiroidismo é o distúrbio endócrino mais comum do cão e caracteriza-se
por uma pletora de sinais clínicos cutâneos e não-cutâneos associados (SCOTT et
al, 1996).
O hipotireoidismo primário é causado pela destruição da própria glândula
tireóide e responde por mais de 95% dos casos clínicos da doença. O
hipotireoidismo secundário é causado por prejuízo da secreção do hormônio
estimulante da tireóide por parte da hipófise. Essa etiologia responde por menos de
5% dos casos de hipotireoidismo canino (BICHARD et al, 1998). É uma doença de
grande incidência em cães, porém pouco comum em gatos. A glândula tireóide
possui uma série de funções, sendo mais conhecida devido a sua capacidade de
regulação do metabolismo (BERNSTEIN, 2004).
58
O hipotireoidismo pode ser de ocorrência natural ou iatrogênico (SCOTT et al,
1996). O natural ocorre, quando a glândula tireóide passa a não produzir a
quantidade necessária de hormônio. A doença gera uma série de diferentes
sintomas que podem estar relacionados à outras doenças. Suspeita-se de
hipotireoidismo, quando o animal apresenta sintomas de obesidade, ganho de peso
excessivo e rápido, alopecia (queda de pêlos) e problemas de pele, sendo a maioria
desses sintomas em conjunto. Surge também, quando há uma diminuição da
produção dos hormônios da tireóide ou mesmo quando a tireóide cessa a produção
de hormônios por completo. A produção de hormônios da tireóide sofre influência da
hipófise (pituitária), do hipotálamo e da própria tireóide. Pode ocorrer sempre que
houver algum distúrbio no eixo hipotálamo-hipófise-tireóide, porém mais de 95% dos
casos ocorre devido a uma destruição da glândula tireóide. 50% dos casos em que
há destruição da glândula tireóide em cães, estão relacionados à doenças auto
imunes, em que o próprio organismo mata as células da tireóide. Os outros 50% são
causados por atrofia do tecido da glândula tireóide e conseqüente infiltração de
tecido gorduroso na glândula. A causa desta atrofia e substituição por tecido
gorduroso ainda é desconhecida (BERNSTEIN, 2004).
Apesar de o aparecimento dos sinais clínicos ser variável, o hipotireoidismo
afeta geralmente animais de meia-idade, entre 4 e 10 anos. A doença afeta mais
animais de porte médio e grande, sendo muito raros os casos em cães de porte
pequeno e miniaturas. Algumas raças parecem ser mais predispostas à doença tais
como Golden retriever, Doberman , Setter, Schnauzer, Dachshund, Cocker spaniel,
e Airedale terrier. O Pastor Alemão e cães mestiços são menos afetados pelo
hipotireoidismo. Aparentemente não existe uma incidência maior em machos ou
59
fêmeas, porém fêmeas castradas (Pan-histerectomizadas) parecem sofrer maior
incidência da enfermidade do que fêmeas inteiras (BERNSTEIN, 2004).
Os hormônios da tireóide são necessários para o funcionamento normal do
metabolismo celular. Uma deficiência de hormônios da tireóide afetará o
metabolismo de todos os órgãos e sistemas. Conseqüentemente, a sintomatologia
apresentada será muito variável e inespecífica. Não existe um
sintoma
patognomônico que defina e diagnostique a doença. Porém, há uma série de
sintomas que quando apresentados em conjunto, fazem com que o médico
veterinário desconfie de hipotireoidismo e proceda com os exames necessários.
Estudos feitos com cães que sofrem da doença mostrou os seguintes dados
relativos à variedade e freqüência de sintomas encontrados nos casos confirmados
(BERNSTEIN, 2004).
Os sinais clínicos de animais que apresentam sintomas em percentual,
são de 70% de para letargia, 65% para queda de pêlos, 60% para obesidade e
aumento de peso, 60% para pelagem ressecada e troca de pêlos excessiva, 25%
por hiper-pigmentação da pele, 15% quando o cão fica friorento, 10% quando há
diminuição do ritmo cardíaco, 80% quando há um aumento da taxa de colesterol, e
50% na anemia (BERNSTEIN, 2004).
O hipotireoidismo é facilmente diagnosticável através de dosagens de T3 e T4
no sangue. A maioria dos cães que sofrem da doença, respondem prontamente ao
tratamento com hormônios sintéticos. Muitos animais possuem baixos níveis de
hormônios T3 e T4 na circulação, e por anos ficam sem um diagnóstico. Se o seu
animal sofre de problemas crônicos e recorrentes de pele, ele pode estar sofrendo
de hipotireoidismo. Existem várias maneiras de se diagnosticar o hipotireoidismo em
cães. O método escolhido vai depender dos sintomas apresentados e da
60
disponibilidade e facilidade de obtenção de outros métodos pelo seu médico
veterinário. O método mais comum é o de dosagem do nível de T4 no sangue. Após
coletar uma amostra de sangue, determina-se o nível de T4 através de rádioimunoensaio. O T4 é produzido apenas pela glândula tireóide e cães afetados
apresentarão uma baixa taxa de T4 no sangue. Porém, existem outras enfermidades
que podem causar uma queda de T4 no sangue também. Se este exame der
positivo, outros exames mais específicos deverão ser feitos para confirmar o
hipotireoidismo. Outro método bastante utilizado é a dosagem de T3. O T3 é uma
outra forma de hormônio produzido pela tireóide e encontrado no sangue. Este teste
não é tão acurado quanto o do T4, pois em casos de hipotireoidismo iniciais, o T3
poderá se apresentar normal enquanto o T4 estará baixo, por esse motivo, a
dosagem de T3 deverá ser feita em conjunto com o T4 e/ou a dosagem de TSH
(BERNSTEIN, 2004).
A dosagem de Hormônio Tireóide Estimulante é o método mais eficiente para
se diagnosticar o hipotireoidismo em cães. Se o cão apresentar uma baixa nos
níveis de T3 e T4, o teste de Hormônio Tireóide Estimulante servirá para confirmar o
diagnóstico de hipotireoidismo. Uma pequena dose de Hormônio Tireóide
Estimulante será injetada na veia do animal. Após 6 horas, coleta-se sangue para
checar o nível de T4. Um cão que não sofra de hipotireoidismo e que esteja com T4
baixo por algum outro problema, apresentará uma dosagem alta de T4 após a
injeção de Hormônio Tireóide Estimulante. Um cão que esteja realmente com
hipotireoidismo não apresentará um aumento de T4 após essa injeção de Hormônio
Tireóide Estimulante (BERNSTEIN, 2004).
Como fora mencionado anteriormente, 95% dos problemas de tireóide são
causados pela destruição ou perda da função da glândula tireóide. Se houver
61
suspeita de hipotireoidismo, porém sem confirmação após esses três exames, é
possível que a causa do hipotireoidismo deste cão esteja dentro dos 5% restantes.
Neste caso, exames complementares deverão ser feitos (BERNSTEIN, 2004).
O animal apresenta obesidade suave acentuada sem aumento no apetite,
letargia, embotamento e intolerância a exercícios, intolerância ao frio e hipotermia,
alopecia,
ressecamento
do
pelame,
evacuação
excessiva
e
retardo
do
recrescimento piloso. Hiperpigmentação cutânea, espessamento de pele, piodermite
secundária que pode levar à prurido, neuropatia periférica rara, neuropatia vestibular
com inclinação da cabeça, paralisia do nervo fácil, arrastar dos pés dianteiros.
Bradicardia e batimento apical fraco, anestro, infertilidade e abortamento na fêmea,
galactorréia imprópria na fêmea, perda do libido no macho, atrofia testicular,
hipospermia e infertilidade no macho. Depósitos lipídicos coreanos, uveíte crônica,
glaucoma secundário e ceratoconjuntivite seca (BICHARD et al, 1998).
Uma das “vantagens” dessa doença (se for considerada como vantagem) é o
fato de que é uma enfermidade de fácil tratamento, que consiste na administração
diária de uma dose de um hormônio sintético chamado Tiroxina ou Levotiroxina. A
dosagem e a freqüência com que será administrada dependerá da gravidade do
caso e da capacidade de resposta individual de cada animal. O cão receberá uma
dose calculada de acordo com seu peso e fará dosagens do nível hormonal
periodicamente, para avaliar sua resposta à medicação. De acordo com esta
resposta, a medicação será aumentada ou diminuída para que se obtenha um nível
desejado do hormônio na corrente sanguínea. Uma vez iniciada a medicação, o cão
deverá tomá-la para o resto da vida. Após algumas semanas de tratamento, todos
os sintomas do hipotireoidismo deverão ter desaparecido (BERNSTEIN, 2004).
RELATO DE CASO:
62
NOME: Glória
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Cocker Spaniel Inglês
SEXO: Fêmea
IDADE: 13 anos
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 14,400 Kg
HISTÓRICO: Há vinte dias atrás a paciente apareceu na clínica com
hipotireoidismo, já recebeu 400 mg de T4, houve uma engorda de 15 Kg para 22 Kg.
Apresentava ceratoconjuntivite seca, nível glicêmico normal. Há quinze dias atrás a
paciente voltou apresentando quadro grave de hipotireoidismo, pesando 18 Kg, A
principal queixa era a pele. No exame físico observou - se uma seborréia intensa
com contaminação por Staphilococcus e malassezia. Otite osternante secundária à
alergia, ceratoconjuntivite seca e um ferimento sub-palpebral. Foi feita a limpeza dos
ferimentos com lenços umedecidos com clorexidine, colírio de ciclosporina A 0,2%
BID, mudança de ração para obesity, medicação homeopática: sigizium CH3 – 10
gotas ao dia por 30 dias. Hemograma, perfil renal, hepático e T4.
ANAMNESE: O proprietário relata que a paciente começou a engordar
demais, progressivamente a paciente teve um grande emagrecimento sem causas
relacionadas a alimentação porque o proprietário diz não ter modificado a dieta do
animal. O proprietário também relata que o animal parece estar coberto por uma
“bolsa de água” pelo corpo, que a paciente apresenta ainda muita alopecia,
seborréia e dermatite sem melhoras com a medicação administrada.
EXAME FÍSICO: Paciente prostrada, com dificuldade respiratória e freqüência
respiratória muito baixa, emese, com melena, mucosas hipocoradas, anorexia a dias
63
e com quadro clínico muito complexo. Com piora da dermatite bacteriana, com
temperatura normal sem febre e freqüência cardíaca sem alterações evidentes.
EXAMES COMPLEMENTARES: Hemograma = Eritrócitos: 4,27 (6 a 8);
Hematócritos: 28 (40 a 53); Hemoglobina: 9,4 (14 a 53); VCM: 65,6 (65 a 78); HCM:
22 (21 a 26); CHCM: 33,6 (31 35); Leucócitos: 9.350 (8.000 a 16.000); Bastonetes:
7 (0 a 1%); Segmentados: 83 (55 a 80%); Linfócitos: 9 (13 a 40%); Monócitos: 1 (1 a
6%); Plaquetas: 526.000 (200.000 a 500.000); Creatinina = 1,44 (0,8 a 1,6); ALT =
29,9 (15 a 58); T4 Total = 0,3 (1,3 A 2,9)
DIAGNÓSTICO: Hipotireoidismo. Diagnóstico realizado através do histórico,
da anamnese, do exame físico e do resultados dos exames complementares,
linfopenia e pecilocitose + e T4 muito baixo.
TRATAMENTO: Fuidoterapia com andro-soro (é um composto de glicose
associada a vitaminas e minerais), administrado 1 litro, via intravenosa, com 4 gotas
por segundo.
OBSERVAÇÃO: Paciente não responde a terapia com andro-soro, quadro
clínico com piora gradual. Paciente vai a óbito por falência generalizada dos órgãos,
parada cardíaca e respiratória, um dia após ser consultada.
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: O tratamento feito foi o mais indicado para o
momento, mas a paciente chegou muito debilitada, mesmo com qualquer outro
tratamento a chance da paciente vir a óbito era quase de 100% por falta de resposta
dos órgãos. O certo seria que o proprietário tivesse levado a paciente na clínica
veterinária, logo após que o quadro do animal apresentou piora acentuada.
64
4.8 ODONTOLOGIA
4.8.1 Cálculo Dentário
Revisão de Literatura:
A doença periodontal é o diagnóstico mais comum em animais de companhia,
cerca de 80% dos cães ou gatos acima de 6 anos de idade possuem doença
periodontal. O risco parece aumentar com a idade. A ração seca pode reduzir a
placa e o cálculo em comparação com ração úmida, mas a evidência não é
conclusiva (BERNSTEIN, 2005).
Os sinais são de halitose (odor), anorexia (falta de apetite), dificuldade para
se alimentar, ptialismo (salivação), tremor de cabeça, alterações comportamentais,
gengivas avermelhadas/intumescidas e/ou com sangramento, dentes soltos,
acúmulo de placa, cálculo (tártaro) e manchas, ulcerações na mucosa gengival ou
bucal (BERNSTEIN, 2005).
Numerosos estudos têm indicado que a doença periodontal é o diagnóstico
mais comum em animais de companhia. A etapa inicial no sentido da doença
periodontal é a formação e o acúmulo de placa na superfície do dente (FIGURA 23).
Qualquer dente limpo, quando exposto à saliva, imediatamente desenvolve uma
camada de glicoproteína chamada de película. Bactérias bucais normais aderem a
esta película e começam a se multiplicar. A adição de partículas de alimento, células
epiteliais desprendidas e mucina salivar á película forma a placa dentária. A placa se
forma muito rapidamente em humanos e em animais, tipicamente no espaço de
algumas horas após uma profilaxia dentária. A placa dentária é um material mole,
mas o movimento da língua, água potável ou saliva não pode removê-la. Ela pode,
entretanto, ser removida por abrasão física como a que ocorre durante a escovação
65
dos dentes ou a mastigação. Placa não removida pode finalmente se transformar em
cálculo dentário (BERNSTEIN, 2005).
FIGURA 20: CÁLCULO DENTÁRIO
FONTE: www.clinivet.com.br
A formação de cálculo a partir da placa ocorre quando sais minerais contidos
na saliva, tais como carbonato de cálcio e fosfato de cálcio, se precipitam e são
depositados na placa. A deposição do cálcio tipicamente ocorre dentre e entre restos
bacterianos presentes na placa. O cálculo dentário é um depósito duro (FIGURA20)
que está intimamente aderido ao dente. Ele pode ser encontrado tanto acima
(supragengival) quanto abaixo (subgengival) da linha da gengiva. Uma vez formado,
o cálculo somente pode ser adequadamente removido mediante uma profilaxia
dentária profissional. Embora o cálculo supragengival seja fundamentalmente, um
problema superficial, é indicativo da necessidade de uma higiene bucal. De maneira
geral, inicialmente isto manifesta-se visualmente como acúmulo de cálculo e (ou) da
forma olfativa como mal hálito (BERNSTEIN, 2005).
O mau hálito é basicamente causado pelo metabolismo bacteriano de
proteínas na cavidade bucal proveniente de resíduos de alimento, saliva, células
epiteliais e sangue. A presença de placa e cálculo proporciona um ambiente
66
favorável para a proliferação bacteriana e um aumento do metabolismo de proteínas
levando a um mal hálito continuado. este está tipicamente associado com gengivite
e periodontite (BERNSTEIN, 2005).
Caso se deixe de fazer o tratamento, o cálculo dentário pode levar à acumulo
adicional de cálculo nos dentes. À medida em que o cálculo continua a se acumular
e se estender para dentro do sulco gengival, a superfície áspera irrita a gengiva,
causando inflamação dos tecidos moles (BERNSTEIN, 2005).
A escovação diária ajuda a remover placa e prevenir a formação de cálculo,
gengivite e doença periodontal. Entretanto, manter este esquema agressivo de
escovação é questionavel. Muitos veterinários reconhecem que uma profilaxia
dentária profissional anual sem que haja cuidados domésticos não previne
eficazmente a doença periodontal (BERNSTEIN, 2005).
Uma profilaxia dentária consiste em diversos componentes: um exame
bucal completo, mapeamento bucal, curetagem e polimento da coroa e das
supeficies subgengivais (BERNSTEIN, 2005).
O tratamento dentário doméstico refere-se às tarefas realizadas pelo cliente, e
à aplicação de dentifrícios à cavidade oral do animal, como meios auxiliares para a
manutenção da saúde dental. Dado o papel etiológico fundamental desempenhado
pelas bactérias nos casos de afecção dental, a tarefa basal de qualquer protocolo
doméstico deve ser o controle da placa na margem gengival (ETTINGER et al,
1997).
O método mais confiável de controle da placa é a remoção mecânica
(FIGURA 24). Uma remoção significativa, mas incompleta da placa e dos cálculos
poderá ser conseguida através de autolimpeza natural imposta pela interação
oclusora das coroas com dietas compostas de alimentos duros e pelo uso de
67
brinquedos de mastigar confeccionados em couro cru. Biscoitos de cereais, embora
ajudem na remoção do tártaro, podem ser fontes de excesso de calorias e de
desequilíbrio nutricional, o que poderá ser prejudicial ao bem estar geral do animal.
O uso de meios auxiliares efetuados pelo proprietário do paciente para a remoção
da placa fica limitado pelo modo que o animal aceita os procedimentos; entretanto,
podem ser utilizadas soluções reveladoras de placa, escovas de dentes com
dentifrícios apropriados, aplicações interdentais ou nas furcações, irrigadores orais,
e controle químico da placa. As escovas dentais os removedores mecânicos de
placa mais efetivos (placa marginal supragengival e subgengival). A escova dental
“ideal” deve ter cerdas sintéticas macias e com muitos tufos, com as pontas das
cerdas arredondadas, para que seja minimizada a brasão dos dentes e a lesão
gengival. É essencial uma técnica apropriada de escovamento dos dentes, para que
ocorra a remoção efetiva da placa supragengival e subgengival (ETTINGER et al,
1997).
A profilaxia dental deve ser considerada como uma série de fases.
Procedimentos
e
avaliação
diagnósticos
do
paciente,
antes
de
qualquer
procedimento. Proteção intra-operatória do paciente e do operador, seqüência
operatória de exame, registro em formulário odontológico, escarificação e polimento
e
programa
pós-operatório
de
tratamento
doméstico
e
esquema
de
acompanhamento/ reconsulta (ETTINGER et al, 1997).
O equipamento necessário incluem raspadores ultrassônicos ou sônicos e,
embora não requeridos, são mais rápidos do que os raspadores manuais. Para
cães, é também recomendado utilizar um enxágüe antes da intervenção com
solução de clorexidina diluída para ajudar a minimiza a bactermia que ocorre durante
a limpeza dentária. A raspagem motorizada deve ser utilizada primeiro, seguida de
68
uma raspagem manual para remover suavemene placa residual e cálculo sob a linha
da gengiva. O polimento é recomendado após o aplainamento e a raspagem a fim
de alisar ranhuras e depressões no esmalte que correm e decorrência da raspagem.
Finalmente, uma lavagem supragengival e subgengival remove o pó abrasivo do
polimento, que pode atuar como um irritante das gengivas (BERNSTEIN, 2005).
TALBOT, (1989) relatou que a doença periodontal afeta 75% dos cães entre 4
e 8 anos de idade. Esta incidência foi subseqüentemente confirmada em uma
análise recente identificando 53 e 95% de cães com idade acima de um ano como
portadores de algum grau de periodontite. Apesar de existirem poucos estudos
relacionados com gatos, a incidência de doença periodontal foi observada em 25 a
50%, documentando portanto sua importância também nesta espécie. A natureza
disseminada das preocupações dentárias no cão e no gato impõe que a
conscientização do problema seja ampliada e que estratégias potencialmente
benéficas sejam exploradas (BERNSTEIN, 2005).
RELATO DE CASO:
NOME: Katucha
ESPÉCIE: Canina
RAÇA: Yorkshire Terrirer Miniatura
SEXO: Fêmea
IDADE: 11 anos
TEMPERAMENTO: Dócil
PESO: 1,9 Kg
ANAMNESE: Paciente sem histórico de problemas de saúde. Com a
vacinação, vermifugação e anti-pulga atualizados. A proprietária relata que a
paciente está com a boca muito fétida e que está com falta de apetite.
69
EXAME FÍSICO: Paciente aparentemente bem, com temperatura normal,
pêlos brilhantes, pele sadia, olhos atentos e boca com halitose. No exame físico da
boca foi encontrado cálculos em 90% dos dentes, sendo necessária uma remoção
de cálculo dentário com urgência.
DIAGNÓSTICO: Doença periodontal, cálculo dentário. Diagnóstico realizado
através da anamnese e do exame físico.
INDICAÇÃO: Tratamento periodontal.
EXAMES COMPLEMENTARES: Bioquímicos= T4 livre: 0,98 (0,5 a 3,8);
Creatinina: 0,77 (0,8 a 1,6); ALT: 12,2 (15 a 58).
Hemograma= Eritrócitos: 8,3 (6 a 8); Hematócritos: 56 (40 a 53);
Hemoglobina: 17,6 (14 a 53); VCM: 67,5 (65 a 78); HCM: 21,2 (21 a 26); CHCM:
31,4 (31 a 35); Leucócitos: 10.760 (8.000 a 16.000); Bastonetes: 4 (0 a 1%);
Segmentados: 61 (55 a 80%); Linfócitos:33 (13 a 40%); Monócitos:0 (1 a 6%);
Muloblastos: 0; Promieloctus: 0; Plaquetas: 477.000 (200.000 a 500.000).
Resultado: Policitemia.
TRATAMENTO MEDICAMENTOSO: A administração de spiraphar* 5
(Espiramicina e Dimetridazol), à partir de três dias antes do procedimento e também
até uma semana após o procedimento.
FIGURA 21: KATUCHA, DURANTE A RAMOÇÃO DE CÁLCULO DENTÁRIO
FONTE: Clínica Veterinária Pet Social, 2007.
70
TRATAMENTO CIRÚRGICO: Junto com a remoção de cálculo dentário, no
paciente foi feito também a ovariohisterectomia.
O procedimento anestésico instituído foi na monitoração pré-anestésica o uso
de acepromazina 0,2% na dose de 0,1 ml. A paciente recebeu por via intravenosa
propofol 1 (um) ml, após foi aplicado fentanil 0,11 ml por duas vezes durante o
procedimento. No início a paciente teve uma apnéia que foi revertida com doxapran
0,1 ml. E foi usado anestesia inalatória com o uso do isoflurano 15 ml (procedimento
com média de duas horas e meia de duração) para a manutenção.
Remoção do cálculo dentário (FIGURA 21) e extração de dentes. Antes da
remoção é feito um enxágüe antes da intervenção com solução de clorexidine
diluída para ajudar a minimiza a bacteremia que ocorre durante a limpeza dentária.
A remoção do cálculo é feita com aparelho ultrassônico, e são feitas raspagens
manuais rápidas no dente e na supra-gengival retirando o cálculo por completo.
Após a remoção é feita uma escovação com pasta C.E.T (complexo enzimático que
reage com substratos presentes no próprio produto, formando o íon hipotiocianato.
Esta substância, naturalmente encontrada na saliva dos animais, inibe o crescimento
das bactérias formadoras de placa e neutraliza o ácido por elas produzido. Previne a
formação da placa bacteriana, do cálculo dentário e das doenças periodontais e
doenças sistêmicas secundárias) e por último a boca do animal é bem enxaguada.
É feita a admistração de Clavacilin (ácido clavulânico) e maxican 0,2%
(antiinflamatório não esteróide com atividade inibidora seletiva da cicloxigenase-2,
que confere um duplo benefício terapêutico, resultando em excelente atividade
antiinflamatória, analgésica e antiexsudativa com mínimos efeitos gastrolesivos ou
ulcerogênicos).
71
CONCLUSÃO/ DISCUSSÃO: O tratamento, o diagnóstico e o procedimento
foram bem eficazes. Pois o animal já estava sofrendo as conseqüências, por não
estar se alimentando. A proprietária podia ter levado a paciente à clínica veterinária
com antecedência, ao ver que o animal sentia dor ao comer e após a anorexia.
72
5. CONCLUSÃO
Durante o período, entre o dia 26 de Fevereiro de 2007 ao dia 25 de Abril de
2007, realizei o estágio curricular na Clínica Veterinária Pet Social, onde junto aos
veterinários
da
clínica,
participei
de
consultas,
cirurgias,
dentre
outros
procedimentos.
No estágio curricular aprendi a conviver com outros profissionais, na
convivência com os pacientes e seus proprietários. Aprendi desde conversar com o
proprietário até como devo me portar como Médica Veterinária, diante aos
proprietários. Além da parte médica e cirúrgica de animais de companhia como um
todo. Desde o comportamento animal, até sua alimentação e doenças mais comuns
que chegam à Clínica Veterinária.
Concluo que a vivência que tive durante o período do estágio curricular foi
muito proveitosa e muito importante para o meu futuro profissional.
73
6. REFERÊNCIAS
AMARAL, T. C. G. Otite Externa. Disponível em: http://www.homeopatia
veterinaria.com.br/otite_externa.htm. Acesso em: 07/05/2007.
BERNSTEIN,
M.
Hipotireoidismo.
Disponível
em:
http://www.veterinaria
online.com.br/especialidade.php?cd_artigo=49. Acesso em 10/04/2007.
BERNSTEIN, M. Controle e Prevenção das Pulgas. Disponível em: http://www.
veterinariaonline.com.br/especialidade.php?cd_artigo=88.
Acesso
em
12/04/2007.
BERNSTEIN, M. Doença Periodontal. Disponível em: http://www.veterinaria
online.com.br/especialidade.php?cd_artigo=130. Acesso em 16/04/2007.
BERNSTEIN,
M.
Sarna
Demodécica,
Demodicose
canina.
Disponível
http://www.veterinariaonline.com.br/especialidade.php?cd_artigo=91.
em:
Acesso
em 21/04/2007.
CHAMUSCA, N. Dermatite Alérgica em Cães. Disponível em: http://www.
frankenthal. com.br/noticias/?acao=lm&tp=2&id=80 . Acesso em 01/05/2007.
GABALDI, S. H e LOPES, M. D. Hiperplasia e prolapso vaginal em cadelas. Revista
Clínica Veterinária. Ed. Guará. v.13, Março/Abril, 1998.
GRIFFIN, C. E. Dermatite Alérgica à Picada de Pulgas. In: BICHARD, S.J. Clínica
de Pequenos Animais. Ed. Roca. Seção 6. p. 339 – 342.
LUCAS,
R.
Dermatite
Alérgica
à
Picada
de
Pulga.
Disponível
em:
www.virbac.com.br/linhas/companhia/artigo/4/. Acesso em 08/04/2007.
LUNNEY, J; ETTINGER, S. J., Arritmias Cardíacas. In: ETTINGER, S. J; FELDMAN,
E. C., Tratado de Medicina Interna Veterinária. Ed. Manole. v. 1. Capítulo 95. p.
1367 – 1368, 1997.
74
MARANGON, C. M. L. V; CAVALCANTI, A. M; SOBANIA, S. R. F; RIBAS, L. F. O;
MOREIRA, A. J. S; CAPUTO, D. S. D. P; ALVES, S. M. P. Plano Estadual de
Assistência
Farmacêutica
Básica-
2002.
Disponível
em:
http://64.233.167.104/search?q=cache:DSvWHhVTcAJ:www.saude.pr.gov.br:20
80/Bipartit.nsf/43b0de66a442b6b5032568f7003ef686/5185bf098f363c5c83257097
00492cbf/%24FILE/Elenco_Medicamentos_AFB_CIB_04_10_05.doc+%22s%C3
%ADndrome+do+seio+enfermo%22&hl=ptBR&ct=clnk&cd=4&gl=br. Acesso em:
03/05/2007.
MUNDELL, A. C,. Demodicose. In: BICHARD, S.J. Clínica de Pequenos Animais.
Ed. Roca. Seção 5. Capítulo 4. p. 329 – 333, 1998.
NELSON, R. W; COUTO, C. G., Distúrbios do Ritmo Cardíaco. Medicina Interna de
Pequenos Animais. Ed. Guanabara Koogan. 2ª edição. Capítulo 4. p 63, 1992,
Brasil.
NELSON, R. W; COUTO, C. G., Distúrbios da Vagina e do Útero. Medicina Interna
de Pequenos Animais. Ed. Guanabara Koogan. 2ª edição. Capítulo 57. p 680 –
681, 1992, Brasil.
NASCENTE, P. S; XAVIER, M. O; ROSA, C, S; SOUZA, L. L; MEIRELES, M. C. A;
MELLO, J. R. B. Hipersensibilidade alimentar em cães e gatos. Revista Clínica
Veterinária. Ed. Guará. Número 64, p. 60-66, 2006.
NASCIMENTO, E. F.; SANTOS, R. L., Prolapso Vaginal. Patologia da Reprodução
dos Animais Domésticos. Ed Guanabara Koogan. 2. ed. Capítulo 88. p 88, 2003.
PETERSON, J. L.; COUTO, C. G., Tumores Cutâneos e Subcutâneos. In: BICHARD,
S.J. Clínica de Pequenos Animais. Ed. Roca. Seção 3. Capítulo 8. p. 234 – 237,
1998.
75
PETERSON, J. L.; GRAVES, K. T.; BICHARD, S.J.; Distúrbios Endócrinos e
Metabólicos- Glândula Tireóide. In: BICHARD, S. J. Clínica de Pequenos Animais.
Ed. Roca. Seção 4. Capítulo 1. p. 247 – 250, 1998.
ROSYCHUK, R. A. W; LUTTGEN, P., Afecções do Ouvido Médio e Interno. In:
ETTINGER, J. S.; FELDMAN, E. C. Tratado de Medicina Interna Veterinária. Ed.
Manole. v. 1. Seção VI. Capítulo 79. p. 774- 777, 1997.
SCOTT, D. W; MILLER; GRIFFIN., Doenças Parasitárias da Pele Dermatologia de
Pequenos Animais. 5. ed, Ed. Interlivros, p. 385-399, 1996.
SCOTT,
D.
W;
MILLER;
GRIFFIN.,
Doenças
Imunológicas
de
Pele.
Dermatologia de Pequenos Animais. 5. ed, Ed. Interlivros, p. 489-494, 1996.
SCOTT,
D.
W;
MILLER;
GRIFFIN.,
Doenças
Imunológicas
de
Pele.
Dermatologia de Pequenos Animais. 5. ed, Ed. Interlivros, p. 496-500, 1996.
SCOTT,
D.
W;
MILLER;
GRIFFIN.,
Doenças
Metabólicas
e
Endócrinas.
Dermatologia de Pequenos Animais. 5. ed, Ed. Interlivros, p. 642-655, 1996.
SCOTT, D. W; MILLER; GRIFFIN., Doenças das Pálpebras, Unhas, Sacos Anais e
condutos Auditivos. Dermatologia de Pequenos Animais. 5. ed, Ed. Interlivros, p.
913-923. Rio de Janeiro, 1996.
SEIM III, H. B., Ouvido Médio. In: SLATTER, D. Manual de cirurgia de Pequenos
Animais. Ed Manole. 2. ed, v. 2. Capítulo 117. p. 1859 – 1862, 1998.
SHELL, L. G., Otite Média e Interna. In: BICHARD, S.J. Clínica de Pequenos
Animais. Ed. Roca. Seção 5. Capítulo 23. . p. 334 – 354, 1998.
SLATTER, D., Prolapso Vaginal. Manual de Cirurgia de Pequenos Animais. Ed.
Manole. 2. ed, v. 2. Capítulo 94. p. 1564 – 1565, 1998.
76
SOUZA, J. G. M; SILVA, T M; CAETANO, C. F; MEIRELES, M. C. A; NASCENTE, P.
S; MEINERZ, A. R. M;FARIA,R. O;ANTUNES, T. A. Hemorama e Bioquímica
Sanguínea de Canino com Demodicose e Tratado com Invermectina. Disponível em:
http://www.ufpel.edu.br/xivcic/arquivos/CA _00772rtf. Acesso em: 11/04/2007.
WEST-HYDE, L; FLOYD, M., Odontologia. In: ETTINGER, S. J; FELDMAN, E.C.
Tratado de Medicina Interna Veterinária. Ed Manole. 4. ed, v. 2. Capítulo 101. p.
1517 – 1553, 1997.
WHITE, D. S., Hipersensibilidade Alimentar. In: BICHARD, S.J. Clínica de
Pequenos Animais. Ed. Roca. Seção 5. Capítulo 8. p. 334 – 354, 1998.